Способ биохимической очистки фенолсодержащих сточных вод

 

1. СПОСОБ БИОХИМИЧЕСКОЙ ОЧИСТКИ ФЕНОЛСОДЕРЖАЩИХ СТЬЧНЫХ ВОД, включающий введение биогенных вдобавок., отличающийся тем, что, с целью сокращения пусконаладочного периода, упрощения процесса и повышения производительности очист№1Х сооружений, биохимическую очистку осуществляют микрофлорой, в том числе активного ила, предварительно выращенной на органических соединениях , выбранных-., из ряда, включающего спирты, ацетон, лактат натрия , сахарозу, или сточных водах, их сбдержащих, после периода адаптации , а гшаптацию осуществляют внесением фенольных соединений дозами по 10-30 мг/л до завершения окисления каждой Дозы. 2. Способ по п. 1, отличающий с я тем, что адаптацию осуществляют при 25-50°С и в качестве биогенных добавок используют ацетат натрия, пирокатехин, органические 1(Л соединения или сточные воды, на ко .торых выращивают ьшкрофлору.

СОЮЗ СОВЕТСКИХ

СОЦИАЛИСТИЧЕСКИХ .

РЕСПУБЛИК

MR) C 02 F 3 34

ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯК ABTOPCH0MV СВИДЕТЕЛЬСТВУ

ГОСУДАРСТВЕННЫЙ КОМИТЕТ СССР

ПО ДЕЛАМ ИЗОБРЕТЕНИЙ И OTHPblTHA (21) 3222940/23-26 (22) 19.12.80 (46) 07.12 83. Бюл. 9 45 (72) A. Д. Артюшкин и М. В. Гасанов (71) Бакинский филиал Всесоюзного научно-исследовательского института водоснабжения, канализации, гидротехнических сооружений и инженерной гидрогеологии (53) 628.356(088.8) (56) 1. Патент Франции Р 2147522, кл. С 02 С 1/00, 1973.

2. Авторское свидетельство СССР

9 499227, кл. С 02 F 3/34, 1976.. .(54)(57) 1. СПОСОБ БИОХИМИЧЕСКОИ

ОЧИСТКИ ФЕНОЛСОДЕРЖИЦИХ СТОЧНЫХ

ВОД, включающий введение. биогенных добавок., отличающийся

1 тем, что, с целью сокращения пуско:наладочного периода, упрощения про„„Я0„„ 058899 A цесса и повышения производительности очистных сооружений, биохимическую очистку осуществляют микрофлорой, в том числе активного ила, предварительно выращенной.на органических соединениях, выбранных;...из ряда, включающего спирты, ацетон, лактат натрия, сахарозу, или сточных водах, их сбдержащих, после периода адаптации, а адаптацию осуществляют внесением фенольных соединений дозами по 10-30 мг/л до завершения окисления каждой дозы.

2. Способ по п. 1, о т л и ч аю шийся тем что адаптацию осуо ществляют- при 25-50 С и в качестве биогенных добавок используют ацетат е натрия, пирокатехин, органические соединения или сточные воды, на ко,,торых выращивают микрофлору.

С:

1058899

Изобретение относится к биохимической очистке сточных вод и может быть использовано для очистки сточных вод,содержащих фенольные соединения.

Иэвестеи способ получения популяций селективной активности, заключающийся в том, что применяемые в составах концентраты непатогенных микроорганизмов получают выделением в естественных условиях микробных штам- 10 мов в безукоризненно функционирующих системах биологической очистки и культивированием ьх при медленном перемешивании в присутствии питательного раствора при регулируемом содержании. 5 кислорода )1) .

Однако процедура выделения штаммов микроорганизмов, обладающих нужными и полезными признаками, свойствами, является длительной и трудоем ъ0 кой, причем постоянный вынос из очист-. ных сооружений засеяннь.х микроорганизмов не позволяет поддерживать их высокую концентрацию, что удлиняет пусконаладочный период, усложйяет про 5 цесс очистки.

