Способ калибровки объема раствора для микроинъекции в предовуляторные ооциты мыши

Изобретение относится к области биотехнологии. Предложен способ калибровки объема раствора от 1 до 10 пл для микроинъекции в предовуляторные ооциты мыши. Способ осуществляют с использованием инъецирующего капилляра с параллельными стенками и известными внешним, внутренним диаметрами, где рассчитывают расстояние между границами раствора в инъецирующем капилляре, после чего проводят микроинъекцию с использованием оснащенной CCD камерой и программным обеспечением механической микроинъекционной системы. Причём с помощью программного обеспечения наносят калиброванные в микрометрах линейные метки на изображение отображаемого на мониторе компьютера в реальном времени инъецирующего капилляра. Изобретение обеспечивает осуществление калибровки объема раствора в реальном времени без построения калибровочных кривых. 6 ил., 2 табл., 3 пр.

 

Изобретение относится к биотехнологии, конкретно, к способу количественных микроинъекций растворов в широком диапазоне объемов в предовуляторные ооциты мыши, который может быть использован для микроинъекцирования других крупных одиночных клеток, включая ооциты разных млекопитающих.

Предовуляторные (GV, germinal vesicle) ооциты млекопитающих относятся к ключевым объектам биологии развития, поскольку именно они в решающей степени определяют качество оплодотворенных яйцеклеток и способность зародышей к развитию (Blanco et al., Developmental competence of in vivo and in vitro matured oocytes: A review // Biotechnology and Molecular Biology Review - 2011. - V. 6. - P. 155-165; Gilbert et al., Oocyte developmental competence and embryo quality: distinction and new perspectives // Anim. Reprod. - 2015.- V. 12. - P. 397-407).

Экспериментальные исследования предовуляторных ооцитов млекопитающих часто проводятся на GV ооцитах мыши, как модельной системе, и включают микроинъекции в ооциты различных растворов и содержащихся в них сигнальных молекул таких, как плазмидные ДНК (Jo et al., Tropomodulin-3 is essential in asymmetric division during mouse oocyte maturation. // Sci. Rep. - 2016. - V. 6. - P. 29204), интерферирующие РНК (Svoboda and Stein, RNAi experiments in mouse oocytes and early embryos. // Cold Spring Harb. Protoc. - 2009. - doi:10.1101/pdb.top56) или другие активные метаболиты (Nakano Н., Kubo Н. Study of the in vitro maturation of mouse oocytes induced by microinjection of maturation promoting factor (MPF). // J. Assist. Reprod. Genet.- 2000. - V. 17. - V. 67-73), которые самостоятельно не способны проникать внутрь живых клеток.

При этом объемы инъецируемых растворов не должны превышать 1-5% общего объема ооцита, чтобы избежать травматичного набухания ооцитов, вызываемых микроинъекциями (Jaffe and Terasaki, Quantitative microinjection of oocytes, eggs, and embryos. // Methods Cell Biol. - 2004. - V. 74. - P. 219-242). Поскольку все ооциты имеют правильную сферическую форму, их объем рассчитывается по формуле объема шара (4/3π(D/2)3, где D - диаметр ооцита), что для GV ооцитов мыши, имеющих диаметр 70-75 мкм (Griffin et al., Comparative analysis of follicle morphology and oocyte diameter in four mammalian species (mouse, hamster, pig, and human). // J. Exp. Clin. Assist. Reprod. - 2006. -V. 3. - P. 2), составляет 180-220 пл (Пример 1). С учетом цитированных данных (Jaffe and Terasaki, 2004; Griffin et al., 2006) этот пример показывает, что в ооциты мыши допустимо инъецировать не более 2-10 пл растворов. Однако соблюдение данного условия представляет серьезную проблему, поскольку известные способы калибровки объемов инъецируемых растворов достаточно трудоемки и могут изменяться в зависимости от типа инъекционной системы и используемых капилляров. Так, ближайший аналог настоящего изобретения основан на предварительной, т.е. до проведения микроинъекций, калибровке инъецирующих капилляров (называемых также микропипетками) в зависимости от продолжительности инъекционного процесса или величины давления, создаваемого в капилляре. При этом калибровка может производиться путем измерения объемов капель среды, выпускаемых из инъецирующего капилляра в полимер полидиметилсилоксан (Eroglu et al., Quantitative microinjection of trehalose into mouse oocytes and zygotes, and its effect on development. // Cryobiology. - 2003. - V. 46. - P. 121-134), либо - воды в минеральное масло (Chow et al., Single cell transfection through precise microinjection with quantitatively controlled injection volumes. // Sci. Rep. - 2016. - V. 6. - P. 24127). При таких способах калибровки принимается, что капли, выпущенные в инертную среду, имеют сферическую форму, что позволяет рассчитывать объемы капель, исходя из их диаметров, измеряемых микроскопически. В подавляющем большинстве случаев для микроинъекций используют самодельные капилляры, имеющие коническую форму (Kline D. Quantitative microinjection of mouse oocytes and eggs. // Methods Mol. Biol. - 2009. - V. 518. - P. 135-156; Nakagawa and FitzHarris, Quantitative microinjection of Morpholino antisense oligonucleotides into mouse oocytes to examine gene function in meiosis-I. // Methods Mol. Biol. - 2016. - V. 1457. - P. 217-230), для изготовления которых необходимы специальное оборудование и квалификация, а замена одного капилляра (в случае его поломки или засорения) на другой капилляр потребует построения новой калибровочной кривой или проведения дополнительных оценочных микроинъекций (Nakagawa and FitzHarris, 2016). В отдельных случаях для более тонкой регулировки давления в инъецирующем капилляре в него набирают каплю ртути (mercury) (Jaffe et al., Microinjection of follicle-enclosed mouse oocytes. // Methods Mol. Biol. - 2009. - V. 518. - P. 157-173), что небезопасно для здоровья оператора и окружающей среды, поскольку пары ртути чрезвычайно ядовиты (Bernhoft RA. Mercury toxicity and treatment: a review of the literature. // J. Environ. Public Health. - 2012. - V. 2012. - P. 460508).

