Способ определения нематоцидной активности авермектинсодержащих субстанций и препаратов



Способ определения нематоцидной активности авермектинсодержащих субстанций и препаратов

Владельцы патента RU 2637087:

Мирзаева Карина Микаилевна (RU)

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к способу биотестирования активности противопаразитарных субстанций и препаратов, содержащих в качестве активного вещества авермектины и их производные, с помощью олигохет вида Tubifex tubifex. Сущность способа заключается в том, что готовятся разведения авермектинов (0,5 до 50 мкг/мл), в которые вносятся олигохеты по 15-20 особей и инкубируют в течение 1-2 ч при температуре 27-30°С. Далее оценивают биоцидное действие авермектинов по поведенческой реакции олигохет, причем об активности препарата судят по отсутствию сползания тест-объектов в клубок в результате различной степени паралича. Достигаемый технический результат заключается в стандартизации, повышении чувствительности и экспрессности способа биотестирования активности авермектинсодержащих субстанций и препаратов с использованием поведенческой реакции олигохет вида Tubifex tubifex, основанной на их нейрохимических особенностях метаболизма. Преимущества способа заключаются в низкой трудоемкости и стоимости, быстроте анализа, доступности, высокой чувствительности (до 1,0 мкг/мл). 2 з.п. ф-лы, 1 табл., 4 пр.

 

Изобретение относится к области биотехнологии и касается способа тестирования биоцидной активности противопаразитарных субстанций и препаратов, содержащих в качестве активного вещества авермектины и их производные.

Актуальность разработки экпресс-способов определения нематоцидной активности авермектинов связана с тем, что эти вещества являются основой наиболее востребованных современных противопаразитарных препаратов широкого спектра действия. Поэтому постоянно ведутся работы в направлении создания новых авермектинсодержащих субстанций и препаратов и эти работы предполагают наличие соответствующих относительно точных и быстрых методов выявления нематоцидной активности исследуемых веществ.

Известен способ определения нематоцидной активности авермектинов в системах in vitro с использованием в качестве чувствительного тест-организма нематоды Aphelenchoides bessei (Патент RU 2013053 С1, A01N 63/00, опубл. 30.05.1994). Способ заключается в том, что готовят растворы авермектинов в различных концентрациях, в которые вносят нематоды вида Aphelenchoides bessei (10-20 особей) и культивируют в течение 1-3 ч при 28-36°С, рН 5,5-8,0. В результате под микроскопом подсчитывают общее количество нематод в каждом из разведений авермектинов, вычисляют процент смертности нематод в каждом разведении и находят концентрацию исследуемого образца авермектина, при которой смертность нематод составляет 50% (СК50). Нематоцидную активность определяют путем сравнения СК50 исследуемого образца авермектинов и эталонного образца известной концентрации.

Недостатком данного способа является длительность процедуры определения, низкая точность определения физиологического состояния нематод под микроскопом при подсчете СК50.

Известен также способ определения биоцидной активности различных веществ с помощью олигохет (Потапов Д.С., Стом Д.И., Антонова Е.В. // Бюллетень ВСНЦ СОРАМН. - Иркутск, 1998. - №2 (8). - С. 156-159). В ходе определения олигохеты (Eisenia fetida, Ehchytraeus albidus и Tubifex tubifex) помещают в 30 мл испытуемого раствора, где основным критерием оценки служит выживаемость олигохет через 24 ч. При помещении червей в максимально недействующие концентрации исследуемых веществ их тело непрерывно сокращается и они пытаются выползти из раствора.

Недостатком данного способа является его низкая чувствительность и длительность получения результата в силу того, что олигохеты погибают при продолжительном (24 ч) воздействии высоких концентраций.

