Способ выращивания гигантской устрицы crassostrea gigas в черном море

Способ выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море относится к марикультуре и предназначен для промышленного выращивания устриц в Черном море в контролируемых условиях.

В способе выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море, кондиционирование производителей осуществляют в течение 24 ч путем содержания без корма с постоянной аэрацией воды. Серотонин, растворенный в стерильной морской воде, вводят в межстворчатую жидкость по 1 мл/особь в концентрации 0,003%. Через 15 минут после оплодотворения проводят селекцию яйцеклеток по размерам. При культивировании яйцеклеток поддерживают плотность 50 тыс.яйц./л, на ранних и поздних стадиях развития личинок - соответственно 20 тыс.лич./л и 10 тыс.лич/л, на стадии оседания - до 1 тыс.лич./л. На всех стадиях развития устриц обеспечивают кормом, причем на ранних стадиях развития корм состоит из Isochrysis galbana и Chaeíoceros calcitróos в концентрации до 100 тыс. кл./мл при соотношении клеток 2:1, на поздних включает микроводоросли Isochrysis galbana, Chaeíoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica в концентрации корма до 200 тыс.кл./мл в при соотношении клеток 2:1:1:1 соответственно, а на стадии педивелигера в состав корма дополнительно вводят микроводоросль Skeletonema costatum (2 части) при общей концентрации 200-250 тыс.кл/мл. При кондиционировании производителей обмен фильтрованной морской воды производят дважды в сутки. Для селекции по размерам яйцеклетки собирают на мельничное сито с диаметром ячеи 32 мкм и промывают фильтрованной и стерилизованной морской водой. Эмбриональное развитие яйцеклеток проводят в стерилизованной морской воде с аэрацией.

Разработаны оптимальные условия для получения личинок и выращивания гигантской устрицы в питомнике. При выращивании проводится селекция, как производителей, так и личинок и контролируется весь цикл культивирования. Благодаря оптимизации всех этапов культивирования гигантской устрицы С. gigas появляется возможность создания полноцикличного устричного хозяйства для производства товарной устрицы в Черном море.

 

Предполагаемое изобретение относится к марикультуре и предназначено для промышленного выращивания устриц в Черном море в контролируемых условиях.

Гигантская устрица Crassostrea gigas является основным объектом культивирования во многих станах Европы, Азии, Африки, Америки и Австралии. Этот вид устриц отличается высоким темпом роста, устойчивостью ко многим болезням, высокими вкусовыми и лечебно-профилактическими качествами. В 70-е годы 20 ст. в Черном море запасы черноморской устрицы Ostrea edilus были почти полностью уничтожены раковинной болезнью. В этот период была осуществлена государственная программа интродукции гигантской устрицы Crassostrea gigas из Дальнего Востока. Однако до настоящего времени гигантская устрица не стала промысловым видом и не образовала природных поселений на Черном море из-за невозможности достижения необходимой численности производителей без массового подращивания молоди в питомниках.

Известен способ выращивания устрицы Crassostrea gigas (см Силкин Ю.А., Силкина Е.Н., Давидович Н.А., Давидович О.И., Орленко А.Н. Интродукция устрицы Crassostrea gigas в районе Карадага // Карадаг. История, биология, археология. -Симферополь: «СОНАТ», 2001. - С. 273-280). В июне партию половозрелых моллюсков (213 экз.) переносили в лабораторию. Т.к. большинство четырехлетних особей уже отнерестились в естественных условиях, то их стимулировали через сутки после доставки в аквариальную. Двухлетних устриц отсаживали на кондиционирование продолжительностью 20 суток, а затем подвергали стимуляции. Нерест стимулировали либо раствором серотонина концентрации 0,02% в мышцу или в мантийную полость (с одновременным повышением температуры воды до 28°С или без повышения); либо повышением температуры воды; либо внесением в воду раствора суспензии гонад самцов. После получения половых клеток проводили осеменение в 20-литровых аквариумах из оргстекла. Для очищения воду с гаметами пропускали через шелковое или капроновое газ-сито с диаметром ячеи 96 мкм.