Наиболее близким к предлагаемому по технической сущности и достигаемому результату. является способ биохимической очистки сточных вод от фенолов специально выделенным штаммом бактерий Pseudomonas Кeru° 8з nose k2) .

Недостатками способа являются длительность процедуры выделения, а также невысокая скорость окисления фенолов при использовании выделенного штамма бактерий, а именно

200-300 мг фенола за сутки.

Цель изобретения - сокращение пусконаладочного периода, упрощение . 40 процесса и повышение производитель ности очистных сооружений.

Поставленная цель достигается тем, что согласно способу биохимической очистки фенолсодержащих сточных вод,осуществляют в присутствии биогенных добавок микрофлорой, в том числе активного ила, предварительно выращенной на органических соединениях, выбранных иэ ряда; вклю чающего спирты, ацетон, лактат натрия, сахарову или сточных водах,, их содержащйх,. после периода адапта ции, а адаптацию осуществляют внесением фенольных соединений дозами по

10- .30 .мг/л дО завершения окисления. каждой дозы.

Адаптацию осуществляют при 2550 С, а в качестве биогенных добавок ,,используют ацетат натрия, пирокатехин, органические соединения или 60 сточные. во и, на которых выращивают микрофлору. . Использование для очистки фенальных соединений микрофлоры, выращен,ной предварительно на спиртах и дру- 65 гих органических соединениях или на сточных водах, их содержащих, после периода адаптации позволяет заметно сократить объем и период пусконаладочных работ, поскольку выращивание микрофлори на органических соединениях, не содержащих фенолы, протека- ет намного интенсивнее.

Одновременно достигается упрощение технологии очистки, поскольку отпадает надобность в трудоемкой и длительной работе по выделению культур фенолокисляющих микроорганизмов и получении в достаточном количестве их биомассы.

Адаптация микрофлоры к фенольным соединениям, произведенная в соответствии с предлагаемым способом, не снижает способности микрофлоры, в том числе активного ила, к осаждению и к окислению соединений или сточных вод, на которых микрофлора предварительно была выращена. Осуществление адаптации внесением фенольных соединений дозами по 10-30 мг/л позволяет. сократить период адаптации, период пусконаладочных работ, поскольку при внесении более высоких доз фе иолов в образцы, реагирующие на избыток фенолов по 1 типу (сигмовидность кривых О и .рН), скорость адаптации снижается, причем последние, остаточные количества фенольных соединений окисляются с возрастающей скоростьк!.

Образцы микрофлоры активного ила, несмотря на очевидную разнородность видового состава, проявляют наивысшую активность при окислении источников углерода в достаточно узких температурных пределах.

Исходя из того, что температур« ный оптимум у разных образцов микрофлоры активногб или расположен в различных областях для адаптации микрофлоры с целью ее ускорения принят температурный интервал

25-50 С.

Интенсификация процесса адаптации достигается также использованием в качестве биогенных добавок ацетата натрия, пирокатехина, органических соединений или сточных вод, ра которых микрофлору предварительно выращивают.

Использование биогенных добавок ускоряет ход контролируемой адаптации микрофлоры к фенольным соединениям, еще более сокращает усконаладочный период.

Предлагаемый способ осуществляют следующим образом.

В стеклянный сосуд, содержащий

0,1-1 л биомассы микрофлоры, или в аэротенк-смеситель, содержащий активйыййл, выращенный предварительно на органических соединениях, выбранных из ряда„ включающего спирты, 1058899 ацетон, лактат натрия, сахарозу, или на содержащих эти соединения сточных водах, опускают датчик растворенного .:ислорода любого типа, например ЭГ-152-003, или датчик рй-метра, подключенного к потенциометру, например, KIIC-4.

В сосуд предварительно опускают до дна стеклянный капилляр или керамический распылитель, подсоединенный к воздушной линии, и в условиях 10 аэрации на диаграммной ленте записывают динамику показателей 0 или рН.