Наиболее близким аналогом по технической сущности к предлагаемому изобретению является способ биотестирования активности препаратов, по оценке поведенческой реакции олигохет, помещенных в раствор изучаемого препарата (Патент RU 2377561 С2, G01N 33/18, A01K 67/033, опубл. 27.03.2011). Препарат смешивают с водой, а затем в полученный раствор помещают олигохеты (Mesenchytraeus bungei, Tubifex tubifex), выдерживают в течение 30 мин и далее определяют активность препарата по поведенческой реакции тест-объектов. Критерием активности препарата является отсутствие сползания олигохет в клубок в присутствии активного вещества в результате конвульсивных сокращений их тел и обездвиживания (минимальная нечувствительная доза - 1 мг/мл воды). Таким образом, для диагностики активности препарата используется конкретная поведенческая реакция сползания олигохет, а не их выживаемость.

Недостатком данного способа является низкая точность анализа из-за отсутствия стандартизованных параметров и режимов осуществления методики. Кроме того, в известном способе не используется опорная концентрация испытуемых веществ, что не позволяет установить конкретные качественные характеристики испытуемого образца на основании получаемых результатов, т.е. отсутствует сравнение биологической активности исследуемого вещества со стандартным образцом и это не дает возможности выражать действие веществ в количественных единицах.

Задачей предлагаемого изобретения является разработка высокочувствительного и точного экспресс-метода количественной оценки биоцидной активности субстанций и препаратов, содержащих в качестве активного вещества авермектины и их производные, с помощью олигохет вида Tubifex tubifex.

Техническим результатом заявленного изобретения является стандартизация, повышение чувствительности и экспрессности способа биотестирования активности противопаразитарных субстанций и препаратов, содержащих в качестве активного вещества авермектины, с использованием поведенческой реакции олигохет вида Tubifex tubifex, основанной на нейрохимических особенностях метаболизма.

Технический результат изобретения достигается за счет использования механизма действия авермектинов (основной мишенью являются глутаматчувствительные хлорные каналы и рецепторы гамма-аминомасляной кислоты), воздействующих на нейрональную сигнальную систему олигохет вида Tubifex tubifex, вызывая у них паралич и нарушение поведенческой реакции, которая заключается в отсутствии сборки в клубок.

Сущность изобретения заключается в следующем: олигохеты по 15-20 особей помещают в растворы, содержащие различные концентрации (от 0,5 до 50 мкг/мл) авермектинов, выдерживают в течение 1-2 ч в термостате при 27°С-30°С. При этом каждые 15-20 мин определяют активность исследуемых образцов по поведенческой реакции олигохет (сползания в клубок), т.е. по степени паралича.

В результате вычисляют процент паралича олигохет в каждом разведении по формуле:

,

где А - общее количество олигохет,

В - количество олигохет с нарушенной подвижностью.

Биоцидную активность исследуемого вещества определяют путем оценки степени паралича у тест-объектов в испытуемом образце и контроле. В качестве контроля используют реакцию олигохет, помещенных в водопроводную воду.

Для получения стандартизованного тест-объекта олигохеты вида Tubifex tubifex можно культивировать в лабораторных условиях (Богданов Т.О. Выживаемость и плодовитость Tubifex tubifex (Tubiflcidae) при содержании и разведении в лабораторных условиях. // Вестник Челябинского государственного университета №04, Биология, Выпуск 1. - Челябинск, 2008. - С. 105; Воробьев Д.С., Франк Ю.А., Лушников С.В., Залозный Н.А., Носков Ю.А. Использование Limnodrilus hoffmeisteri (Tubificidae, Oligochaeta) в очистке донных отложений от нефти и нефтепродуктов. // Сибирский экологический журнал. - Новосибирск, 2010. - Т. 17, №1. - С. 21-27).

Так как выращенная в лабораторных условиях культура Tubifex tubifex довольно устойчивая, это позволяет длительное время (до 1 месяца) хранить ее в колбах с водой и хранят в холодильнике при температуре 4-7°С, периодически промывая водой.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами.

Пример 1. Определение биоцидной активности ивермектина.