Дробящиеся яйцеклетки переносили в пластиковый лоток объемом 100 л, а затем на стадии трохофоры в пластиковые бассейны объемом 5, 6 и 25 м3. Личинок и спат устриц выращивали в бассейнах с небольшим протоком воды на естественном корме, без дополнительного внесения микроводорослей. В качестве субстрата для осаждения личинок использовали створки мидий. Когда личинки переходили на стадию педивелигера, коллекторы выставляли в бассейны и, в течение недели, происходило оседание личинок. Через месяц спат размером 3,5÷5,0 мм выставляли в море. Доращивание до товарных размеров проводили в море на устричном носителе, глубина постановки которого составляет 14-20 м.

Известный способ обладает рядом недостатков:

- концентрация серотонина является питательной средой для микроорганизмов. Т.к. от момента введения раствора до вымета половых продуктов происходит 1-4 часа, а скорость размножения микроорганизмов увеличивается с повышением температуры воды, то происходит интенсивное осеменение микроорганизмами среды и яйцеклеток;

- оплодотворенные яйцеклетки не промываются стерильной морской водой, что является причиной низкой выживаемости личинок на ранних стадиях развития;

- введение шприцом раствора серотонина в мышцу моллюсков травмирует мягкие ткани и приводит к гибели производителей;

- т.к. диаметр яйцеклетки составляет 50-70 мкм, то при очистке суспензии оплодотворенных яйцеклеток через газ-сито с диаметром ячеи 96 мкм проходят яйцеклетки с лишними сперматозоидами, что приводит к полиспермии и нарушениям эмбрионального развития;

- развитие оплодотворенных яйцеклеток происходит в воде, где проводили стимуляцию нереста производителей. Содержание биогенов в такой воде значительно превышает предельно-допустимые концентрации;

- концентрация микроводорослей в морской воде значительно ниже необходимой для полноценного питания личинок и спата устриц. Забор воды непосредственно из моря и без осуществления предварительной очистки приводит к тому, что вместе с микроорганизмами поступают личинки зоо- и меропланктона, что создает пищевую конкуренцию личинкам устриц и влияет на их выживаемость;

- было получено 20 тыс. спата моллюсков, что составляет 0,4% от начального значения, и это свидетельствует об очень низкой выживаемости;

- применяемые в схеме устричного носителя рамки с устрицами препятствуют линейному росту моллюсков, их дыханию и фильтрации.

В основу изобретения «Способ выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море» поставлена задача путем разработки оптимальных условий нереста, выращивания личинок и получения жизнестойкой молоди в искусственных условиях, обеспечить возрождение устриеводства на Черном море.

Поставленная задача реализуется следующим образом.

В способе выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море, кондиционирование производителей осуществляют в течение 24 ч путем содержания без корма с постоянной аэрацией воды. Серотонин, растворенный в стерильной морской воде, вводят в межстворчатую жидкость по 1 мл/особь в концентрации 0,003%. Через 15 минут после оплодотворения проводят селекцию яйцеклеток по размерам. При культивировании яйцеклеток поддерживают плотность 50 тыс.яйц./л, на ранних и поздних стадиях развития личинок - соответственно 20 тыс.лич./л и 10 тыс.лич/л, на стадии оседания - до 1 тыс.лич./л. На всех стадиях развития устриц обеспечивают кормом, причем на ранних стадиях развития корм состоит из Isochrysis galbana и Chaetoceros calcitrans в концентрации до 100 тыс. кл./мл при соотношении клеток 2:1, на поздних включает микроводоросли Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricomutum, Tetraselmis suecica в концентрации корма до 200 тыс.кл./млв при соотношении клеток 2:1:1:1 соответственно, а на стадии педивелигера в состав корма дополнительно вводят микроводоросль Skeletonema costatum (2 части) при общей концентрации 200-250 тыс.кл/мл. При кондиционировании производителей обмен фильтрованной морской воды производят дважды в сутки. Для селекции по размерам яйцеклетки собирают на мельничное сито с диаметром ячеи 32 мкм и промывают фильтрованной и стерилизованной морской водой. Эмбриональное развитие яйцеклеток проводят в стерилизованной морской воде с аэрацией.