Для ускорения процесса адаптации микрофлоры к фенольным соединениям температуру образца или содержимого аэротенка-смесителя поддерживают постоянной в пределах 25-50 О. Поскольку ход адаптации контролируют показателями 02 или рН, записываемые на диаграммной ленте кривые должны от ражать "голодное" состояние микрофло- ры, и в ней не должны содержаться органические соединения, окисление которых могло бы затруднить воэможность контроля за процессом. Чтобы убедиться в том, что кривые 0 или рН отражают состояние эндогенного дыхания, в образцы микрофлоры или в аэротенк-смеситель вносят соединения, на которых микрофлора была предварительно выращена из расчета

1-30 мг/л (по веществу или по BIIK), и в случае "голодного" состояния указатель потенциометра анализатора . растворенного кислорода приостанавливает движение в сторону насыщающей 35 концентрации или .сдвигается в сторону пониженного содержания 0Z . Движение указателя рН зависит от того, внесены нейтральные органические соединения или соли органических кислот. В любом случае отклонение указателя О4. или рН свидетельствует об исчерпанности субстратов и о возможности начать внесение субстратов.

После начала движения Указателей 45

О или рН в сторону повышенного значения параметров должно пройти 510 мин, чтобы образец микрофлоры (активный ил) содержал высокое исходное количество кислорода (стартовая концентрация 0 ), а имеющаяся двуокись углерода в значительной степени была удалена. При завершении окисления первой дозы фенолов (10 мг/л), на которое может потребоваться от 15-20 мин до часа и более, кривые О или рН в результате уменьшения потребления ОП и выделеНия двуокиси углерода начинают подвигаться в противоположную сторону.

В результате осуществляемой адап- 60 тации на окисление последующих доз

Фенолов требуется вес меньше времени, т.е. адаптация идет с возрастающей скоростью., Скорость адаптации микрофлорь" к фенольным соединениям 65 еще более возрастает, если одновременно с фенольными соединениями вносить ацетат натрия, пирокатехин и органические соедийения или сточные воды, на которых.микрофлора предварительно .выращена.

При условии подогрева образца микрофлоры или активного ила до постоянной температуры (25-50ОC) процесс адаптации длится 2-6 ч.

П р и и е р 1. Проводят адаптацию к м-крезолу микрофлоры активного ила, окисляющего искусственный сток, содержащий 400 мг/л бутанола. активный ил получен на модели аэротенкасмесителя при периоде аэрации 5,5 ч (Д. 0,18 ч-<). При адаптации активный ил (концентрация по сухому веществу 1,92 г/л) аэрируют в объеме

1 л с расходом воздуха 1,5 л/мпн, затем 2 л/мин. Температуру образца микрофлоры поддерживают автоматически постоянной и равной 35ОС à рН ри добавлении доз фенольных и других органических соединений составляет

7,6-8,02.

Кривые потребления кислорода записывают на анализаторе растворенного кислорода Э1-152-003 при скорости движения диаграммной ленты 60 мм/ч

Ход адаптации представлен в табл. 1.

Исходя иэ времени от внесения субстрата до начала движения указателя кислорода в.сторону насыщения с учетом инерции прибора рассчитывают скорость его окисления.

Данные эксперимента (серия )) по адаптации к м-крезолу показывают что о

1 при Т 35 С процесс адаптации проходит с резко возрастающей скоростью и через 3 ч на окисление 10 мг/л м-крезола (точка 20) требуется всего

1 5 мин вместе 35 мин.

После окисления в общей сложности

140 мг/л м-крезола дозу в 10 мг/л м-креэола микроорганизмы используют в качестве источника углерода с такой же скоростью (400 мг/л ч ), как и дозу в 10 мг/л бутанола, т.е. органического соединения, на котором микрофлора активного ила была предварительно выращена в режиме непрерывного культивирования.

В процессе адаптации происходит

23-кратное усиление активности микрофлоры по отношению к м-крезолу.