Готовят рабочий 1% раствор ивермектина в 96%-ном этаноле (изопропиловом спирте) с концентрацией 10000 мкг/мл. Из него на дистиллированной воде приготавливают серию разведений вещества со следующими концентрациями:

№1 - 50 мкг/мл,

№2 - 25 мкг/мл,

№3 - 10 мкг/мл,

№4 - 5 мкг/мл,

№5 - 2,5 мкг/мл,

№6 - 1 мкг/мл,

№7 - 0,5 мкг/мл.

Полученные растворы вносят в лунки на микробиологическом планшете или чашки Петри в количестве 15-20 мл, затем в растворы пинцетом вносят по 15-20 особей олигохет вида Tubifex tubifex и ставят в термостат при 27 -30°С. Контролем служит образец с водопроводной водой без содержания ивермектина.

Через каждые 15-20 мин на протяжении 1 ч подсчитывают общее количество олигохет (А), количество олигохет с нарушенной подвижностью (В) и вычисляют процент паралича тест-объектов. В итоге устанавливают минимальную концентрацию вещества, при котором наблюдается паралич олигохет.

В условиях данного эксперимента наблюдается паралич олигохет в чашках Петри, содержащих раствор ивермектина концентрацией 1 мкг/мл. Естественно, паралич олигохет наблюдается и при более высоких концентрациях, но при концентрации 0,5 мкг/мл достоверного паралича не наблюдается.

Таким образом, на данном примере продемонстрирована возможность количественного определения нематоцидной активности ивермектина. Из полученных данных следует, что ивермектин вызывает паралич нематод при концентрации 1 мкг/мл.

Пример 2. Определение биоцидной активности абамектина.

Все операции осуществляют как в примере 1, но в качестве исследуемого вещества используют 1% раствор абамектина в 96% -ном этаноле (изопропиловом спирте) с концентрацией 10000 мкг/мл.

Показано, что биоцидная активность абамектина практически совпадает с активностью ивермектина и составляет 1 мкг/мл.

Пример 3. Определение биоцидной активности авермектинового комплекса, выделенного экстракцией из мицелиальной биомассы Streptomyces avermitilis ВНИИСХМ - 56.

Для получения авермектинового комплекса микроорганизм Streptomyces avermitilis ВНИИСХМ - 56 культивируют в глубинных условиях на качалке с числом оборотов 220 об/мин при температуре 27°С на среде, содержащей в качестве основных ингредиентов картофельный отвар и глюкозу - 3%. Через 36 ч культивирования выросший мицелий используют в качестве вегетативно-посевного материала. Для этого в 500 мл качал очные колбы с 100 мл среды вносят 5 мл инокулята (5% от объема среды) и культивируют в течение 5 суток при 220 об/мин, 27°С, рН 7,0-7,2.

Количество синтезированных авермектинов в биомассе определяют методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) экстракта биомассы и эти данные используют при приготовлении тестируемых растворов авермектинов.

Далее все операции по определению биоцидной активности комплекса авермектинов осуществляют как в примере 1, но в качестве исследуемого вещества используют экстракт биомассы, содержащий комплекс авермектинов, синтезированных микроорганизмом Streptomyces avermitilis ВНИИСХМ - 56.

Из полученных данных следует, что биоцидная активность авермектинового комплекса S. avermitilis ВНИИСХМ - 56 выявляется при концентрации 5 мкг/мл.

Пример 4. Определение биоцидной активности гемисукцината авермектина В1а.

Все операции осуществляют как в примере 1, но в качестве исследуемого вещества используют 1% раствор гемисукцината авермектина B1a в 96%-ном этаноле (или в изопропиловом спирте) с концентрацией 10000 мкг/мл.

Биоцидная активность препарата составляет 5 мкг/мл, т.е. в чашках Петри, содержащих растворы гемисукцината авермектина B1a концентрацией 5 и более мкг/мл, наблюдается паралич олигохет, а в чашках Петри с концентрацией 1,0 и 2,5 мкг/мл паралич тест-объектов отсутствует.

