Способ моделирования приобретенной токсической гемолитической анемии в эксперименте



Владельцы патента RU 2528976:

государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Пермская государственная медицинская академия имени академика Е.А. Вагнера" Министерства здравоохранения Российской Федерации (RU)

Изобретение относится к экспериментальной медицине, в частности к патологической физиологии и гематологии, и касается моделирования гемолитической анемии. Для этого нелинейной белой крысе однократно внутрибрюшинно вводят 0,4%-ный раствор 2-бутоксиэтанола в дозировке 20 мг/кг массы тела животного (4 мг на животное). Способ обеспечивает специфичное моделирование приобретенной токсической гемолитической анемии без развития значимых изменений токсического характера в печени и почках. 3 пр.

 

Изобретение относится к экспериментальной медицине, патологической физиологии, гематологии.

С целью моделирования приобретенной токсической гемолитической анемии применяют различные химические агенты.

Традиционным является способ моделирования приобретенной токсической гемолитической анемии путем введения в организм экспериментального животного гемолитического яда - фенилгидразина, с использованием разных способов введения (Репина Е.Н., 2007; Иванкова Ж.Е., 2007; Улитко М.В., 2008; Жернов Ю.В., 2009). Недостатком фенилгидразиновых моделей является разная выраженность гемолитической анемии у животных разного возраста (Пахрова О.А., 2002).

В литературе есть данные о применении других веществ для моделирования приобретенной токсической гемолитической анемии. Модель, предлагаемая E1-Ashmawy I.M. et al., 2010, подразумевает введение экспериментальным животным азатиоприна (25 мг/кг массы тела) (E1-Ashmawy I.M. et al., 2010). Недостатком является очень высокая токсичность вводимого вещества, вследствие чего гемолиз эритроцитов сопровождается развитием полиорганной патологии на фоне токсического воздействия.

Bazzoni G.B. et al., 2005, в качестве токсического агента для моделирования токсической гемолитической анемии рекомендуют использование алюминия (Al III) - металла без какой-либо определенной биологической функции, тем не менее его накопление в организме может привести к токсическому воздействию. Недостатком модели является необходимость длительного (в течение трех месяцев) введения алюминия экспериментальным животным.

Прототипом является экспериментальная модель Moreira-Rodrigues M. et al., 2010, основанная на введении экспериментальным животным (крысам) сулемы (HgCl2). Но эта модель, помимо формирования гемолитической анемии у экспериментальных животных, характеризуется системным аутоиммунным процессом, приводящим через 14-21 день к развитию грубой полиорганной патологии со стороны сердечно-сосудистой системы и почек (Moreira-Rodrigues M. et al., 2010), что не обеспечивает соответствия модели клиническому течению приобретенной гемолитической анемии.

Технический результат: повышение специфичности способа моделирования приобретенной токсической гемолитической анемии в эксперименте.

Указанная задача достигается путем однократного внутрибрюшинного введения нелинейным белым крысам 2-бутоксиэтанола (C6H14O2) в эмпирически выбранной дозировке 20 мг/кг массы тела (в среднем 4 мг на животное).

2-Бутоксиэтанол (C6H14O2) - широко используемый во многих отраслях промышленности реагент; к настоящему времени в условиях in vitro установлено, что метаболиты 2-бутоксиэтанола являются сильными гемолитическими ядами (Ghanayem B.I., Sullivan Ch.A., 2002). Однако способа экспериментального моделирования приобретенной токсической гемолитической анемии с использованием 2-бутоксиэтанола в зарубежной и отечественной литературе не найдено.

Способ осуществляют следующим образом. Лабораторному животному (нелинейной белой крысе) однократно под легким эфирным наркозом внутрибрюшинно вводят 2-бутоксиэтанол (C6H14O2) в эмпирически выбранной дозировке 20 мг/кг массы тела животного (4 мг на животное). Рабочий раствор (0,4%) получают следующим способом: 180 мкл чистого 2-бутоксиэтанола (в 1 мл 1 г вещества) разводят 45 мл воды для инъекций. В результате 1 мл полученного рабочего раствора содержит 4 мг 2-бутоксиэтанола (дозировка на одно животное). Внутрибрюшинно вводят 1 мл рабочего раствора однократно.