Преимущества применяемой стимуляции нереста состоят в том, что производители остаются живыми после стимуляции, происходит нерест только зрелых сперматозоидов и яйцеклеток, что обеспечивает высокую выживаемость личинок. Раствор серотонина концентрации 0,003% является оптимальным для стимуляции нереста гигантской устрицы, т.к. концентрация на порядок ниже не вызывает стимуляцию, а на порядок выше - создает питательную среду для микроорганизмов, находящихся в мантийной полости устриц. Проведение селекции обеспечивает прохождение раннего эмбриогенеза без нарушений, а также сортировку яйцеклеток по размерам. Многофакторные эксперименты, проведенные авторами, позволили определить оптимальные величины плотности посадки, состава корма и концентрации микроводорослей, которые обеспечивают высокую выживаемость, темп роста и влияют на продолжительность выращивания.

Предполагаемое изобретение поясняется фотографиями. Фиг. 1 - Пластина из пищевой пластмассы - субстрат для оседания личинок гигантской устрицы. Фиг. 2 -Коллектор из пластмассовых чашечек для оседания личинок гигантской устрицы. Фиг. 3 - садок для подращивания устриц в море до товарного размера.

Способ реализуется следующим образом.

Кондиционирование производителей. Созревание производителей происходит в природных условиях в садках на глубине 2-3 метров при оптимальной плотности посадки. Сбалансированное питание и естественный ход температуры дают возможность получить половые продукты высокого качества, что впоследствии обеспечивает высокую выживаемость личинок.

Маточное стадо составляют из производителей разного возраста для обеспечения баланса полов, поскольку среди младших возрастных групп преобладают самцы, а среди старших - самки. Для избежания инбридинга количество производителей должно быть не менее 100 экз. Во второй декаде июня, когда температура воды на глубине месторасположения устриц составляет 18°С, а луна входит в фазу полнолуния (нерест устриц в природе происходит во время прилива), производителей переносят в питомник для кондиционирования. Очищенных производителей распределяют по сетке, размещенной в прямоугольной емкости на высоте 10 см от дна. Емкость предварительно заполняется фильтрованной морской водой с температурой 20°С. Производителей содержат без корма с постоянной аэрацией воды. Обмен воды производят дважды в сутки. В течение этого периода у производителей очищается кишечник и жабры, что обеспечивает получение чистых половых продуктов. Стимуляция нереста и получение половых продуктов. Нерест устриц начинается на вторые сутки. Первыми начинают нереститься самцы; их переносят в отдельную емкость от самок. При необходимости срочного получения половых продуктов, или при невозможности получения их первым способом (когда, например, луна находится в других фазах), применяют стимуляцию нереста производителей. Растворенный в фильтрованной морской воде серотонин (C14H19N5O2·H2SO4), в концентрации 0,003%, вводят при помощи шприца в межстворчатую жидкость по 1 мл/особь. Ткани устрицы-производителя при этом не травмируются.

Проведение оплодотворения. Через 15 минут после оплодотворения яйцеклетки собирают на мельничное сито с диаметром ячеи 32 мкм и промывают фильтрованной морской водой, прошедшей стерилизацию. Дальнейшее эмбриональное развитие проходит в стерильной морской воде с аэрацией при плотности 50 тыс.яйц./л.

Выращивание личинок гигантской устрицы. Температура воды в течение периода выращивания поддерживают на уровне 21-24°С, что соответствует температуре, при которой происходит размножение и развитие личинок в природных условиях. Оптимальной для роста личинок на стадии велигера является плотность посадки до 20 тыс.лич./л. Корм состоит из Isochrysis galbana и Chaetoceros calcitrans в концентрации до 100 тыс.кл./мл при соотношении клеток 2:1.

На поздних стадиях развития оптимальной является плотность посадки до 10 тыс.лич/л, концентрация корма - до 200 тыс.кл./мл и состав микроводорослей Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricomutum, Tetraselmis suecica в соотношении клеток 2:1:1:1. На стадии педивелигера в состав корма вводят еще одну микроводоросль- Skeletonema costatum (2 части).

Выращивание личинок проводят в цилиндрических емкостях из пластика, объемом 100 литров при постоянной аэрации и ежедневной подаче корма. В первую неделю культивирования личинок замена воды производят ежедневно, в последующие недели - через двое суток.

Оседание личинок. Для оседания устриц используют коллекторы в виде пластин или чашечек из пищевой пластмассы (фиг. 1, 2). Перед оседанием субстраты выдерживают в море в течение 1 месяца, затем проводят их очистку и дезинфекцию. Через 2 недели после оседания, спат размером 2-3 мм выставляют в море для доращивания. Применяемый тип субстрата позволяет разделять спат без потерь, независимо от плотности оседания. Темпы роста спата, прикрепленного к пластинам, в 1,6 раза выше, чем на осколках раковин мидий.

