Способ определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования

Изобретение относится к области биохимии, в частности к способу определения геновариантов штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования. Заявленный способ предусматривает выделение хромосомной ДНК исследуемого штамма, амплификацию ДНК мишеней в полимеразной цепной реакции с использованием сконструированных праймеров, секвенирование амплифицированных фрагментов. Геновариант исследуемого штамма возбудителя чумы определяют по вариабельным нуклеотидам, маркерным для отдельных геновариантов. Способ позволяет эффективно и надежно определять геноварианты штаммов Y.pestis. 1 табл., 4 пр.

 

Изобретение относится к области медицинской микробиологии, в частности, к внутривидовой дифференциации и молекулярному типированию штаммов возбудителя чумы, и может быть использовано в научно-исследовательских учреждениях медицинского профиля и службах Роспотребнадзора.

Бактерия Yersinia pestis является возбудителем чумы - особо опасной инфекционной природно-очаговой болезни, которая и в настоящее время представляет значительную угрозу для населения многих стран. Природные очаги чумы широко распространены на территориях многих континентов и государств, в том числе в Российской Федерации и других странах СНГ. На территории России противочумными учреждениями Роспотребнадзора осуществляется постоянный мониторинг природных очагов чумы, которые проводят профилактические меры по снижению их эпизоотической активности. В то же время во многих странах ближнего и дальнего зарубежья такая работа на должном уровне не ведется, что может привести к заносу в нашу страну этой особо опасной инфекции. Ввиду этого службы здравоохранения должны располагать современными высокоэффективными средствами быстрой индикации и идентификации возбудителя чумы, обеспечивающими определение эпидемической опасности штамма Y.pestis, установление его происхождения и выявление путей заноса инфекции.

В практике противочумных учреждений Российской Федерации и других стран СНГ используется внутривидовая классификация возбудителя чумы, принятая на совещании противочумных учреждений в 1985 г., которая делит штаммы Y.pestis на пять подвидов - основной и четыре неосновных - кавказский, гиссарский, алтайский и улегейский. В основной подвид входят высоковирулентные штаммы, которые могут вызывать эпидемии чумы. К неосновным подвидам относятся штаммы с избирательной вирулентностью, которые могут послужить причиной отдельных случаев болезни, но которые не обладают высоким эпидемическим потенциалом. Штаммы Y.pestis неосновных подвидов циркулируют в основном в очагах России, других стран СНГ, Грузии, Монголии, хотя известно о штаммах «microtus» из Китая с характеристиками неосновного подвида и единственном штамме неосновного подвида Angola из Африки. Кроме того, существует группа штаммов с характеристиками неосновного подвида из Таласского высокогорного очага чумы в Киргизии, систематическое положение которой остается в настоящее время неясным.

По широко используемой зарубежной классификации штаммы основного подвида делят на три биовара - античный, средневековый и восточный. Штаммы неосновных подвидов зарубежные авторы часто объединяют под общим названием пестоиды (pestoides).

Внедрение в практику исследований высокотехнологичной методики полногеномного секвенирования показало, что возбудитель чумы обладает значительно большим генетическим разнообразием, чем это было принято считать ранее. Секвенирование большого числа полных геномов штаммов Y.pestis разного происхождения позволило установить, что в пределах подвидов и биоваров чумного микроба существуют отдельные популяции, которые имеют фенотипические и генетические отличия и которые получили обозначение геновариантов возбудителя чумы [G. Morelli, Y. Song, С.J. Mazzoni et al. Phylo-genetic diversity and historical patterns of pandemic spread of Yersinia pestis II Nat Genet. - 2010. - V. 42 (12). - P. 1140-1143; Y. Cui, C. Yu, Y. Yan et al. Historical variations in mutation rate in an epidemic pathogen, Yersinia pesti sil PNAS. - 2013.- V. 110 (2). - P. 577-582; Г.Н. Одиноков, Г.А. Ерошенко, Я.М. Краснов и др. Анализ полногеномной последовательности штаммов Yersinia pestis на основе ступенчатого 680-SNP алгоритма // Проблемы особо опасных инф. - 2013. - №3. - С. 49-54].