Примеры конкретного выполнения.

Пример 1. Крыса, самец, масса 210 г. Перед началом эксперимента проведен забор периферической крови из хвостовой вены - с целью анализа исходных показателей, а также 100 мкл крови дополнительно - для получения эритромассы с последующим замораживанием при температуре -18°C (для последующей постановки реакции агглютинации сывороткой животного аутологичных эритроцитов - по окончании эксперимента). После чего внутрибрюшинно под эфирным наркозом введено 4,0 мг 2-бутоксиэтанола (1 мл 0,4%-ного рабочего раствора). Спустя 10 суток наблюдения у животного взята кровь из хвостовой вены - с целью анализа показателей периферической крови. После забора крови животное выведено из эксперимента под эфирным наркозом с соблюдением правил эвтаназии. Проведен забор крови из полости сердца - для получения сыворотки. Проведен забор органов (печень, селезенка, почки) для гистологического исследования.

Показатели периферической крови до начала эксперимента: количество эритроцитов - 6,332·109 в 1 мкл крови, концентрация гемоглобина - 124 г/л, количество ретикулоцитов - 1,378%, количество лейкоцитов - 6232 в 1 мкл крови, лимфоциты - 68%, абс. - 4237, нейтрофилы сегментоядерные - 23%, абс. - 1433, нейтрофилы палочкоядерные - 2%, абс. - 125, нейтрофилы юные - 0%, абс. - 0, моноциты - 3%, абс. - 187, эозинофилы - 4%, абс. - 250, базофилы - 0%, абс. - 0. Показатели периферической крови к концу эксперимента (10-е сутки после введения бутоксиэтанола): количество эритроцитов - 4,567·109 в 1 мкл крови, концентрация гемоглобина - 86 г/л, количество ретикулоцитов - 4,2%, количество лейкоцитов - 4810, лимфоциты - 60, абс. - 2790, нейтрофилы сегментоядерные - 27%, абс. - 1299, нейтрофилы палочкоядерные - 4%, абс. - 192, нейтрофилы юные - 1%, абс. - 48, моноциты - 6%, абс. - 289, эозинофилы - 2%, абс. - 96, базофилы - 2%, абс. - 96.

То есть к концу эксперимента у экспериментального животного отмечалось уменьшение концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, рост количества ретикулоцитов, что свидетельствует о развитии у животного гемолитической анемии; в лейкоцитарной формуле - уменьшение относительного и абсолютного количества лимфоцитов, увеличение суммарного количества (относительного и абсолютного) нейтрофилов, увеличение количества моноцитов.

Результаты реакции агглютинации сывороткой животного аутологичных эритроцитов: гемолиз, титр - разведение 1:64, log=6.

Результаты гистологического исследования: в селезенке животного выявлен гемосидероз красной пульпы, что является типичным проявлением гемолитической анемии. В ткани почек патологических изменений не обнаружено. В печени животного выявлены ограниченные участки зернистой и жировой дистрофии гепатоцитов.

Таким образом, у экспериментального животного, которому был введен однократно внутрибрюшинно 2-бутоксиэтанол, отмечалось развитие приобретенной токсической гемолитической анемии, о чем свидетельствовало значительное уменьшение концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, наличие реакции агглютинации собственной сывороткой животного аутологичных эритроцитов, а также ретикулоцитоз периферической крови и гемосидероз красной пульпы селезенки. В то же время в печени и почках животного не выявлено значимых изменений токсического характера.

Пример 2. Крыса, самка, масса 186 г. Перед началом эксперимента проведен забор периферической крови из хвостовой вены - с целью анализа исходных показателей, а также 100 мкл крови дополнительно - для получения эритромассы с последующим замораживанием при температуре -18°C (для последующей постановки реакции агглютинации сывороткой животного аутологичных эритроцитов - по окончании эксперимента). После чего внутрибрюшинно под эфирным наркозом введено 4,0 мг 2-бутоксиэтанола (1 мл 0,4%-ного рабочего раствора). Спустя 10 суток наблюдения у животного взята кровь из хвостовой вены - с целью анализа показателей периферической крови. После забора крови животное выведено из эксперимента под эфирным наркозом с соблюдением правил эвтаназии. Проведен забор крови из полости сердца - для получения сыворотки. Проведен забор органов (печень, селезенка, почки) для гистологического исследования.