Задачей настоящего изобретения является создание простого способа калибровки объемов растворов, инъецируемых в GV ооциты мыши, в диапазоне от 1 до 10 пл. Поставленная задача решается за счет использования инъецирующих капилляров с практически параллельными стенками, внутренний диаметр которых известен и гарантируется фирмой-производителем. В данном изобретении используют инъекционные капилляры фирмы ТРС (Австралия), каталожный номер LICR-TA35, с внутренним диаметром, равным 5 мкм. Внешний диаметр этих капилляров составляет 6,5 мкм, что значительно меньше диаметра ооцита (70-75 мкм) (Фигура 1).

Параллельные стенки таких капилляров позволяют применять для расчета объема (V) раствора, находящегося внутри капилляра, формулу цилиндра:

V=πr2H=π(D/2)2Н,

где V - объем раствора внутри инъецирующего капилляра (в мкм3 или пл), π=3,14, D - внутренний диаметр капилляра (в нашем случае - 5 мкм), r - внутренний радиус капилляра (в нашем случае - 2,5 мкм), Н - расстояние между границами раствора в инъецирующем капилляре (в мкм). В данной формуле при инъекциях заданного объема растворов единственной переменной величиной является расстояние (Н, в мкм), которое можно вычислить по формуле, взяв за основу формулу объема цилиндра (см. выше):

Н=V/πr2=V/π(D/2)2,

где Н - расстояние между границами раствора в инъецирующем капилляре (в мкм), V - требуемый объем инъецируемого раствора (в мкм3 или пл), π=3,14; D - внутренний диаметр капилляра (в нашем случае - 5 мкм), r - внутренний радиус капилляра (в нашем случае - 2,5 мкм). По этой же формуле можно рассчитать величину Н, изменяя значения числителя в соответствии с объемом, нужным для микроинъекций (Пример 2).

В предлагаемом изобретении используют микроинъекционную систему, основными компонентами которой являются инвертированный световой микроскоп Axio Observer Z1 ("Carl Zeiss", Германия), механический микроинъектор Narishiga IM-9B ("Narishiga", Япония), цветная CCD камера Axiocam 105 color ("Carl Zeiss") и компьютер, оснащенный программой ZEN2012 ("Carl Zeiss"). Программа ZEN2012 позволяет наблюдать ооциты и инъецирующий капилляр на мониторе компьютера в реальном времени и наносить на изображения капилляра линейные метки, откалиброванные в микрометрах. Общий вид микроинъекционной системы иллюстрирует фигура 2.