Пример 2 ° Для окисления м-крезола используют микрофлору активного ила, окисляющего на модели аэротенка-смесителя смесь 500 мг/л сахарозы и 75 мг/л бутанола при периоде аэрации 5,5 ч (Д = 0,18 ч 1 ).

Условия: концентрация активного ила 2,62 г/л, аэрация 1,5 л/мин, T = 35 C, значения рН при внесении субстратов 7,2-7,72.

Процесс адаптации (серия Ii) начинают внесением 10 мг/л водного раст1058899 вора м-крезола, для окисления которого требуется 45 мин. Последующие дозы м-крезола вносят одновременно с бутанолом или сахарозой и окисляют эа все более короткие промежутки времени, т.е.. с возрастающей скоростью

13, 57, 83, 75, 103 ... 219 мг/л ч

Поскольку окисление фенольных соединений данным образом обратимо,подавляется избытком субстрата, значение скорости окисления 30 мг/л м«крезо- !0 ,ла не противоречит результатам опыта.

Спустя 3 ч адаптации м-крезол окис- ляется со скоростью такого же порядка, как бутанол, и в 1/2 раза с меньшей скоростью, чем сахароза. В процессе адаптации происходит 17-кратное усиление активности микрофлоры по отношению к м-креэолу.

Пример 3. Для окисления фено20 ла используют микрофлору, выращенную предварительно в периодическом режиме на лактате натрия. Концентрация биомассы 1,64 г/л, аэрация 1,5 л/мин, Т 300С, рН при внесении субстратов

8, 6-8, 7.

В табл. 1 представлены значения скоростей окисления фенола, внесенно»

ro в образец микрофлоры одновременно с лактатом натрия (серия tlt).

В процессе адаптации происходит

3-кратное увеличение активности микрофлоры по отношению к фенолу.

Пример 4. Проводят окисление м-крезола микрофлорой, выращенной в периодическом режиме на этаноле (2,8 г/л, аэрация 1 5 л/мин, T

35 С, рН при внесении сусбратов . 6,6-6,9).

В процессе 3-часовой адаптации происходит 17-кратное увеличение ак- 4О тивностимикрофлоры по отношению к м-крезолу.

После адаптации м-креэол окисляется со скоростью такого же порядка, что и этанол (серия 1Ч, табл. 1).

Пример 5. Определяют существенность для процесса адаптации доз фенольного соединения 10,30 и 100 мг/л.

Условия: концентрация биомассы микрофлоры, выращенной на бутаноле.- 3,8 г/л, 5О

Т 270С, аэрация 1,5 л/мин, На окис- .ление м-креэола, внесенного в образец дозами 10 и 100 мг/л, потребовалось 1 ч 23 мин, т.е. средняя скорость окисления 78,7 мг/л. Примерно такое же количество м-креэола (120.мг/л), внесенное дозами по 10 и 30 мг/л, было окислено в общей сложности в течение 57 мин 50 с со средней скоростью 124,5 мг/л яас.

Пример б,, Определяют сущест-60 венность процесса адаптации доз фенольного соединения 10, 30 и 50 мг/л,, Условия опыта: 3,92 г/л, 27эС, 1,5 л/мин. Для окисления первой дозы

50 мг/л м-крезола образом, выращен- 65 ным на бутаноле, требуется 2 ч 3 мин, для окисления второй дозы 50 мг/л

45 мин, В том случае, когда м-крезол вносят дозами 10 мг/л, первые 50 мг/л м-креэола окисляются. в течение. соответственно 43:24, 13,5, 10,5 и 9 мин или в общей сложности в течение 1 ч

40 мин, следующие 50 мг/л м-крезола, внесенйые в образец дозами 10,30 и

10 мг/л, окислены в течение 8,24 и б мин (всего 38 мин), т..е. на окисление 100 мг/л м-крезола, внесенного дозами 50 мг/л, требуется 2 ч 48 мин, а дозами 10-30 мг/л - 2 ч. 18 мии.

Пример 7. Определяют эффект стимуляции адаптации внесением в микрофлору, выращенную на бутаноле, одновременно с м- креэолом органических соединений.