Показатели периферической крови до начала эксперимента: количество эритроцитов - 6,579·109 в 1 мкл крови, концентрация гемоглобина - 118 г/л, количество ретикулоцитов - 1,5%, количество лейкоцитов - 6232 в 1 мкл крови, лимфоциты - 72%, абс. - 4487, нейтрофилы сегментоядерные - 21%, абс. - 1309, нейтрофилы палочкоядерные - 1%, абс. - 62, нейтрофилы юные - 0%, абс. - 0, моноциты - 2%, абс. - 124, эозинофилы - 3%, абс. - 188, базофилы - 1%, абс. - 62. Показатели периферической крови к концу эксперимента (10-е сутки после введения бутоксиэтанола): количество эритроцитов - 3,247·109 в 1 мкл крови, концентрация гемоглобина - 78 г/л, количество ретикулоцитов - 4,12%, количество лейкоцитов - 4810, лимфоциты - 61, абс. - 2934, нейтрофилы сегментоядерные - 18%, абс. - 866, нейтрофилы палочкоядерные - 3%, абс. - 144, нейтрофилы юные - 4%, абс. - 192, моноциты - 8%, абс. - 386, эозинофилы - 5%, абс. - 240, базофилы - 1%, абс. - 48.

То есть к концу эксперимента у экспериментального животного отмечалось уменьшение концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, рост количества ретикулоцитов, что свидетельствует о развитии у животного приобретенной токсической гемолитической анемии; в лейкоцитарной формуле - уменьшение относительного и абсолютного количества лимфоцитов, увеличение суммарного количества (относительного и абсолютного) нейтрофилов, увеличение количества моноцитов.

Результаты реакции агглютинации сывороткой животного аутологичных эритроцитов: гемолиз, титр - разведение 1:128, log=7.

Следовательно, у экспериментального животного, которому был введен однократно внутрибрюшинно 2-бутоксиэтанол, отмечалось развитие приобретенной токсической гемолитической анемии, о чем свидетельствовало значительное уменьшение концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, наличие реакции агглютинации собственной сывороткой животного аутологичных эритроцитов, а также ретикулоцитоз периферической крови.

Результаты гистологического исследования: в селезенке животного выявлен гемосидероз красной пульпы, что является типичным проявлением гемолитической анемии. В ткани почек патологических изменений не обнаружено. В печени животного выявлены ограниченные участки зернистой дистрофии гепатоцитов и умеренное расширение синусоидных капилляров.

Таким образом, у экспериментального животного, которому был введен однократно внутрибрюшинно 2-бутоксиэтанол, отмечалось развитие приобретенной токсической гемолитической анемии, о чем свидетельствовало значительное уменьшение концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, наличие реакции агглютинации собственной сывороткой животного аутологичных эритроцитов, а также ретикулоцитоз периферической крови и гемосидероз красной пульпы селезенки. В то же время в печени и почках животного не выявлено значимых изменений токсического характера.

Пример 3. Крыса, самец, масса 232 г. Перед началом эксперимента проведен забор периферической крови из хвостовой вены - с целью анализа исходных показателей, а также 100 мкл крови дополнительно - для получения эритромассы с последующим замораживанием при температуре -18°C (для последующей постановки реакции агглютинации сывороткой животного аутологичных эритроцитов - по окончании эксперимента). После чего внутрибрюшинно под эфирным наркозом введено 4,0 мг 2-бутоксиэтанола (1 мл 0,4%-ного рабочего раствора). Спустя 10 суток наблюдения у животного взята кровь из хвостовой вены - с целью анализа показателей периферической крови. После забора крови животное выведено из эксперимента под эфирным наркозом с соблюдением правил эвтаназии. Проведен забор крови из полости сердца - для получения сыворотки. Проведен забор органов (печень, селезенка, почки) для гистологического исследования.