Установлено, что инкубирование олигохет более 2-х ч является не целесообразным, т.к. не приводит к существенным изменениям результатов, но увеличивает время анализа и, следовательно, его себестоимость.

Кроме того, установлено, что культивирование при температуре менее 27°С (24-25°С) влияет на точность результатов анализа, т.к. паралич тест-объектов наступает значительно позже в сравнении с аналогичным инкубированием при 27-30°С. При этом отмечается снижение подвижности олигохет, что в свою очередь понижает точность определения физиологического состояния тест-объектов по поведенческой реакции (сползания в клубок). В то же время культивирование олигохет при температуре выше 30°С (31-33°С) не приводит к существенным изменениям результатов, однако увеличивает время проведения анализ. Следовательно, оптимальный температурный диапазон при постановке метода с использованием олигохет вида Tubifex tubifex составляет 27-30°С.

Таким образом, вышеописанные примеры демонстрируют, что данный метод позволяет проводить экспресс оценку и скрининг противопаразитарной (нематоцидной) активности авермектиновых субстанций и их производных.

Наряду с этим установлены оптимальные условия получения, поддержания и хранения стандартизованного тест-объекта - олигохет вида Tubifex tubifex. В стеклянных емкостях (банки, колбы) при ежесуточной промывке чистой водопроводной водой олигохеты хорошо хранятся в холодильнике при 4-7°С в течение 3-4 недель.

Обобщающие результаты исследования биоцидой активности авермектинов представлены в таблице 1.

Источники информации

1. Патент RU 2013053 С1, 30.05.1994.

2. Потапов Д.С., Стом Д.И., Антонова Е.В. // Бюллетень ВСНЦ СОРАМН. - Иркутск, 1998. - №2 (8). - С. 156-159.

3. Патент RU 2377561 С2, 27.03.2011.

4. Богданов Г.О. Выживаемость и плодовитость Tubifex tubifex (Tubificidae) при содержании и разведении в лабораторных условиях. // Вестник Челябинского государственного университета №04, Биология, Выпуск 1. - Челябинск, 2008. - С. 105.

5. Воробьев Д.С., Франк Ю.А., Лушников С.В., Залозный Н.А., Носков Ю.А. Использование Limnodrilus hoffmeisteri (Tubificidae, Oligochaeta) в очистке донных отложений от нефти и нефтепродуктов. // Сибирский экологический журнал. - Новосибирск, 2010. - Т. 17, №1. - С. 21-27.

1. Способ определения нематоцидной активности авермектинсодержащих субстанций и препаратов, включающий инкубирование олигохет in vitro в растворах авермектинов и регистрацию их поведенческой реакции, отличающийся тем, что с целью повышения точности анализа и получения возможности количественной оценки биоцидной активности исследуемых веществ олигохеты вида Tubificidal tubifex инкубируют при 27-30°C в термостате в растворах авермектинов разной концентрации, в течение 1-2 ч.

2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что олигохеты в количестве 15-20 особей инкубируют в 15-20 мл тестируемых растворов, содержащих от 0,5 до 50 мкг/мл авермектинов.

3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что за нематоцидную активность принимают минимальную концентрацию тестируемых субстанций и препаратов, вызывающую паралич олигохет.



 

Похожие патенты:
Изобретение относится к медицине, а именно к фармакологии, фармации, дерматологии, косметологии и судебной медицине, и может быть использовано при разработке новых лекарственных средств, предназначено для поиска и оценки эффективности средств, обесцвечивающих кожу в области «красных» и «синих», свежих и старых кровоподтеков, при разработке косметических технологий, предназначенных для удаления кровоподтеков, а также при судебной медицинской экспертизе давности кровоподтеков и ушибов мягких тканей.

Изобретение относится к медицине для определения концентрации в биосистемах (сыворотке крови, слюне и др.) и может быть использовано для количественного определения биоцидного гидразида изоникотиновой кислоты (изониазида) в водных растворах этого соединения при токсикологическом и техническом анализе субстанции и лекарственных форм этого препарата.