Результат опыта по стимуляции адаптацииг при внесении в качестве первой дозы кроме м-крезола 10 мг/л бутанола, а в качестве следующей дозы 20 мг/л бутанола и 30 мг/л ацетата натрия скорость адаптации повышается на 35-100Ъ. Данные представлены

s табл. 2.

Пример 8. Определяют эффект стимуляции адаптации за счет внесения органических соединений в микрофлору, выращенную в непрерывном режиме на ацетоне. В опыте с внесением субстратов в качестве первой дозы кроме 10 мг/л м-креэола добавляют

30 мг/л пирокатехина и 30 мг/л ацетата натрия, в качестве второй дозы

10 мг/л ацетона и 60 мг/л ацетата натрия, в качестве четвертой—

30 мг/л ацетона.

Внесение дополнительных органических соединений повышает скорость адаптации на 29-200%. Данные представлены в табл. 3.

Пример .9. По времени от внесения м-крезола в микрофлору, выращенную в непрерывном режиме на ацетоне, до начала движения укзэателя рН-метра в сторону более высоких значений определяют воздействие на ход адаптации подогрева микрофлоры с 20 до 35 С. Внесенные первые четыре дозы м-крезола окисляются при 35 С со скоростью в 2 раза большей, чем при

20 С, Пятую дозу м-крезола окисляют при однсй и той же температуре (35 С) и в обоих случаях с одинаковой скоростью. Однако в случае подогрева до 35 С получают. выигрыш во времени, о поскольку общее время адаптации при

200С составляет 2 ч 35 мин, а при

35 С 1 ч 11 мин. Данные представлены в табл. 4, Адаптацию образца, выращенного на ацетоне, к м-крезолу продолжают и после внесения в течение последующих

4 ч 400 мг/л м-крезола, дозы в 10 и 30 мг/л м-креэола окислены со ско1058899

Динамика адаптации, %

Концеитра- Время потребция, мг/л ления, мин,с

Скорость

Внесенный суб-, страт окисления, мг/л ч

Серия Точка

° Ю ЧЮВЮЮ Ю»В ВВ

0 1 с 420 с 450

1 мин 25

1 мин 20

Бутанол

1 мин 30 с ° 1200

Ацетат натрия м-Крезол

Бутанол 4 35 мин

1 мин 30 с 400

1 мин 30 с 400

11,5

13 мин

10 м-Крезол

5 мин 20 с 11?

4 мин 50 с . 123

1 мин 25.с 425

31

10

Бутанол ростью (соответственно) 340 и 360 мг/л. в час.

Химическое потребление кислорода (ХПК) жидкой Фазы образца после окис- . ления 470 мг/л м-креэола, 30 мг/л ацетона и 10 .мг/л формальдегида увеличивается по сравнению с контролем на 35 мг О/л. Поскольку ХПК внесенного количества м-крезола, определен- . ное бихроматным методом, составляет

1175 мг О/л, практически все внесен- ® ное количество м-крезола использовано на энергетические и конструктивные цели. После завершения опыта по адаптации скорость окисления 30 мг/л ацетона составляет 278 мг/л, т.е. адап 35 тированная микрофлора не теряет спо« собности окислять соединение, на ко" тором была выращена.

П р и м,е р 10. Определяют эффект . стимуляции адаптации к м-крезолу внесе-Зъ нием биогенных добавок. Для опыта используют микрофлору активного ила, окисляющую на модели аэротенка-смесителя искусственный сток, содержащий в 1 л водопроводной воды 500 мг метанола (период аэрации 7 ч).

Опыт по адаптации микрофлоры к м-крезолу проводят при концентрации . или - 2,92 г/л, аэрации. 1 л/мин, Т

35 С. Стимуляцию осуществляют внесениемсразу после первой дозы м-кре эола последовательно 10 мг/л формальдегида,, 30 мг/л метанола, 30 мг/л формапьдегида и 30 мг/л ацетата натрия.