Так, среди штаммов неосновных подвидов или пестоидов выделяют геноварианты 0.РЕ2а, 0.PE2b и 0.РЕ2 с кавказского подвида, 0.PE3 штамма Angola, группу 0.РЕ4 среди которой мы выделили геноварианты 0.РЕ4а - алтайский подвид, 0.PE4h - гиссарский подвид, 0.PE4t - таласские штаммы и 0.РЕ4 - штаммы microtus. Геноварианты штаммов улегейского подвида в литературе не представлены, и поэтому мы обозначили их как 0.РЕ5.

У античного биовара известны геноварианты 0.ANT1, 0.ANT2, 0.ANT3, 4.ANT, 3.ANT1, 3.ANT2, 1.ANT, 2.ANT1, 2.ANT2, 2.ANT3, штаммы которых распространены в различных регионах Азии и Африки. У средневекового биовара, циркулирующего в большинстве очагов России, других стран СНГ и в очагах Центральной Азии выделяют геноварианты 2.MED0, 2 MED1, 2.MED2, 2MED3. Штаммы восточного биовара распространены в Северной и Южной Америках, в Юго-Восточной Азии, в Африке и включают три геноварианта 1.0RI1, 1.0RI2, 1.0RI3.

Таким образом, определение геноварианта штамма Y.pestis, вызвавшего вспышку или единичный случай чумы, важно для установления происхождения штамма (местный или завозной случай) и выявление вероятных путей заноса инфекции. Определение геновариантов штаммов, циркулирующих в различных природных очагах имеет и фундаментальное значение для реконструкции основных путей формирования современных границ ареала чумного микроба в период образования вида Y.pestis.

Все известные геноварианты возбудителя чумы выделены с помощью полногеномного секвенирования штаммов Y.pestis на основе анализа полиморфизма единичных нуклеотидов по всему геному этих штаммов. Однако секвенирование полного генома штамма бактерии является затратным методом и требует наличия дорогостоящего оборудования, реактивов, а также длительного времени на проведение этой процедуры. В то же время в результате анализа полиморфизма единичных нуклеотидов в секвенированных геномах штаммов Y.pestis был сделан вывод о том, что каждая мутация, вызвавшая замену единичного нуклеотида, произошла в истории эволюции возбудителя чумы лишь однажды, за исключением 28 из них, представляющих известные гомоплазии генома. Из этого следует, что каждая из этих точечных мутаций, возникших в отдельной популяции штаммов Y.pestis, является характерной генетической меткой (маркером) отдельного геноварианта. Ввиду этого очевидно, что дорогостоящая процедура определения геноварианта с помощью полногеномного секвенирования может быть на практике заменена гораздо более простым и экономичным способом определения геновариантов на основе выявления в их геноме генетической метки - замены единичного нуклеотида, маркерного для конкретного геноварианта. Таким образом, на основе мультилокусного секвенирования выбранных полиморфных участков генома с применением сконструированных на них праймеров можно быстро и надежно определить принадлежность исследуемого штамма Y.pestis к одному из геновариантов возбудителя чумы.

Ранее метод мультилокусного секвенирования применялся для определения видовой и внутривидовой принадлежности штаммов Y.pestis.

Известен способ дифференциации иерсиний методом мультилокусного сиквенс-типирования фрагментов генов жизнедеятельности glnA, gyrB, recA, F-HSP60, полученных в полимеразной цепной реакции [Kotetishvili M., Kreger Α., Wauters G. et al. Multilocus sequence typing for studying genetic relationships among Yersinia species // J. Clin. Microbiol. - 2005. - V. 43, N6 - Р. 2674-2684]. Использование этих генов позволяет проводить дифференциацию Y.pestis и других видов рода Yersinia, но не позволяет проводить внутривидовую дифференциацию возбудителя чумы и определять подвидовую принадлежность штамма Y.pestis.

Известен способ определения подвидовой принадлежности штаммов Y.pestis на основе секвенирования вариабельных последовательностей генов rhaS и araC [Патент №RU 2404256, опубликован 20.11.2010]. Способ обеспечивает определение подвидовой принадлежности штаммов возбудителя чумы, но он не может быть использован для определения геновариантов штаммов Y.pestis.

Известен способ подвидовой дифференциации штаммов Y.pestis методом мультилокусного сиквенс-типирования [Патент RU №2415948, опубликован 10.04.2011]. Способ основан на использовании вариабельности генов rhaS, araC, metB, aspA и thiH и позволяет быстро и надежно устанавливать подвидовую принадлежность штамма Y.pestis, но этот способ не предназначен для определения геновариантов возбудителя чумы.