Изобретение относится к медицине, в частности к лабораторным методам исследования, позволяющим осуществлять эффективный скрининг антиоксидантов. Способ экспресс-скрининга потенциальных антиоксидантов заключается в том, что выделяют липопротеиды низкой плотности (ЛНП) из плазмы венозной крови здоровых доноров, осуществляют окисление липопротеидов низкой плотности при температуре 37°С внесением 30 мМ сульфата меди (CuSO4), после чего через фиксированные интервалы времени измеряют накопление липогидропероксидов (конъюгированных диенов) при 233 нм (ΔD233) и по результатам исследования строят кинетическую кривую окисления ЛНП, из которой определяют продолжительность периода индукции (τ), затем в опытные пробы вносят исследуемые антиоксиданты (конечная концентрация 1 мкМ), растворенные либо в 96% этаноле - для жирорастворимых веществ или в среде инкубации - для водорастворимых веществ, и если продолжительность периода индукции исследуемого вещества выше 0,4 - вещество может рассматриваться в качестве эффективного антиоксиданта; если ниже 0,1 - исследованное вещество эффективным антиоксидантом не является.

Изобретение относится к фармации, фармакологии и клинической фармакологии и касается способа модельно-дискриминационной оценки фармацевтической эквивалентности лекарственных средств, покрытых кишечнорастворимой оболочкой, включающего определение кинетики растворения изучаемых препаратов и препарата сравнения путем последовательного помещения по одной единице твердой дозированной формы в фосфатный буфер объемом 500 мл с рН 1,05±0,05 и при температуре 37±0,05°С, перемешивания с помощью лопастной мешалки со скоростью 100 об/мин, отбора аликвоты через 2 часа и ее фильтрации, определения в аликвоте действующего вещества, переноса лекарственной формы в фосфатный буфер с рН 7,0±0,05, перемешивания с помощью лопастной мешалки со скоростью 100 об/мин, отбора аликвот через 10, 15, 20, 30, 45, 60 минут и в дополнительное расчетное время объемом 5 мл с восполнением этого объема средой растворения; аликвоты фильтруют, прибавляют к 2 мл фильтрата аликвот по 400 мкл 0,25 моль/л натрия гидроксида, определяют количество действующего вещества, перешедшего в раствор, параллельно проводят второй этап сравнительного теста кинетики растворения, включающий последовательное помещение по одной единице твердой дозированной формы в среду растворения с рН 4,0±0,05 объемом 500 мл, перемешивание с помощью лопастной мешалки со скоростью 100 об/мин, отбор проб через 10, 15, 20, 30, 45, 60 минут объемом 5 мл с восполнением этого объема средой растворения, фильтрацию аликвот, прибавление к 2 мл фильтрата аликвот по 400 мкл 0,25 моль/л натрия гидроксида, определение количества действующего вещества, перешедшего в раствор, с рН 7,0±0,05, объемом 900 мл, перемешивание с помощью лопастной мешалки со скоростью 100 об/мин, отбор проб через 10, 15, 20, 30, 45, 60 минут, при этом дополнительно определяют точку отбора аликвоты из среды растворения с рН 7,0±0,05 по формуле Тр=(Тк×0,121)+t(1).

Изобретение относится к области фармации и может быть использовано для определения фазы цветения лекарственного сырья, в частности горца птичьего, горца перечного и горца почечуйного.

Изобретение относится к области аналитической химии и касается способа определения феназепама. Сущность способа заключается в том, что готовят растворы определяемого вещества в концентрации 0,02 мг/мл и образца сравнения.