Проведение оседания. Педивелигеров размерами 325 мкм переносят в емкость с подготовленными коллекторами. Плотность личинок составляет 1 тыс. лич./л; концентрация корма - 200-250 тыс.кл./мл. Состав микроводорослей аналогичен предыдущему. Интенсивность аэрации воды снижена. Полную замену воды проводят через двое суток. По истечении 3 суток оседание заканчивается. Коллекторы с осевшим спатом переносят в емкость для подращивания.

Подращивание спата устриц в море до товарного размера. В конце октября -начале ноября, при достижении размеров 35-40 мм, спат гигантской устрицы снимают с субстрата, разделяют и переносят в садки на доращивание. В качестве садков используют обшитые делью пластмассовые ящики с отверстиями. Размеры садков -37×28×10 см (I тип) и 47×28×11 см (И тип). Садки промываются морской водой со всех сторон, устрицы свободно открывают створки для дыхания и питания; свободное расположение устриц не мешает их росту.

При оптимальных условиях выращивания устрицы достигают товарного размера 85- 120 мм за 1,5-2 года.

Пример реализации способа.

В апреле 2003 года из всей выборки устриц Crassostrea gigas, выращиваемых на мидийно-устричной ферме в бухте Карантинная, проводили отбор производителей разного возраста (1-3 года) в количестве 140 экз. Устриц распределяли по садкам (по 35-40 экз.) и подвешивали в море на глубине 2-3 м. В июне, при повышении температуры воды до 18°С, половину производителей перенесли в лабораторию, провели механическую очистку раковин от обрастания и поместили в емкость объемом 250 л. Устриц содержали без корма в течение 24 часов в стерильной морской воде с аэрацией при температуре 20,4°С. За это время дважды проводили смену морской воды.

Стимуляция нереста. Одновременно применили температурную и химическую стимуляцию нереста (т.к. луна находилась в фазе роста). Температуру воды повысили до 23°С. Десяти устрицам в межстворчатую жидкость был введен раствор серотонина концентрации 0,003% в количестве 1 мл/особь. Через 1,5 часа первыми начали нереститься стимулированные серотонином самцы, затем остальные устрицы. Самок и самцов рассаживали по отдельным емкостям. Через час после начала нереста яйцеклетки собрали на газ-сито с размером ячеи 32 мкм и перенесли в 10 л емкость со стерильной морской водой с аэрацией. Туда добавили суспензию сперматозоидов (200 мл) молочного цвета. Через 15 мин. оплодотворенные яйцеклетки снова собрали на газ-сито, промыли стерильной морской водой и перенесли в другую емкость. Раннее эмбриональное развитие устриц проходило при плотности посадки 50 тыс. эмбрионов/л в объеме 20 литров при температуре 22°С. Оценивали зрелость яйцеклеток, а также процесс оплодотворения и раннего эмбрионального развития при помощи микроскопа МБИ-6.

Выращивание личинок. Через сутки при помощи газ-сита (56 мкм) велигеров перенесли в стерильную морскую воду с аэрацией. Плотность посадки личинок составила 10 тыс.лич./л; кормили золотистой микроводорослью Isochrysis galbana концентрации 50 тыс.кл./мл в течение 3 дней, затем постепенно увеличивали концентрацию до 100 тыс.кл./мл, добавляя одну часть Chaetoceros calcitrans. В течение первой недели обмен воды проводили ежедневно при помощи газ-сита (84-140 мкм в зависимости от размеров личинок), затем через день. Стадия велигера продолжалась 8-10 дней; прирост составил до 10 мкм/сут при выживаемости личинок 82%. На стадии великонхи личинок содержали при плотности посадки 5 тыс.лич./л и температуре воды до 24°С. В состав корма постепенно вводили другие виды микроводорослей (Phaeodactilum tricomutum, Tetraselmis suecica) концентрации от 150 до 200 тыс.кл./мл. Продолжительность этой стадии - 14-17 суток. Среднесуточный прирост личинок составил 15-19 мкм/сут. при выживаемости 60,2%. Стадия педивелигера продолжалась 3-5 суток. В состав корма была введена еще одна микроводоросль Sceletonema costatum (2 части), а концентрация корма увеличена до 250 тыс.кл./мл. Выживаемость педивелигеров до 25%.