Фигуры 3-6 иллюстрируют последовательные этапы микроинъекций в GV ооциты мыши стандартного фосфатно-солевого буфера (ФСБ, 2,7 мМ KCl, 140 мМ NaCl, 8,1 мМ Na2HPO4, 1,5 мМ KH2PO4) в объеме 1 пл (фиг. 3), 2,5 пл (фиг. 4), 5 пл (фиг. 5), 10 пл (фиг. 6). Выбор буфера ФСБ для микроинъекций объясняется тем, что ранее он успешно использовался в качестве растворителя при инъекциях антител в соматические клетки (Fomproix et al., Effects of anti-fibrillarin antibodies on building of functional nucleoli at the end of mitosis. // J. Cell Sci. - 1998. - V. 111. - P. 359-372). В наших условиях ФСБ не проявлял токсичности при инъекциях в GV ооциты мыши (Пример 3).

Таким образом, предлагаемый способ калибровки объемов растворов для микроинъекций в предовуляторные ооциты мыши не требует построения калибровочных кривых и осуществляется в процессе микроинъекций в реальном времени. Данный способ может быть применен в любых механических микроинъекционных системах, которые оснащены CCD камерой и программным обеспечением, позволяющим наносить графические метки на изображения ооцитов. В данном способе не предусмотрены особые требования к удерживающему капилляру.

Предлагаемое изобретение иллюстрируют следующие примеры:

Пример 1.

Расчет объемов предовуляторных ооцитов мыши диаметром 70 и 75 мкм, произведенный по формуле объема шара V=4/3πR3, где V - объем ооцита (в мкм3 и пиколитрах, пл), π=3,14, D и R - диаметр и радиус ооцита соответственно (в мкм).

Пример 2.

Значения величины Н (расстояние между границами раствора в инъецирующем капилляре, фиг. 1) при микроинъекциях в ооциты мыши растворов в диапазоне объемов от 1 до 10 пл. Расчет производят по формуле цилиндра H=V/π(D/2)2, где V - объем в пиколитрах (пл), π=3,14, D - внутренний диаметр инъецирующего капилляра (мкм)

Пример 3.

Условия гормональной стимуляции животных, выделения ооцитов, микроинъекций буфера ФСБ и культивирования инъецированных ооцитов in vitro.

Самок гибридов мышей (CBA×C57B1)Fl 6-8-недельного возраста получают из питомника лабораторных животных «Столбовая» Федерального государственного бюджетного учреждения науки Научный центр биомедицинских технологий Федерального медико-биологического агентства и содержат в условиях, обеспечивающих свободный доступ к питьевой воде и стандартному корму. Все манипуляции с животными производят в соответствии с Правилами внутреннего распорядка ИБХ РАН по содержанию и использованию лабораторных животных и Правилами лабораторной практики в Российской Федерации (Приказ Министерства Здравоохранения РФ №267 от 19.06.2003).

Стимуляцию ооцитов к мейотическому созреванию производят по стандартной методике (Klein, 2009) путем внутрибрюшинного введения 10 ME гонадотропина сыворотки жеребой кобылы «Фоллимаг»® (ЗАО «Мосагроген», Россия). Через 48 час животных забивают, а извлеченные яичники помещают в буфер ФСБ, где от яичников отделяют жировую ткань и проверяют ампулу на наличие в ней спонтанно овулировавших ооцитов (не выявили ни в одном эксперименте). Выделение GV ооцитов проводят путем пунктирования яичников препаровальными иглами в среде М2, содержащей 100 мкг/мл дбцАМФ (dbcAMP, дибутирил-циклический аденозинмонофосфат), который добавляют для предотвращения спонтанного созревания ооцитов in vitro. Отделение ооцитов от окружающих кумулусных клеток производят механически путем пипетирования. Для микроинъекций отбирают GV ооциты, свободные от клеток кумулуса и имеющие диаметр 70-75 мкм.

Микроинъекции производят в стерильных пластиковых чашках Петри диаметром 35 мм, на дно которых помещают каплю раствора ФСБ и каплю среды М2 с дбцАМФ (капли объемом около 40 мкл) и полностью покрывают капли парафиновым маслом, чтобы не допустить их испарения. В каплю со средой М2 помещают 5-7 ооцитов. Микроинъекции производят при комнатной температуре и стандартном освещении. Микроинъекция одного ооцита занимает не более 2 мин. Всего нами было инъецировано: 1 пл ФСБ - 15 ооцитов, 2,5 пл ФСБ - 15 ооцитов, 5 пл ФСБ - 32 ооцита, 10 пл ФСБ - 37 ооцитов.