Показатели периферической крови до начала эксперимента: количество эритроцитов - 6,779·109 в 1 мкл крови, концентрация гемоглобина - 138 г/л, количество ретикулоцитов - 1,62%, количество лейкоцитов - 7734 в 1 мкл крови, лимфоциты - 69%, абс. - 5336, нейтрофилы сегментоядерные - 22%, абс. - 1701, нейтрофилы палочкоядерные - 2%, абс. - 155, нейтрофилы юные - 1%, абс. - 77, моноциты - 4%, абс. - 310, эозинофилы - 2%, абс. - 155, базофилы - 0%, абс. - 0. Показатели периферической крови к концу эксперимента (10-е сутки после введения бутоксиэтанола): количество эритроцитов -3,182·109 в 1 мкл крови, концентрация гемоглобина - 81 г/л, количество ретикулоцитов - 4,55%, количество лейкоцитов - 3980, лимфоциты - 59, абс. - 2348, нейтрофилы сегментоядерные - 22%, абс. - 876, нейтрофилы палочкоядерные - 5%, абс. - 199, нейтрофилы юные - 1%, абс. - 40, моноциты - 9%, абс. - 358, эозинофилы - 3%, абс. - 119, базофилы - 1%, абс. - 40.

То есть к концу эксперимента у экспериментального животного отмечалось уменьшение концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, рост количества ретикулоцитов, что свидетельствует в пользу развития у животного приобретенной гемолитической анемии; в лейкоцитарной формуле отмечалось уменьшение относительного и абсолютного количества лимфоцитов, увеличение суммарного количества (относительного и абсолютного) нейтрофилов, увеличение количества моноцитов.

Результаты реакции агглютинации сывороткой животного аутологичных эритроцитов: гемолиз, титр - разведение 1:64, log=6.

Результаты гистологического исследования: в селезенке животного выявлен гемосидероз красной пульпы, что является характерным признаком гемолитической анемии. В ткани почек патологических изменений не обнаружено. В печени животного выявлены ограниченные участки жировой дистрофии гепатоцитов и умеренное расширение синусоидных капилляров.

Таким образом, у экспериментального животного, которому был введен однократно внутрибрюшинно 2-бутоксиэтанол, отмечалось развитие приобретенной токсической гемолитической анемии, о чем свидетельствовало значительное уменьшение концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, наличие реакции агглютинации собственной сывороткой животного аутологичных эритроцитов, а также ретикулоцитоз периферической крови и гемосидероз красной пульпы селезенки. В то же время в печени и почках животного не выявлено значимых изменений токсического характера.

Способ моделирования приобретенной токсической гемолитической анемии в эксперименте путем введения нелинейным белым крысам гемолитического яда, отличающийся тем, что нелинейным белым крысам однократно внутрибрюшинно вводят 0,4%-ный раствор 2-бутоксиэтанола (C6H14O2) в дозе 20 мг/кг массы тела животного.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной морфологии, а также к разработке и изучению способов коррекции негативных эффектов низких температур на организм животного в эксперименте.
Изобретение относится к медицине и может быть использовано для предоперационной подготовки деминерализованного костного трансплантата (ДКТ) к пластике в эксперименте.

Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно - к изучению патофизиологии репродуктивной системы, и может быть использовано для моделирования синдрома хронической ановуляции.

Изобретение относится к экспериментальной медицине, в частности к радиобиологии и комбустиологии, и может быть использовано для изучения механизмов патогенеза сочетанных радиационных поражений (СРП), включая феномен взаимного отягощения, а также для испытания новых способов и средств профилактики и лечения.