Известен способ подвидовой и биоварной дифференциации штаммов Y.pestis методом ПЦР и мультилокусного сиквенс-типирования [Патент RU №2471872, опубликован 10.01.2013]. С помощью этого способа можно определить подвидовую и биоварную принадлежность исследуемого штамма Y.pestis. В то же время он не позволяет устанавливать принадлежность этого штамма к одному из геновариантов возбудителя чумы.

Определение геновариантов возбудителя чумы проводят на основе анализа полиморфизма единичных нуклеотидов в полногеномной последовательности штаммов Y.pestis [G. Morelli, Y. Song, С.J. Mazzoni et al., 2010; Y. Cui, C, Yu, Y. Yan et al., 2013]. Однако этот способ дорогостоящ и требует анализа большого числа генетических локусов, содержащих единичные полиморфные нуклеотиды, что значительно удлиняет время проведения анализа.

В научной и специальной литературе отсутствуют публикации об использовании метода мультилокусного секвенирования для определения геновариантов штаммов Y.pestis. Все вышеизложенное требует разработки простого и надежного способа определения геновариантов штаммов возбудителя чумы.

Технической задачей изобретения является разработка быстрого, эффективного и экономичного способа определения геновариантов штаммов Y.pestis с помощью мультилокусного секвенирования.

Технический результат заключается в обеспечении быстрого, простого и надежного способа определения геновариантов штаммов возбудителя чумы с помощью мультилокусного секвенирования. Вместо сложного, трудоемкого и дорогостоящего анализа полного генома исследуемого штамма Y.pestis по множеству локусов полиморфных единичных нуклеотидов для установления геноварианта изучаемого штамма достаточно провести у него секвенирование небольшого числа участков генома для выявления в их последовательности единичных замен нуклеотидов, маркерных для отдельных геновариантов возбудителя чумы.

Технический результат достигается способом определения геновариантов штаммов Y.pestis на основе мультилокусного секвенирования, который предусматривает амплификацию ДНК мишеней у исследуемого штамма с помощью сконструированных праймеров SEQ ID NO: 1-26, секвенирование амплифицированных фрагментов, выявление в них замен единичных нуклеотидов, маркерных для отдельных геновариантов, и определение этих геновариантов в соответствии с таблицей.

Способ осуществляют следующим образом.

Выделение ДНК исследуемого штамма чумного микроба проводят по стандартной методике в соответствии с МУ 1.3.2569-09 «Организация работ лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I-IV групп патогенности».

В качестве ДНК мишеней используются следующие участки генома: YPO0785, YPO0027, YP03637, YPO0126, YPO2232, YPO1548, YPO0057, YPO0310, YPO1120, YPO1404, YPO1437, YPO1758, YPO1418, YPO2499, YPO1708, YPO0154, YPO1394, YPO0956, YPO3506, YPO2744, YPO1299, YPO0652, YPO0436, YPO1537, YPO0032 и YPO1565. Номера участкам присвоены по последовательности референтного штамма Y.pestis CO92. Праймеры на выбранные ДНК мишени рассчитаны на основе нуклеотидных последовательностей этих участков генома у штаммов Y.pestis, представленных в базе данных NCBI GenBank, а также на основе нуклеотидных последовательностей полных геномов штаммов возбудителя чумы, полученных нами. Используемые ДНК мишени и сконструированные на них праймеры представлены в таблице. У полученных в ПЦР с помощью рассчитанных праймеров фрагментов определяют нуклеотидную последовательность и устанавливают наличие единичных нуклеотидов, маркерных для отдельных геновариантов штаммов возбудителя чумы. Определение геновариантов проводят в соответствии с таблицей.