После внесения второй дозы (10 мг/л) ,м-крезола вносят последовательно по

30 мг/л метанола, формальдегида и ацетата натрия. Третью и четвертую дозы м-крезола окисляют без внесения органических соединений. Эффект стимуляции от внесения дополнительных субстратов составляет 25-90%.

Данные представлены в табл. 5.

При реализации предлагаемого способа необходимо учитывать следующие особенности: при внесении в обраэцЫ микрофлоры активного или доз любого из креэолов всегда повышается активность микрофлоры и по отношению к фенолу при внесении в образцы микрофлоры доз фенола не всегда появляется столь же высокая активность к крезоЛам, но в любом случае она повышается с удалением метильной группы от гидроксила," т.е. в ряду о-крезол, м-креэол, и-крезол после проведенной ускоренной адайтации к фенольным соединениям каждый образец микрофлоры, выращенный на спиртах и других органических соединениях, реагирует на концентрацию фенолов

10-100 мг/л однозначно, как и на локализацию метильной группы, что позволяет рассматривать образцы смешанной микрофлоры активного ила как однородные по данным признакам вследствие обмена генетической информацией и стремления микрофлоры к монокультуре.

С учетом того, что вероятность успешной адаптации повышается, если микроорганизмы утилизируют близкие по структуре соединения, предлагаемый способ может найти применение для детоксикации и очистки сточных вод, содержащих соединения ароматического ряда с различными Функциональными группами, в частности галогеносодержащие фенолы.

Т а б л и ц а 1

1058899

10 м-Крезол

3 мин 20 с

Змии 10 с

:10

189

° »

:20б

»

51

2мин 55 с

12

1 мин -20 с

450

Бутанол м-Креэол

66

2 мин 15 с 267

Бутанол м-Крезол

326

1 мин 25 с

1мин 50 с

8 1

7 мин 10 с

250

ЗО

1 мин 45 с . 344

86 10

Бутанол

2 мин

19

1мин ЗОс

372

20 . м-Крезол

10100

4 мин 50 с

21

20

1 Сахароза

320 м-Кре зол

10

5,4

220

Бутанол

200

57 м-Крезол

4 мин 40 с

Сахароза

520

7 мин 15 с 83.10 м-Крезол

Бутанол

226

10 м-Крезол

75

480

Сахароза м-Крезол

ТОЗ

650

13 мин

2 мин 45 с

139

58

219

91

Фенол

2мин 30c

240

100

10

720

654

30 м42

10

3 Фенол

2 мин 50 с

636

30 н62

30

Фенол

5 . Лактат натрия

720

30, 15

16

Ацетат натрия м-Крезол

Лактат натрия

Ацетат натрия

Лачтат натрия

3. мин 45 с

45 мин

2мнн 45с

3 мин

10 . 10 мин ЗО с

2 мин 40 с

24 мин

5 мин

17 мин 25 с

2мин 45 с

2мин ЗОс

2 мин 45 с 14 мин 29 мин

2мин 30 с

Продолжение табл. 1

1 1

1058899

Продолжеййе табл. 1

Р «22 иин 30 с 81

61

Фенол

6 Лактат натрия

2мин 30 с

720

103

17 мин 30 с

77

Фенол

7 Лактат натрия

2 мии 30 с. 720

84

112

Фенол

8 Лактат натрия

Фенол

770

9 Лактат натрия

129

Фенол

133

100

13 иин 30 с 133

100

212

800.6

10

240

745

11 мин 20 с 53

8иин 20 с

6 мин 10 с

2 иин 50 с л

10 212

9 Этанол м-Крезол

10 Ацетат натрия 120

«5 иин

2мнн 55с

65

124

14 мин 5 с

Змии 30 с

30 м-Крезол

»»

171

3 мин 10. с

190

100

12

» в

Таблица 2

Эффект внесении субстрата, Ф к контролю .