Изобретение относится к медицине. При осуществлении способа перед обучением проводят интерактивное компьютерное тестирование.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии, и может быть использовано для моделирования осложненной стенозом дуоденальной язвы. Способ включает введение крысам в подслизистый слой двенадцатиперстной кишки через прокол боковой стенки живота 3% раствора соляной кислоты.
Изобретение относится к экспериментальной медицине и может быть использовано для изучения стимуляции эндогенных механизмов васкуляризации сердечной мышцы. В качестве средства, обеспечивающего такую стимуляцию, в эксперименте на крысах предлагается использовать стрептозотоцин.
Изобретение относится к экспериментальной медицине и может быть использовано для разработки мероприятий, направленных на предупреждение летального исхода инфекционного процесса на фоне ожоговой травмы.
Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии, и касается прогнозирования исхода множественной скелетной травмы у животных. Для этого регистрируют показатель ректальной температуры у кроликов породы Шиншилла в условиях основного обмена после нанесения травмы на фоне лечения препаратами анальгин, линкомицин и инфузии раствора глюкозы.

Изобретение относится к экспериментальной медицине и может быть использовано для разработки медикаментозного лечения острого панкреонекроза с последующим наблюдением за его эффективностью с помощью гистологического исследования.

Изобретение относится к медицине, а именно к ортопедии, биомеханике, оперативной хирургии и топографической анатомии, анатомии, антропологии. На невостребованном трупе выполняют задний доступ к тазобедренному суставу типа Кохера-Лангенбека. Отсепаровывают наружные ротаторы бедра от места их анатомического прикрепления к бедру. Обнажают головку и шейку бедренной кости, края вертлужной впадины. Укладывают спицу-направитель, определяющую линию плоскости входа в вертлужную впадину в горизонтальном сечении тазобедренного сустава. Производят остеотомию шейки и головки бедренной кости в горизонтальной плоскости. Проводят спицу-направитель через основание вершины большого вертела в направлении снаружи кнутри вдоль продольной оси шейки и головки бедренной кости по горизонтальной плоскости остеотомированной головки и шейки бедра до субхондрального отдела медиального края головки бедра. Затем при согнутой нижней конечности в коленном суставе под углом 45° моделируют угол горизонтальной инклинации в тазобедренном суставе путем ротации бедра внутренним вращением голени так, чтобы угол пересечения спиц-направителей при измерении был 56°. Осуществляют моделирование укороченных наружных ротаторов бедра путем временной фиксации наружных ротаторов бедра к месту их анатомического прикрепления в вертельной ямке бедра в условиях угла горизонтальной инклинации в тазобедренном суставе 56° с незначительным натяжением наружных ротаторов бедра. Это будет соответствовать наружной ротационной контрактуре тазобедренного сустава 1-й степени. Далее выполняют аналогичные действия при значении угла горизонтальной инклинации в тазобедренном суставе 46°, что будет соответствовать наружной ротационной контрактуре тазобедренного сустава 2-й степени. При значении угла горизонтальной инклинации в тазобедренном суставе 36° - будет соответствовать наружной ротационной контрактуре тазобедренного сустава 3-й степени. Способ позволяет проводить точные антропометрические измерения при истинном угле за счет анатомо-хирургического моделирования наружной ротационной контрактуры тазобедренного сустава в эксперименте. 5 ил.