Изобретение относится к исследованию или анализу материалов с использованием хроматографии. Способ одновременного определения примесей этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА), диметилсульфоксида (ДМСО) и N-этилмалеимида (ЭТМ) в фармацевтических субстанциях методом обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии включает определение ЭДТА, ДМСО и ЭТМ во время одного анализа, с использованием хроматографической колонки длиной не более 150 мм, заполненной носителем с зернением не более 5 мкм, используя раствор кислоты ортофосфорной 10-30 мМ (рН 1,9-2,26) с градиентом органического растворителя от 0 до 100%, при температуре колонки 25-45°С, достигается предел детектирования для ЭДТА - от 4,14 до 8,0 нг, ДМСО - от 0,8 до 3,0 нг, ЭТМ - 0,04 до 1 нг и предел количественного определения ЭДТА - от 12,9 до 30 нг, ДМСО - от 2,66 до 10 нг, ЭТМ - от 0,13 до 3 нг.

Изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к фармацевтическому анализу, и может быть использовано для количественного определения хлорпротиксена гидрохлорида, зуклопентиксола и флупентиксола в субстанциях.

Изобретение относится к области аналитической химии и касается способа определения содержания воды в лекарственной форме мазь. Сущность способа заключается в том, что проводят растворение навески лекарственной формы мазь в растворителе толуол:метанол в соотношении 7:3, проводят электрогенерацию йода при постоянной силе тока 50мА в фоновом электролите «Аква М®-Кулон AG» в анодной камере, «Аква М®-Кулон СG» в катодной камере на платиновом электроде, далее в ячейку вносят аликвоту раствора эритромицина мази глазной массой 3 г, измеряют время достижения конечной точки титрования, рассчитывают содержание воды в аликвоте по формуле X=I×t×M/F, где I - сила тока, 0,05 A; t - время достижения конечной точки титрования, с; M - молярная масса эквивалента воды, 9,008 г/моль; F - постоянная Фарадея, 96485 Кл/моль, параллельно проводят определение воды в растворителе и по известным формулам рассчитывают содержание воды в мази.

Изобретение относится к области аналитической химии и касается способа определения содержания воды в субстанции ампициллина тригидрата. Сущность способа заключается в том, что проводят растворение навески указанной субстанции в фоновом электролите «Аква М®-Кулон AG», далее в ячейку вносят аликвоту раствора субстанции ампициллина тригидрата массой 0,5г, проводят электрогенерацию йода при постоянной силе тока 50мА в фоновом электролите «Аква М® -Кулон AG» в анодной камере, «Аква М® -Кулон СG» в катодной камере на платиновом электроде, измеряют время достижения конечной точки титрования, рассчитывают содержание воды в аликвоте по формуле X=I×t×M/Fгде I - сила тока, 0,05 A; t - время достижения конечной точки титрования, с; M - молярная масса эквивалента воды, 9,008 г/моль; F - постоянная Фарадея 96485 Кл/моль, параллельно проводят определение воды в растворителе и по известным формулам рассчитывают содержание воды в субстанции ампициллина тригидрата.

Изобретение относится к области микробиологии, а именно к способу определения контаминации растворов и биологических жидкостей. Сущность способа состоит в том, что детектируют биологические объекты, включающие микроорганизмы или вирусы, с помощью наночастиц металлов, формирующихся in situ из внесенных в исследуемый объект солей соответствующих металлов, при последующем анализе динамики спектральных характеристик формирующихся наночастиц. В присутствии клеток микроорганизмов в течение 20-40 минут размер формирующихся наночастиц металлов достигает величины более 15 нм, в присутствии вирусов размер формирующихся наночастиц достигает 6 нм, тогда как в отсутствие контаминации исследуемых объектов за то же время размер образующихся зародышей наночастиц не превышает 2 нм. Использование заявленного способа позволяет с высокой чувствительностью, достоверностью, технической простотой и быстротой выявлять случаи микробной контаминации растворов и биологических жидкостей. 4 ил., 3 пр.