Оседание личинок. Педивелигеров собирали на газ-сито с размером ячеи 210 мкм и перенесли в подготовленную емкость с субстратами для оседания (створки раковин мидии и чашки из пищевой пластмассы). Плотность посадки педивелигеров - 1 тыс/л; состав и концентрация корма аналогичны предыдущему. Оседание продолжалось 3 суток. При полной замене воды на вторые сутки, было выявлено, что оседание завершилось.

Подращивание спата._Спат подращивали в течение 2 недель. Подачу корма осуществляли два раза в сутки, суммарная концентрация увеличена в два раза. Состав микроводорослей аналогичный предыдущему. Смену воды проводили ежедневно. Температура воды - до 25°С. Среднесуточный прирост спата составил 110-190 мкм. При размерах спата 2-5 мм, коллекторы были выставлены в море на доращивание. Чтобы сохранить спат от опадания и выедания рыбами, на коллекторы одевали рукава, сшитые из дели (размер ячеи 1 см).

Разделение спата. В конце октября - начале ноября спат снимали с субстрата, разделяли по одному экземпляру и распределяли по садкам. Некоторые условия выращивания и линейно-весовые характеристики представлены в Таблице. Количество спата определяли «объемным методом», который заключается в определении среднего количества особей в 6 выборках, отобранных цилиндрическим стаканом объема 1,5 л. Суммарное количество спата составило около 65 тыс. или 6,5% от изначального количества яйцеклеток.

Таблица

Оптимальные условия содержания гигантской устрицы при доращивании в море

Преимущества предлагаемого способа выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море заключаются в том, что разработаны оптимальные условия для получения личинок и выращивания гигантской устрицы в питомнике. При выращивании проводится селекция, как производителей, так и личинок и контролируется весь цикл культивирования. Благодаря оптимизации всех этапов культивирования гигантской устрицы С. gigas появляется возможность создания полноцикличного устричного хозяйства для производства товарной устрицы в Черном море.

1. Способ выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море, включающий формирование маточного стада, проведение в питомнике кондиционирования производителей, стимуляцию нереста раствором серотонина, получение половых продуктов, выращивание личинок и спата, осаждение личинок на субстрат и доращивание устриц до товарных размеров в море, отличающийся тем, что кондиционирование осуществляют в течение 24 ч путем содержания без корма, а серотонин, растворенный в стерильной морской воде вводят в межстворчатую жидкость по 1 мл на особь в концентрации 0,003%, через 15 минут после оплодотворения промывают стерильной морской водой яйцеклетки и поддерживают их плотность на уровне 50 тыс. яйц./л, после чего на ранних и поздних стадиях развития личинок поддерживают их плотность на уровне 20 тыс. личинок/л и 10 тыс.личинок/л, а на стадии оседания - до 1 тыс.лич./л, обеспечивая кормом на всех стадиях развития, причем на ранних стадиях корм состоит из Isochrysis galbana и Chaetoceros calcitrans в концентрации до 100 тыс.клеток/мл при соотношении клеток 2:1, на поздних включает микроводоросли Isochrysis galbana, Chaetoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica в концентрации корма до 200 тыс.клеток/мл при соотношении клеток 2:1:1:1 соответственно, а на стадии педивелигера в состав корма дополнительно вводят микроводоросль Skeletonema costatum (2 части) при общей концентрации 200-250 тыс. клеток/мл.

2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что кондиционирование проводят при постоянной аэрации и обмене стерильной морской воды 2 раза в сутки.

3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что яйцеклетки собирают на мельничное сито с диаметром ячеи 32 мкм и промывают стерильной морской водой.

4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что эмбриональное развитие яйцеклеток проводят в стерильной морской воде с аэрацией.