Изобретение относится к экспериментальной медицине и иммунологии и может быть использовано для оценки эффекта электромагнитных волн миллиметрового диапазона (КВЧ) в условиях трехсоставной модели цитостатического воздействия. Для этого в группе животных воздействуют на область тимуса электромагнитными волнами миллиметрового диапазона (КВЧ) при длине волны 5,6 мм в течение 2 недель с перерывами в 1-2 дня. Разовая экспозиция физического фактора при этом составляет 1-2 минуты в течение 2 недель с перерывами 1-2 дня. Затем осуществляют имитацию хирургического оперативного вмешательства путем вскрытия и зашивания брюшины. На седьмой день после операции осуществляют трехкратное фракционированное внешнее гамма-облучение животных в разовой дозе 2,5 Зв через день. Затем животным внутрибрюшинно вводят циклофосфан в дозе 4 мг/100 г массы тела животного. На 14 день после инъекции цитостатика проводят забой животных с исследованием крови и иммунокомпетентных органов. При этом определяют клеточность тимуса (КТ) в 106кл./100 мг его массы, функциональную активность лимфоцитов в тесте с нитросиним тетразолием (НСТ) в ед., содержание антителообразующих клеток (АОК) по N.K.Erne в кл./чП в селезенке, апоптоз в аннексиновом тесте (АП) в %, содержание циркулирующих иммунных комплексов сыворотки крови (ЦИК) в ед. После этого расчитывают индекс эффекта физического фактора (ИФ) по формуле: И Ф = А П × Н С Т × К Т × 100 Ц И К × А О К . При величине ИФ меньше 48 констатируют наличие иммуномодулирующего эффекта КВЧ-воздействия. Способ обеспечивает возможность объективной оценки эффекта воздействия электромагнитных миллиметровых волн КВЧ в условиях трехсоставной модели цитостатического воздействия. 1 табл., 3 пр.
Изобретение относится к космической медицине, в частности к способам моделирования эффектов пониженной гравитации в экспериментальных исследованиях. Способ включает перевод человека на период дневного бодрствования в ортостатическое положение с положительным углом наклона тела относительно горизонтальной оси. Этот угол равен процентному отношению заданного уровня гравитации к земному уровню гравитации, соответствующему углу ортостатического положения плюс (+) 90 градусов. На период ночного отдыха человека переводят в горизонтальное положение. Способ позволяет проводить длительные (более одного месяца) комплексные исследования при моделировании физиологических сдвигов в соответствии с рассчитанными коэффициентами для пониженного, по сравнению с земным, уровня гравитации на поверхностях других планет, например Луны или Марса. 1 з.п. ф-лы.
Изобретение относится к экспериментальной медицине и может быть использовано для изучения бактериальной инфекции на фоне ожоговой травмы. Способ заключается в том, что в качестве экспериментальной модели используют кроликов, которых в течение месяца содержат при температуре воздуха 24-26°C и кормят пищей, богатой злаками и древесиной. Затем под наркозом кроликам наносят ожог площадью 10-20% площади тела животного. Смесь культурабельных бактерий Pseudomonas aeruginosa и Staphylococcus aureus в концентрации 105-106 микробных клеток в общем объеме 1 мл смешивают с равным количеством 1% раствора фермента β-амилазы при температуре 24-26°C. Через 30 минут полученную взвесь вводят кроликам подкожно в объеме 1 мл смеси, учет развития бактериальной инфекции у экспериментальных животных проводят в течение 21 дня. Способ позволяет моделировать процесс в виде острой генерализованной инфекции, при которой вегетативные формы бактерий наиболее чувствительны к повреждающим воздействиям, что создает условия для разработки эффективных методов лечебно-профилактических мероприятий, направленных на ограничение инфекционных заболеваний. 2 табл., 2 пр.
Изобретение относится к экспериментальной медицине, психологии, психиатрии и касается определения психосоматического статуса животного при моделировании «боевого стресса». Для формирования стрессовой обстановки на двое суток крысам ограничивают прием пищи, сохраняя только питье. Помещают их в устройство, обеспечивающее ограниченное пространство, в котором между животными установлен только визуальный контакт без физического соприкосновения. На третьи сутки производят взрыв бездымного порохового заряда под устройством. Спустя 3 часа после взрыва в крови животного определяют уровень гемоглобина, натрия, мочевой кислоты, аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы, СОЭ, количество лейкоцитов. Оценивают поведение в течение последующих 8 часов. Оценку поведения производят по наличию позитивных реакций: повышенная активность, тревожность, суетливость, невозможность удерживаться на месте, чрезмерная агрессивность, отсутствие акта дефекации и мочеиспускания. Учитывают также негативные реакции: адинамичность, вплоть до полного обездвиживания, бездействие, статическая реакция, отказ от питания, трусость, наличие акта дефекации и мочеиспускания. Через 6 суток после начала эксперимента производят повторный анализ крови. В течение последних 2 суток эксперимента проводят оценку уровня стрессируемости животных по «реакции испуга» и психической работоспособности - по скорости нахождения выхода из двойного T-образного лабиринта. Изобретение повышает достоверность модели за счет воспроизведения реальной боевой обстановки, точности определения психосоматического статуса лабораторного животного, подвергшегося испытанию. 2 з.п. ф-лы, 1 пр.