Для оценки возможной травматичности микроинъекций ооциты инкубируют в среде αМЕМ с добавлением 5%-ов эмбриональной бычьей сыворотки, 2 мМ L-глутамина, 5 мМ таурина, 36 мг/мл пирувата натрия в атмосфере 5% CO2 в течение 24 час при 37°С (Belli et al., Time-lapse dynamics of the mouse oocyte chromatin organisation during meiotic resumption // Biomed. Res. Int. - 2014. - V. 2014. - Article ID 207357).

Все реагенты, использованные для культивирования ооцитов, приобретают у фирмы "Merk" (Германия).

Полученные результаты показывают, что ооциты, инъецированные 1-10 пл ФСБ, способны развиваться до стадии зрелой яйцеклетки (или МП ооцита), так что во всех группах доля МП ооцитов составляет около 60%. Доля травмированных и погибших ооцитов во всех группах не превышает 30-40%, что меньше значений (примерно 50%), известных из литературы (Jaffe et al., 2009).

Предлагаемое изобретение иллюстрируют следующие графические материалы: Фиг. 1. - Схематичное изображение инъекционного капилляра фирмы ТРС (Австралия, каталожный номер LICR-TA35) с внутренним диаметром 5 мкм и внешним диаметром 6,5 мкм. На изображение нанесены положения границ инъецируемых растворов (менисков) в капилляре.

Фиг. 2. - Общий вид микроинъекционной системы, использованной в изобретении.

Система включает световой инвертированный микроскоп Axio Observer Z1 ([1]), микроинъектор Narishiga IM-9B, где ([2а]) - гидравлический поршень и ([2б]) - пневматический поршень, цветную CCD камеру Axiocam 105 color ([3]) и компьютер ([4]), оснащенный программой ZEN2012 ("Carl Zeiss"). Инъецирующий и удерживающий (холдер) капилляры в данной системе располагаются слева и справа от оператора, хотя их положение не является критичным и может быть изменено по желанию оператора. Микроскоп оборудован объективом A-Plan 10×/0.25 (числовая апертура) и конденсором Хоффмана для модуляционного (рельефного) контраста ("Carl Zeiss").

Фиг. 3. - Последовательные этапы микроинъекции 1 пл буфера ФСБ в цитоплазму GVooцитa мыши. Данный объем раствора соответствует отрезку Н (Distance), длиной 50 мкм (μm) (см. Таблицу в Примере 2). Масштабная линия - 50 μm.

а - заполнение инъецирующего капилляра раствором, б - введение капилляра в цитоплазму ооцита, в - микроинъекция раствора, г - отведение ооцита от капилляра.

Фиг. 4. - Последовательные этапы микроинъекции 2,5 пл буфера ФСБ в цитоплазму GVооцита мыши. Данный объем раствора соответствует отрезку Н (Distance), длиной 127 мкм (μm) (Пример 2). Масштабная линия - 50 μm.

а - заполнение инъецирующего капилляра раствором, б - введение капилляра в цитоплазму ооцита, в - микроинъекция раствора, г - отведение ооцита от капилляра.

Фиг. 5. - Последовательные этапы микроинъекции 5 пл буфера ФСБ в цитоплазму GV-ооцита мыши. Данный объем раствора соответствует длине отрезка Н (Distance), равной 255 мкм (μm) (Пример 2). Масштабная линия - 50 μm.

а - заполнение инъецирующего капилляра раствором, б - введение капилляра в цитоплазму ооцита, в - микроинъекция раствора, г - отведение ооцита от капилляра. Фиг. 6. - Последовательные этапы микроинъекции 10 пл буфера ФСБ в цитоплазму GVооцита мыши. Данный объем раствора соответствует длине отрезка Н (Distance), равной 510 мкм (μm) (Пример 2). Масштабная линия - 50 μm.

а - заполнение инъецирующего капилляра раствором, б - введение капилляра в цитоплазму ооцита, в - микроинъекция раствора, г - отведение ооцита от капилляра.

Список использованных сокращений:

μm и мкм - микрометр, 10-3 мм;

мкм3 - кубический микрометр;

пл - пиколитр, 1 пл равен 103 кубических микрометров (мкм3);

GV - предовуляторный (germinal vesicle) ооцит, ооцит в составе Граафова пузырька;

ME - международная единица определения активности гормонов.