Установление принадлежности штамма Y.pestis к одному из геновариантов неосновных подвидов или пестоидов: кавказский подвид - 0.РЕ2а, 0.PE2b, 0.РЕ2с; Angola - 0.PE3; microtus - 0.PE4m; алтайский подвид - 0.РЕ4а; гиссарский подвид - 0.PE4h; таласские штаммы - 0.PE4t осуществляют по единичным полиморфным нуклеотидам в используемых локусах в соответствии с таблицей. У геноварианта 0.РЕ2а в локусе YPO0785 присутствует нуклеотид А, у 0.PE2b в локусе YPO0027 - А, у 0.РЕ2с в локусе YPO3637 - Т, у 0.РЕ3 в локусе YPO0126 - Т, у 0.PE4m в локусе YPO2232 - А, у 0.РЕ4а в локусе YPO1548 - А, у 0.PE4h в локусе YPO0057 - G, у 0.PE4t в локусе YPO0310 присутствует нуклеотид Т, у 0.РЕ5 в локусе YPO1120 - Т. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из вышеперечисленных нуклеотидов в используемом локусе этот штамм следует отнести к тому геноварианту неосновных подвидов, маркером которого является этот нуклеотид.

Определение принадлежности штаммов Y.pestis к геновариантам античного биовара 0.ANT1, 0.ANT2, 0.ANT3, 4.ANT, 3.ANT1, 3.ANT2, 1.ANT, 2.ANT1, 2.ANT2, 2.ANT3, осуществляют по единичным полиморфным нуклеотидам в используемых локусах в соответствии с таблицей. У геноварианта 0.ANT1 в локусе YPO1404 присутствует нуклеотид Т, у 0.ANT2 в локусе YPO1437 - Т, у 0.ANT3 в локусе YPO1758 - Т, у 4.ANT в локусе YPO1418 - А, у 3.ANT1 в локусе YPO2499 - А, у 3.ANT2 в локусе YPO1708 - А, у 1.ANT в локусе YPO0154 - G, у 2.ANT3 в локусе YPO3506 - Т. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из вышеперечисленных нуклеотидов в используемом локусе, этот штамм следует отнести к тому геноварианту античного биовара, маркером которого является этот нуклеотид.

Принадлежность к геновариантам 2.ANT1 и 2.ANT2 определяют по единичным полиморфным нуклеотидам в двух локусах - YPO1394 и YPO0956. У геноварианта 2.ANT1 в локусе YPO1394 присутствует нуклеотид Т, а в локусе YPO0956 - А. У геноварианта 2.ANT2 в локусе YPO1394 присутствует нуклеотид G, а локусе YPO0956 - А. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из сочетаний вышеперечисленных нуклеотидных замен в локусах YPO1394 и YPO0956 этот штамм следует отнести либо к геноварианту 2.ANT1, либо 2.ANT2.

Определение принадлежности исследуемого штамма Y.pestis к одному из геновариантов средневекового биовара 2.MED1, 2.MED2, 2.MED3, 2.MED0 осуществляют по единичным полиморфным нуклеотидам в используемых локусах в соответствии с таблицей. У геноварианта 2.MED1 в локусе YPO2744 присутствует нуклеотид Т, у 2.MED2 в локусе YPO1299 - А, у 2.MED3 в локусе YPO0652 - Т, у 2.MED0 в локусе YPO0436 - G. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из вышеперечисленных нуклеотидов в используемом локусе этот штамм следует отнести к тому геноварианту средневекового биовара, маркером которого является этот нуклеотид.

Принадлежность исследуемого штамма Y.pestis к одному из геновариантов восточного биовара 1.ORI1, 1.ORI2, 1 ORI3 определяют по единичным полиморфным нуклеотидам в трех локусах - YPO1537, YPO0032 и YPO1565 в соответствии с таблицей: У геноварианта 1.ORI1 в локусе YPO1537 присутствует нуклеотид Т, в локусе YPO0032 - С, в локусе YPO01565 - С. У геноварианта 1.ORI2 в локусе YPO1537 присутствует нуклеотид Т, в локусе YPO0032 - Т, в локусе YPO01565 - С. У геноварианта 1.ORI3 в локусе YPO1537 присутствует нуклеотид Т, в локусе YPO0032 - С, в локусе YPO01565 - А. В случае обнаружения у исследуемого штамма Y.pestis одного из сочетаний вышеперечисленных нуклеотидных замен в локусах YPO1537, YPO0032 и YPO1565 этот штамм следует отнести к тому геноварианту восточного биовара, маркерами которого являются эти замены.

Сущность изобретения поясняется следующими примерами.

Пример 1. Определение геноварианта штамма Y.pestis неосновного подвида.