 

Похожие патенты:

Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) относится к области морской аквакультуры и может быть использован для проведения экспериментальных работ по морской биологии, физиологии и биохимии и для биологического тестирования в области морской токсикологии, а также при выращивании личинок ценных морских рыб. В способе, отловленных из природных условий самок калянуса выдерживают в дезинфекционном растворе при температуре 15°С в течение 1,5 часов с добавлением микроводорослей Exuviaella cordata, после чего осуществляют процедуру подготовки для синхронизации массового получения яиц, получают синхронную массовую продукцию яиц, из которых производят синхронный выклев науплиев и получают синхронные возрастные когорты калянуса. Преимущества способа заключаются в том, что впервые предложены оптимальные температурные, трофические и плотностные условия для синхронизации и стандартизации процессов продуцирования яиц самками калянусов, развития и выклева яиц калянусов, развития и роста молоди калянусов до достижения последней жизненной стадии.
Способ мелиорации прибрежных экосистем относится к морской биотехнологии и предназначен для ликвидации негативных последствий антропогенного влияния на прибрежные морские экосистемы. В способе определяются основные параметры, отражающие негативное состояние района, акватории, сообщества, экосистемы, например переэфтрофикация среды, дисбаланс биогенов, недостаток организмов-фильтраторов, дефицит меро- или ихтиопланктона.
Способ предусматривает обработку икры и личинок рыб биологически активными веществами, содержащими микробную массу бактерий. До нереста в состав ежедневного рациона для производителей вводят пробиотик "Пролам" в количестве 0,6% по отношению к массе корма.

Изобретение относится к культивированию двустворчатых моллюсков с планктонной личинкой. Способ предусматривает сбор и содержание в искусственных условиях взрослых моллюсков, стимулирование нереста, оплодотворение яиц, содержание развивающихся яиц до момента выплыва личинок, отбор и рассаживание личинок по отдельным емкостям и доращивание личинок в морской воде.

Изобретение относится к аквакультуре и может найти применение для искусственного разведения рыб в условиях малых рыбоводных предприятий. Способ защиты рыб на ранних этапах онтогенеза осуществляют обработкой масляным раствором серусодержащего антиоксиданта (3,5-диметил-4-гидрокси)бензилтиододекан в процессе обесклеивания оплодотворенной икры.

Изобретение относится к области насосной техники и используется для перекачки живой взрослой рыбы, личинок и молоди с потоком воды в рыбоотводах рыбозащитных сооружений и при промышленном лове рыбы.
Способ предусматривает прием однодневных личинок и высаживание их с плотностью посадки 5000 экз./м2 в садки, где личинки проходят адаптацию. После перехода личинок на активное питание плотность посадки уменьшают до 1500 экз./м2, при этом до достижения средней массы тела рыб 1 г в садке используют стенки из сита №9-12, а дно из сита №17.
Способ предусматривает круглогодичное регулирование температурных режимов и их длительности с изменением температуры воды на 1-2°C в сутки. Производителям осетровых рыб в период выращивания и межнерестового нагула вводят путем внутримышечных инъекций препарат Гамавит.
Изобретение относится к способу искусственного размножения морского огурца. Способ включает сбор и стимуляцию особей к размножению путем деления.

Сетка представляет собой плетенку, изготовленную из отдельных спирально изогнутых продольных элементов. Изогнутые с образованием цилиндрической формы продольные элементы переплетают со смежными продольными элементами и расплющивают таким образом, что у отдельных изогнутых продольных элементов образуются приблизительно прямые проволочные участки.

Способ диагностики и профилактики проктэкозиса черноморских мидий в условиях марикультуры. Изобретение относится к биотехнологии и предназначено для диагностики и профилактики паразитарного заболевания черноморской мидии Mytilus galloprovincialis на мидийных фермах. У мидий изучают клинические признаки заболевания, по которым отбирают мидий для паразитологического анализа. Моллюсков считают слабо зараженными при содержании в одной мидии до 100 экз. спороцист, средне зараженными при содержании в одном моллюске до 150-500 партенит, сильно зараженными при содержании в одной мидии от 600 до 5000 партенит, гиперинвазироваными, если в одной мидии содержится свыше 6000 спороцист. В зависимости от этого проводят профилактические меры. Если мидия слабо зараженная, то увеличивают частоту отбора контрольных проб на ферм в 2-3 раза. Если средне зараженная мидия, то увеличивают объем выборки в пробе в 2 раза и регулируют плотность размещения коллекторов на носителях. Если сильно зараженная, то осуществляют выбраковывание ослабленных мидий на коллекторах и сбор опавших на дно мидий. Если мидия гиперинвазированная, то перемещают фермы в другое место.