178

21 иин 28 6

10 37 мин 16

10 13 мин 20 с 45 6 мин 40с 90 200

10 Фенол

11

Этанол

2 Ацетат натрия

3 м-Крезол

4 Этанол

5 Ацетат натрия

6 и-Крезол ю ю ю еВ 4 в еВ еВ»»»

Внесение и-крезола мг/д

»»»»»ев в»»»

3 4 5 6

16 мин

2мин 30 с

15 мин

2 мин 20 с

14 мнн

4мин 30 с

2 мин 50 с

2иин 15 с

55 мин

2мнн 30с

2иин 25 с

»веееев«»в ев»ев»ее » ве аптациа а инесе» ° ием субстратов

»»»»»»»»»»»» » в» реми Скорость отребл. окисления ислоро- и-крезола а мг/л час

»»юве»»ю ю»»

1058899

Продолжение табл. 2 е ффект внесения. убстрата, Ъ к контролю

Контрольная адаптаци

Адаптация с внесе ием субстратов

Внесение м-кре„зола мг/л

Время пот ребления кислорода

Скорость .окислени м-крезол мг"л

Ф ремя Скорость отребл. окислени ислоро- м-крезол а мг/л час

20 мин 40 с 92

Змин 20 с 180

28 мин 2.0 с 64.30

144

4 мин 30 с 133

135

Таблица 3

Адаптация с внесением субстрата

Эффект внесения субстрата, % к контролю

Внесение м-крезола, мг/л

Время потребления кислорода

Скорость окисления м-крезола, мг/л час

Время по- Скорость требления окисления кислорода м-крезола мг/л час

129.

33 мин 18

38 мин . 47

2 мин 45 с 220

9 мин 30 с 190

2 мин 5 с 290

42 мин 14

196

1 час 15 м

9 мин

300

10

240

22 мин 40 с 79

4 мин 30 с 133

220

Таблица 4

Иэменение рН

ТОС

Внесе но м-кре эола мг/л

Время подкисления

Скорость окисления мг/л

Измерение рН

Время подкисления

Скорость окисле» ния., вв;/л час

« тос

42 мнн 14 35 6,98-7,13

30 мнн 20 35 7 17-7 09

1 ч 3 мин . 29 35 7,14-7,09

10 20 7,44-7,46

10 20 7,47-7,42

12 мнн 50

30 20 7,46-7,27

10 20 2,36-7 24

15 мин

7,3-7,15

10 35

5 мин

Таблица 5

Внесено м-крезола, мг/л

Скорость окисления м-крезола, мг/л час

Изменение рН

Время подкисления корость кислеия

-крезрл г/л час

13,6 ° 7,25-7,66 35 мин 17

44 мик

33 мин

7,49-7,59

7,62-7,66

190

10

Контрольная адаптация

Контрольная адаптация е«е

20 мии 30

27мин 30 с 66

40 35 7,21-7,06 7 мин 86

120 35 7-15-7 i 05 5 мин 120

« » е«е»««ее«»«е »«

Адаптация с внесением ффект внесубстратов ения субтрата, %

Изменение рН Время контролю под- . кисле н ния

7,69«7,71 17 м 30 с 34

1058899

Контрольная адаптация

Адаптация с внесением субстратов ффект внесения субстрата, В контролю

Изменение рН

Время подкисления

7,76-7,71 14 мин 43

162

7,72-7,64 22м 30 с 26,6

7,71-7,66 15 мин 40

10

7,76-7,71 10 мин 60

150

Составитель A. Артюшкин

Редактор Л. Веселовская Техред N.Íàäü еююю еее е

Заказ 9695/19 . Тираж 941

ВНИИПИ- Государственного комитета СССР по делам изобретений и открытий

113035,,Москва, Ж-35, Раушская наб., д. 4/5

ЮЮ

Филиал ППП "Патент", г. ужгород, ул. Проектиая, 4

Корректор M.Øàðîøè

Подписное

Внесено м-крезола, мг/л

Скорость окисленн м-крезола, мг/л час

1 Продолжение табл. 5

Изменение рН Время Скорость под- окисле- кисле- ния ни я м-.крез ол мг/л час