Изобретение относится к моделированию в медицине и может быть применимо для моделирования экспериментальной кардиопатии. Старым крысам однократно вводят равнодолевую смесь нативного яичного альбумина и полного адъюванта Фрейнда из расчета по 0,2 мл в 5 точек инъекций: внутрибрюшинно, в паховые и подмышечные области слева и справа подкожно. Способ позволяет расширить возможности моделирования кардиомиопатии. 2 ил.

Изобретение относится к экспериментальной биологии, медицине и может быть использовано для изучения вопросов профилактики кардиопатии. Для этого в первый день эксперимента моделируют кардиопатию однократным подкожным введением крысам равнодолевой смеси нативного яичного альбумина и полного адъюванта Фрейнда. Введение осуществляют из расчета по 0,2 мл смеси в 5 точек инъекций: внутрибрюшинно, в паховые и подмышечные области слева и справа. Профилактику кардиопатии проводят путем ежедневного введения животным в течение 60 дней через зонд в желудок янтарной кислоты в дозе 1,5 ммоль/кг. 2 ил., 1 табл., 1 пр.

Изобретение относится к медицине и может быть использовано при моделировании переломо-дефекта длинной трубчатой кости. Наносят Z-образный распил длиной 2 мм вдоль оси кости для создания перелома. Формируют два дефекта, выполняя остеотомию проксимального и дистального отломков и отсекая диафизарную костную ткань. Фиксируют переломо-дефект билатеральным аппаратом внешней фиксации. Способ обеспечивает создание условий высокоэнергетической травмы, исключает травматичность за счет формирования протяженного продольно-поперечного перелома с наличием двух дефектов костной ткани, а также улучшает процессы трофики и консолидации отломков за счет стабильной внешней фиксации билатеральным аппаратом. 3 ил.,1 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии и нейрохирургии, и может быть использовано для изучения механизмов развития и течения послеоперационного рубцово-спаечного эпидурита, а также разработки методов профилактики и лечения этого заболевания у человека. Моделирование эпидурита включает доступ к остистым отросткам позвоночника крыс самцов линии Вистар на поясничном уровне путем рассечения фасции, раздвижения параспинальных мышц, а также последующее выполнение расширенной ламинэктомии. Перед выполнением доступа к остистым отросткам позвоночника отделяют хвост крысы, отступив от его основания не менее 2 см и накладывая на культю хвоста швы. Из отсеченной части хвоста выделяют межпозвонковый диск, который фрагментируют, и помещают полученный гомогенизат в стерильный физиологический раствор. Расширенную ламинэктомию на уровне Lv осуществляют путем резекции остистого отростка и выпиливания части позвоночной пластинки размером 3×3 мм, резецируют желтую связку и обнажают твердую мозговую оболочку спинного мозга. На поверхности оболочки размещают полученный гомогенизат аутологичного межпозвонкового диска и ушивают рану. Гистологические признаки эпидурита устанавливают на 15 сутки эксперимента. Способ обеспечивает получение в короткий срок качественной, длительно сохраняющейся модели эпидурита за счет выбора уровня позвоночника и создания условий для хронического аутоиммунного воспаления. 2 пр., 1 табл., 5 ил.

Изобретение относится к области медицины, а именно к экспериментальному акушерству и нефрологии, и может быть использовано при моделировании гестационного пиелонефрита. Для этого в эксперименте используют беременную крысу линии Vistar в возрасте 5 месяцев. Начиная с 3-го и по 11 день беременности крысу кормят в 8 часов утра смесью, содержащей 0,55 мг порошка синтетического глюкокортикоидного препарата «Преднизолон» и 10 г манной крупы. Способ обеспечивает упрощение моделирования, исключение септического шока, инфицирования и травматизации животных. 2 ил., 1 пр.
© Патентный поиск, поиск патентов на изобретения - FindPatent.RU 2012-2024
Политика конфиденциальности 2014-09-20 2014-09-20T15:31:10
Наверх