Изобретение относится к рыбоводству и может быть использовано для учета биомассы и количества личинок. Устройство включает подвижную камеру, снабженную сеткой, резервуар для накопления гидробионтов и счетчик. Камера выполнена в виде эксцентрического ковша на шарнирах и соединена с механическим счетчиком. Личинки поступают с потоком воды из инкубационного аппарата в ковш через переходной лоток. Резервуар для накопления личинок расположен под эксцентрическим ковшом. Все элементы конструкции крепятся на несущей раме. Изобретение позволяет повысить точность учета личинок и уменьшить их травматизм. 1 ил.

Устройство состоит из абсорбционного аммиачного холодильного агрегата, включающего, в частности, термосифон и испаритель. Устройство оснащено параболическим зеркалом, концентрирующим солнечные лучи на термосифоне холодильного агрегата. Параболическое зеркало механически соединено с солнечной батареей, которая, в свою очередь, соединена с аккумуляторной батареей, блоком определения положения солнца и двигателем, приводящим в движение параболу с солнечной батареей. Изобретение позволяет использовать солнечную энергию для понижения температуры воды. 1 ил.

Способ получения питательной основы микробиологических сред относится к биотехнологии. Способ предназначен для получения основы для приготовления микробиологических питательных сред из сырья морского генеза и может быть использован в медицинской и технической микробиологии, в научно-исследовательской и практической работе для выделения и культивирования микроорганизмов. В способе получают щелочной гидролизат из моллюсков и соединяют с кислотным гидролизатом из рыбного сырья в соотношении 1:3-3:1, чтобы количество аминного азота была в пределах 600-900 мг %. Гидролиз гомогената рыбного сырья выполняют в кислотной среде. При приготовлении кислотного гидролизата из рыбного сырья к гомогенату рыбного сырья прибавляют 18-20%-ный раствор соляной кислоты до рН 4,5-5,0 и нагревают до 45-50°С на протяжении 22-26 ч, затем прибавляют концентрированную ортофосфорную кислоту до остаточной концентрации кислоты на равные 2% и осуществляют прогревание гомогената рыбного сырья при 100°С на протяжении 22-26 ч, затем гидролизат из рыбного сырья нейтрализуют добавлением 40%-ного раствора едкого натра до рН 6,8-7,4. При приготовлении щелочного гидролизата из моллюсков к измельченному сырью из моллюсков прибавляют 1,0%-ный раствор едкого натра в соотношении 1:1 и осуществляют гидролиз при 80°С на протяжении 20 - 24 ч, затем гидролизат из моллюсков нейтрализуют с добавлением концентрированной соляной кислоты до рН 6,8-7,4. Гидролиз сырья из моллюсков осуществляют к получению количества аминного азота в пределах 240-450 мг %. Соединение кислотного гидролизата из рыбного сырья со щелочным гидролизатом из моллюсков осуществляют с операцией нейтрализации гидролизата из рыбного сырья со следующим корректированием кислотности биомассы до pH 6,8-7,4. Кислотность полученной основы для микробиологических питательных сред корректируют до pH 7,0. Достигнуто расширение сырьевой базы и улучшение экологических условий производства.

Способ выращивания гетерозисных личинок гигантской устрицы Crassostrea gigas (Th) при культивировании в питомнике относится к марикультуре и предназначен для промышленного культивирования гигантской устрицы на Черном море в условиях питомника. В питомнике Института биологии южных морей НАН Украины (Севастополь) в 2006 г. получены гетерозисные гибриды гигантской устрицы Crassostrea gigas. В качестве производителей были использованы трехлетние устрицы из двух географически изолированных поселений: черноморского (инбредная линии) и атлантического. Черноморская когорта устриц отличалась более плоской формой раковины: индекс формы раковины (IF) равнялся соответственно 2,15 и 2,50. Инбредная линия устриц была выведена в результате скрещиваний между сибсами и при возвратных скрещиваниях. В пятом поколении достигнут «инбредний минимум», о чем можно было судить при сравнении с выживаемостью личинок четвертого поколения. Гетерозисные личинки, выращиваемые в условиях плотности посадки в три раза превышающей оптимальные значения, по скорости роста (в 1,2 раза) и выживаемости (в 2,5 и 4 раза) превышали потомков атлантической когорты устриц и личинок инбредной линии.