Изобретение относится к способу количественного определения методом ВЭЖХ таурина и аллантоина при их совместном присутствии в различных лекарственных препаратах, биологически активных добавках, косметической и пищевой продукции. Способ включает растворение навески исследуемого вещества в подвижной фазе (ПФ), разделение раствора на хроматографической колонке, измерение оптической плотности полученного раствора и определение концентрации исследуемых веществ по калибровочным графикам. В качестве подвижной фазы для таурина использовали 30 мкмоль/л раствора ацетата натрия рН 6.0, а растворение проводили из расчета 250 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором ПФ. В качестве подвижной фазы для аллантоина использовали смесь раствора гидрофосфат аммония с рН 7.78 и ацетонитрила 9:1, а растворение проводили из расчета 1000 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором ПФ. Для таурина перед разделением раствора с ПФ на хроматографической колонке к нему добавляли боратный буферный раствор с рН 9.0 и 0,1% раствор 2,4-динитрохлорбензола в растворе ацетонитрил - вода (2:1) при соотношении 1:1:1, нагревали полученную смесь, охлаждали до комнатной температуры и на 6 об. ч. полученной смеси добавляли 1 об. ч. 10% раствора уксусной кислоты и 13 об. ч. воды. Детектирование проводили при длинах волн 360±2 нм и 218±2 нм для таурина и аллантоина, соответственно. Способ позволяет идентифицировать и количественно определять таурин и аллантоин при их совместном присутствии в различных лекарственных препаратах. 9 ил.

Изобретение относится к фармакологии и может быть использовано для определения выраженности модифицирующей активности, ассоциированной с носителем, приобретенной в процессе технологической обработки исходного вещества в виде многократного последовательного уменьшения концентрации последнего с использованием носителя, которая проявляется в способности непосредственно изменять физико-химические и/или биологические свойства исходного вещества при воздействии на него указанным носителем. Для этого аналитическими методами определяют наличие или отсутствие молекул исходного вещества в указанном носителе и, при наличии молекул исходного вещества, перед измерением характерного параметра из носителя удаляют молекулы исходного вещества, и измеряют аналитическими методами один или несколько характерных параметров исходного вещества до и после взаимодействия с ним указанного носителя, при этом степень выраженности модифицирующей активности определяют по величине изменения характерного параметра в относительных единицах активности, рассчитываемых по формуле (1): где X - количество единиц активности (ЕА); С - безразмерный коэффициент пропорциональности; А - значение характерного параметра исходного вещества до взаимодействия с ним указанного активированного носителя; Ам - значение того же характерного параметра исходного вещества после взаимодействия с ним указанного активированного носителя. Изобретение позволяет определить выраженность модифицирующей активности, ассоциированной с носителем, приобретенной в процессе технологической обработки исходного вещества в виде многократного последовательного уменьшения концентрации последнего с использованием носителя. 3 з.п. ф-лы, 1 ил., 4 табл., 7 пр.

Изобретение относится к фармации и может быть использовано для определения выраженности модифицирующей активности, ассоциированной с носителем, приобретенной в процессе технологической обработки исходного вещества в виде многократного последовательного уменьшения концентрации последнего с использованием носителя, которая проявляется в способности непосредственно изменять физико-химические и/или биологические свойства вещества, состоящего из молекул, структурно схожих с молекулами исходного вещества, при воздействии на него указанным носителем. Для этого аналитическими методами определяют наличие или отсутствие молекул исходного вещества в указанном носителе, и при наличии молекул исходного вещества перед измерением характерного параметра из носителя удаляют молекулы исходного вещества, и измеряют аналитическими методами один или несколько характерных параметров вещества, структурно схожего с исходным, до и после взаимодействия с ним указанного носителя, при этом степень выраженности модифицирующей активности определяют по величине изменения характерного параметра в относительных единицах активности, рассчитываемых по формуле (1): где X - количество единиц активности (ЕА); С - безразмерный коэффициент пропорциональности; А - значение характерного параметра вещества, структурно схожего с исходным веществом, до взаимодействия с ним указанного активированного носителя; Am - значение того же характерного параметра вещества, структурно схожего с исходным веществом, после взаимодействия с ним указанного активированного носителя. Изобретение обеспечивает определения выраженности модифицирующей активности, ассоциированной с носителем, приобретенной в процессе технологической обработки исходного вещества. 2 з.п. ф-лы, 1 пр.