Способ калибровки объема раствора от 1 до 10 пл для микроинъекции в предовуляторные ооциты мыши, включающий калибровку объема в реальном времени с использованием инъецирующего капилляра с параллельными стенками и известными внешним, внутренним диаметрами, где рассчитывают расстояние между границами раствора в инъецирующем капилляре (Н, в мкм) по формуле: Н=V/πr2=V/π(D/2)2, где

V - требуемый объем инъецируемого раствора,

D - внутренний диаметр капилляра (в мкм),

r - внутренний радиус капилляра (в мкм);

и осуществляют микроинъекцию с использованием механической микроинъекционной системы, оснащенной CCD камерой и программным обеспечением, с помощью которого наносят калиброванные в микрометрах линейные метки на изображение инъецирующего капилляра, отображаемого на мониторе компьютера в реальном времени.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано в терапии онкологических заболеваний. Описан универсальный вспомогательный плазмидный экспрессионный лентивирусный вектор для получения высоких титров вирусных частиц, содержащих ген Vpx, включающий в качестве базовых элементов, обеспечивающих функционирование вектора, последовательность вирион-ассоциированного белка Vpx, содержащую С-концевой HIV-1 gag/pol мотив и FLAG последовательность и объединенную с последовательностью гена трансактиваторного белка Rev через специфическую последовательность Т2А, обеспечивающую расщепление слитых белков во время процесса трансляции мРНК трансгена; в качестве регуляторных элементов- RSVпромотор/энхансер [rous sarcoma virus) и NES (nuclear export signal)- сигнал экспорта из ядра в цитоплазму.

Изобретение относится к области профилактической медицины, а именно к способу определения атерогенной активности пищевых продуктов, предусматривающему использование клеточной модели моноцитов-макрофагов, выделенных из крови здорового человека, для введения в нее сыворотки крови, взятой у добровольцев, получавших исследуемый пищевой продукт в течение определенного времени, с последующим измерением накопления холестерина в моноцитах-макрофагах модели под действием сыворотки крови и определением ее способности статистически достоверно повышать содержание холестерина в культивируемых клетках.

Изобретение относится к области биохимии, в частности к способу получения ренальных клеток-предшественников из клеток промежуточной мезодермы, включающему культивирование клеток промежуточной мезодермы в среде, содержащей активатор(ы) передачи сигнала TGFβ и ингибитор(ы) BMP.

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к получению клетки, экспрессирующей ген Oct3/4. Способ включает подвергание соматической клетки или клетки-предшественника, которые не являются эмбриональными клетками человека, стрессу низким рН от 5,4 до 5,8, которое доводится при помощи АТФ, в комбинации с механическим раздражителем, включающим подвергание клетки сдвиговому напряжению, высокому давлению или их комбинациям.

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к скринингу противоопухолевых препаратов in vitro на многокомпонентной клеточной тест-системе. Способ включает ко-культивирование опухолевых, стромальных и иммунных клеток на любом из известных аналогов внеклеточного матрикса с получением многокомпонентной клеточной ко-культуры (тест-системы).

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к клеточной линии крысиной глиомы С6-DDA. Клеточная линия крысиной глиомы C6-DDA является устойчивой к цитотоксическому действию N-ацилдофаминов как тест-культура для изучения механизмов действия биоактивных липидов, получена на основе линии крысиной глиомы С6 и характеризуется невосприимчивостью к цитотоксическому действию дофаминамидов природных полиненасыщенных жирных кислот вплоть до концентрации 40 мкМ, наличием длинных или многочисленных коротких отростков и повышенной экспрессией маркеров астроцитарной дифференцировки GFAP, SOX2, гидролазы амидов жирных кислот FAAH, норадреналинового транспортера NET и оксидоредуктазы ecto-NOX, депонирована во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов, регистрационный номер Н-173.

Группа изобретений относится к области биотехнологии. Предложен способ получения рекомбинантного белка и его выделения (варианты).

Группа изобретений относится к области генетической инженерии, в частности к иммортализованным фибробластам эмбриона цыпленка (ФЭЦ) для размножения вирусов, способам их получения, к культурам клеток, включающим иммортализованные ФЭЦ, к способам репликации вирусов птиц в таких клетках и к способам получения вакцин.

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к индукции экспрессии MAFA в панкреатических энтодермальных клетках, панкреатических эндокринных клетках-предшественниках или панкреатических эндокринных клетках.

Настоящее изобретение относится к области биотехнологии, а именно к получению происходящих из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток нейронов, которые имеют стандартизированную чувствительность по отношению к полипептиду нейротоксина клостридии, и стандартизации чувствительности к полипептиду нейротоксина клостридии нейронов, происходящих из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток, а также определению биологической активности полипептида нейротоксина клостридии и применению GT1b.