Способ изучения пополнения поселений мидии, митилястера и анадары в прибрежной зоне Черного моря относится к научным исследованиям в области экологии. Способ состоит в том, что в фиксированной точке исследуемой акватории в сезон оседания личинок (для мидий - на протяжении всего года, для митилястера и анадары - летом и осенью) ежемесячно экспонируется носитель с экспериментальными субстратами. После окончания 30 дней проводят замену носителя и определяют число личинок, которые осели на экспонированный субстрат. Перед экспонированием на носителе размещают не менее чем 2 субстрата с ворсистой поверхностью, а каждый субстрат выполняют в виде полосы шириной 3-6 см из акриловой комплексной нити, которую размещают плотно в один слой на цилиндрической части пластикового каркаса.
Способ интенсивного выращивания мальков камбалы калкан относится к морскому рыбоводству и может использоваться на рыбоводческих фермах для получения в искусственных условиях правильно метаморфизированной молоди черноморской камбалы калкан для зарыбления прибрежных акваторий или дальнейшего товарного производства. В соответствии со способом, бассейн заполняют на 2/3 стерильной морской водой с температурой 18,0±0,5°С за 2 дня до внесения личинок с начальной плотностью 40-50 экз./л, обеспечивая двухуровневую продувку воздухом. Коловраток вносят за 12 часов до начала внешнего питания и на протяжении 6 часов после начала питания личинок повышают концентрацию коловраток до 3 экз./мл, потом в возрасте 6 дней - до 4 экз./мл, и к достижению возраста 13 дней личинок кормят коловратками порционно, корректируя плотность коловраток сначала каждые 6 часов (до 7 дневного возраста), а потом каждые 12 часов (до 13 дневного возраста). В возрасте 12-13 дней в рацион личинок добавляют личинки артемии из расчета не более 0,1 экз./мл (1 раз на день), на 14-15 день личинок переводят на кормление метанауплиями артемии, ас 18-19 дня дополняют корм (1 раз в 2 дня) копеподитами копепод (0,1 экз./мл). На 30-35 день личинкам дают пробный инертный корм, увеличивая продолжительность первого кормления инертным кормом до 3 часов, вырабатывая постепенную замену кормления 2-суточными насыщенными метанауплиями артемий. В возрасте 45-50 дней личинок полностью переводят на питание инертным кормом, подкармливая копепод 2 раза в неделю из расчета не менее 100 копепод на личинку.

Способ подготовки кормов для выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море в условиях питомника включает культивирование микроводорослёй в накопительном и проточном режимах с применением модифицированной среды Конвея, причем на стадии велигера используют микроводоросли, которые культивируют в течение 17-ти дней в накопительном режиме, для стадии великонхи применяют 10-дневные микроводоросли, которые культивируют в проточном режиме и для стадии педивелигера микроводоросли проходят 24-дневное культивирование в накопительном режиме.

Способ получения гидролизата из моллюсков относится к отрасли биотехнологии и предназначается для получения белково-углеводного гидролизата из моллюсков, который может быть использован в качестве сырья для фармакологических и косметических препаратов, а также для получения пищевых примесей лечебно-профилактического действия. В соответствии со способом, ткани моллюсков, освобожденных от межстворчатой жидкости, вместе со створкой выдерживают при температуре +2÷+5°С в течение 3-4 суток, после чего измельчают. Из измельченной массы экстрагируют биологически активные вещества тройным объемом кипящей воды, оставшийся осадок гидролизуют, затем объединяют водный экстракт и полученный гидролизат.
Изобретение относится к способу получения молоди (спата) мидий Mytilus galloprovincialis для выращивания в Черном море, который включает стимулирование нереста, обеспечение кормом на всех стадиях развития и сбор молодняка (спата) на коллекторы. Способ включает процессы нереста мидий, доращивание личинок и осаждение на коллекторы, которые проводят в питомнике, где плодников отбирают по фону - темно-синей (черной) окраске створок, и стимулируют их нерест весной резким повышением температуры воды на 5-10°С относительно температуры содержания, а осенью - снижением на 5-10°С, потом выращивают полученные личинки при постоянной аэрации, обеспечивая кормом 1-2 раза каждый день: на стадии велигер используют микроводоросли Isochrysis galbana + Monochrysis lutheri в суммарной концентрации 40-50 тыс. кл./мл; на стадии великонхи и педивелигера -микроводоросли Isochrysis galbana + Monochrysis lutheri + Phaeodactylum tricornutum в суммарной концентрации 70-100 тыс. кл./мл.
Наверх