Изобретение относится к аналитической химии и может быть использовано для количественного определения альдегидных групп в окисленных полисахаридах, а именно окисленного декстрана. Для этого к окисленному декстрану добавляют водные растворы 3-(4, 5-диметил-2-тиазолил)-2,5-дифенил-2Н-тетразолия бромида и щелочи. Контрольный раствор, содержащий те же компоненты за исключением окисленного декстрана, готовят параллельно. Оптическую плотность опытного и контрольного растворов регистрируют на спектрофотометре при 540 нм, количество окисленного декстрана определяют с использованием калибровочного графика. Изобретение обеспечивает точные и воспроизводимые результаты для определения окисленного декстрана, применяемого в качестве биосовместимого и биодеградируемого носителя для лекарственных препаратов. 2 ил., 5 пр.

Изобретение относится к области химико-фармацевтической промышленности и может быть использовано для количественного определения серебряной соли сульфадимидина для стандартизации и контроля качества лекарственных средств. Для этого готовят контрольный водный раствор сульфадимидина. Оптическую плотность рабочего и контрольного образцов регистрируют спектрофотометрически при длине волны 242 нм. Расчет результатов проводят по удельному показателю поглощения с учетом молекулярных масс сульфадимидина и его серебряной соли. Изобретение обеспечивает унифицирование методики анализа в контрольно-аналитических лабораториях, результатов определения и уменьшение погрешности анализа. 2 табл., 1 ил., 1 пр.

Изобретение относится к области аналитической химии и может быть использовано для концентрирования и разделения флавоноидов (ФЛ), таких как кверцетин, (+)-катехин, нарингин, для последующего определения в растительных образцах, фармацевтических препаратах. Способ концентрирования и разделения флавоноидов, включающий сорбционно-хроматографическое извлечение флавоноидов пропусканием раствора кверцетина, (+)-катехина или нарингина через мезопористый сорбент типа МСМ-41, полученный из реакционной смеси цетилтриметиламмоний бромида (CTABr), источника кремния и дистиллированной воды и прошедший гидротермальную обработку, фильтрование полученной смеси, экстракцию темплата, высушивание и кальцинирование, при этом используются ацетонитрильные растворы флавонидов, при этом в качестве источника кремния использован тетраэтоксисилан (TEOS), реакционная смесь дополнительно содержит аммиак и этиловый спирт, обработку сорбента производят при определенных условиях, полученный сорбент предварительно фракционируют до размера частиц 0,1-0,25 мм и дополнительно модифицируют триметилхлорсиланом, при этом в качестве растворителя при модификации используется трихлорметан. Вышеописанный способ повышает степень извлечения и разделения флавоноидов- кверцетина, нарингина, катехина. 6 ил., 13 пр..

Изобретение относится к композиционной частице для применения в маркировке, пригодной для идентификации/установления подлинности изделия. Частица содержит по меньшей мере одну суперпарамагнитную часть и по меньшей мере одну термолюминесцентную часть. Суперпарамагнитная часть содержит один или более супермагнитных материалов, выбранных из оксида железа, металлического Fe, металлического Со, металлического Ni и их сплавов. Термолюминесцентная часть содержит керамический материал, легированный одним или более ионами, выбранными из ионов переходных металлов и ионов редкоземельных металлов. Изобретение обеспечивает повышение степени защиты изделий, надежность идентификации и защиты от постороннего вмешательства, фальсификации и подделки. 11 н. и 24 з.п. ф-лы, 2 ил.
© Патентный поиск, поиск патентов на изобретения - FindPatent.RU 2012-2024
Политика конфиденциальности 2016-06-24 2017-12-13T19:33:53
Наверх