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к композиции для изготовления биодеградируемых скаффолдов, и способу ее получения. Способ включает смешение суспензии микрочастиц межклеточного матрикса размером менее 0,5 мм одной ткани млекопитающего с водным раствором фиброина шелка при соотношении компонентов: водный раствор фиброина шелка 10-95 мас.% и микрочастицы межклеточного матрикса размером менее 0,5 мм 90-5 мас.%.

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к получению биодеградируемых скаффолдов. Способ включает смешение водного раствора фиброина шелка с микрочастицами межклеточного матрикса размером менее 0,5 мм при соотношении компонентов водный раствор фиброин шелка 10-95 масс.

Изобретение относится к области биотехнологии. Предложен биореактор для культивирования мультипотентных мезенхимальных стволовых клеток (ММСК).

Группа изобретений относится к области биотехнологии. Предложен сосуд для смешивания сред, система для смешивания сред (варианты) и способ регидрации сухих сред.

Группа изобретений относится к области биотехнологии. Предложена заготовка микрофлюидного чипа и микрофлюидный чип для культивирования и/или исследования клеток.

Группа изобретений относится к области биохимии. Предложено устройство для двухсторонней децеллюляризации сосудистых графтов различного диаметра и способ оптимизации работы указанного устройства (варианты).

Изобретение относится к области биохимии. Предложен контейнер для введения, хранения или культивирования клеток млекопитающих.

Изобретение относится к криоконсервации биологических объектов. Предложенный способ подбора условий для криоконсервации биологических объектов в вязких средах с использованием гидратообразующих газов предусматривает внесение исследуемых криопротекторов в среду для криоконсервации, при этом: а) на первом этапе измеряют вязкость контрольного раствора одного или более криопротекторов, дополнительно содержащего наночастицы при его охлаждении в рабочем диапазоне температур от +20˚С до целевой температуры, выбранной в интервале от -10 до -130°С; б) на втором этапе измеряют вязкость раствора криопротектора или композиции криопротекторов, дополнительно содержащего наночастицы с пониженной концентрацией на 5-45% под давлением гидратообразующего газа в процессе охлаждении раствора; в) если значение вязкости криопротектора или композиции криопротекторов с пониженной концентрацией не достигает вязкости контрольного раствора вплоть до целевой температуры, то сниженную концентрацию криопротектора или композиции криопротекторов необходимо повышать и снова проводить измерение согласно пункту б); г) если же в интервале до целевой температуры значение вязкости криопротектора или композиции криопротекторов с пониженной концентрацией достигает значения параметра вязкости в контрольном растворе, то проводится третий этап.

Изобретение относится к области биохимии. Предложено устройство для формирования двухслойной клеточной модели на пористой мембране культуральной вставки Трансвелл.

Изобретение относится к медицине, в частности к хранению биологических образцов. Устройство для криоконсервации в закрытой системе для витрификации биологических образцов содержит удлиненный корпус, усеченный конус, проходящий от первого конца удлиненного корпуса, наконечник для сбора образцов, проходящий от указанного конуса в направлении, противоположном удлиненному корпусу, и удлиненный колпачок для герметичного закрытия биологического образца удлиненной полой камерой.

Изобретение относится к ветеринарии, в частности к пакету и системе для расфасовки разбавленной спермы животного, приемлемой для искусственного осеменения. Пакет содержит два гибких листа, скрепленных друг с другом зоной сварки, ограничивающей полость, имеющую заданный объем после заполнения пакета.

Изобретение относится к области биотехнологии. Предложен способ калибровки объема раствора от 1 до 10 пл для микроинъекции в предовуляторные ооциты мыши. Способ осуществляют с использованием инъецирующего капилляра с параллельными стенками и известными внешним, внутренним диаметрами, где рассчитывают расстояние между границами раствора в инъецирующем капилляре, после чего проводят микроинъекцию с использованием оснащенной CCD камерой и программным обеспечением механической микроинъекционной системы. Причём с помощью программного обеспечения наносят калиброванные в микрометрах линейные метки на изображение отображаемого на мониторе компьютера в реальном времени инъецирующего капилляра. Изобретение обеспечивает осуществление калибровки объема раствора в реальном времени без построения калибровочных кривых. 6 ил., 2 табл., 3 пр.

Наверх