У исследуемого штамма с помощью праймеров SEQ ID NO: 1-9 проводят в ПЦР амплификацию ДНК мишеней YPO0785, YPO0027, YPO3637, YPO0126, YPO2232, YPO1548, YPO0057, YPO0310, YPO1120, а затем осуществляют секвенирование амплифицированных фрагментов. У исследуемого штамма в фрагменте YPO1120 в позиции 142 от начала фрагмента присутствует нуклеотид Т, маркерный для геноварианта 0.РЕ5. Исследуемый штамм Y.pestis относится к геноварианту 0.РЕ5 неосновного (улегейского) подвида.

Пример 2. Определение геноварианта штамма Y.pestis основного подвида античного биовара.

У исследуемого штамма с помощью праймеров SEQ ID NO: 10-19 проводят в ПЦР амплификацию ДНК мишеней YPO1404, YPO1437, YPO1758, YPO1418, YPO2499, YPO1708, YPO0154, YPO1394, YPO0956, YPO3506, а затем осуществляют секвенирование амплифицированных фрагментов. У исследуемого штамма в фрагменте YP02499 в позиции 129 от начала фрагмента присутствует нуклеотид А, маркерный для геноварианта 3.ANT1. Исследуемый штамм относится к геноварианту 3.ANT1 основного подвида античного биовара.

Пример 3. Определение геноварианта штамма Y.pestis основного подвида средневекового биовара.

У исследуемого штамма Y.pestis с помощью праймеров SEQ ID NO: 20-23 проводят в ПЦР амплификацию ДНК мишеней YPO2744, YPO1299, YPO0652 и YPO0436, а затем осуществляют секвенирование амплифицированных фрагментов. У исследуемого штамма в фрагменте YP02744 в позиции 89 от начала фрагмента присутствует нуклеотид Т, маркерный для геноварианта 2.MED1. Исследуемый штамм Y.pestis относится к геноварианту 2.MED1 основного подвида средневекового биовара.

Пример 4. Определение геноварианта штамма Y.pestis основного подвида восточного биовара.

У исследуемого штамма Y.pestis с помощью праймеров SEQ ID NO: 24-26 проводят в ПЦР амплификацию ДНК мишеней YPO1537, YPO0032 и YPO1565, а затем осуществляют секвенирование амплифицированных фрагментов. У исследуемого штамма в фрагменте YPO1537 в позиции 76 присутствует нуклеотид Т, в YPO0032 в позиции 180 - С, в YPO01565 в позиции 216 - С, маркерные для геноварианта 1.ORI1. Исследуемый штамм Y.pestis относится относится к геноварианту 1.ORI1 основного подвида восточного биовара.

Таким образом, заявленный способ определения геновариантов штаммов Y.pestis с помощью мультилокусного секвенирования, основанный на выявлении маркерных единичных нуклеотидов в ряде участков генома возбудителя чумы, обеспечивает проведение быстрой и надежной идентификации этих геновариантов.

Разработанный метод является простым, высокоразрешающим и универсальным методом генодиагностического анализа штаммов Y.pestis, который найдет широкое применение при молекулярной экспертизе вспышек чумы, при эпидемиологическом мониторинге природных очагов чумы и в фундаментальных исследованиях, связанных с изучением внутривидовой эволюции возбудителя чумы.

Способ определения геновариантов 0.PE2а, 0.PE2b, 0.PE2с, 0.PE3, 0.PE4m, 0.PE4а, 0.PE4h, 0.PE4t, 0.PE5, 0.ANT1, 0.ANT2, 0.ANT3, 4.ANT, 3.ANT1, 3.ANT2, 1.ANT, 2.ANT1, 2.ANT2, 2.ANT3, 2.MED1, 2.MED2, 2.MED3, 2.MED0, 1.ORI1, 1.ORI2, 1.ORI3 штаммов возбудителя чумы методом мультилокусного секвенирования, включающий выделение хромосомной ДНК исследуемого штамма, амплификацию ДНК мишеней в полимеразной цепной реакции с использованием сконструированных праймеров SEQ ID NO: 1-26, секвенирование амплифицированных фрагментов, выявление в них замен единичных нуклеотидов, маркерных для отдельных геновариантов, и определение геновариантов в соответствии с таблицей.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области биохимии, в частности к несортовому растению кукурузы с увеличенным по сравнению с контролем урожаем, включающему набор аллелей из соответствующего набора QTL, каждый из которых вносит вклад в фенотипический признак урожая зерна, причем указанный набор аллелей обоюдно комплементарен набору аллелей, имеющихся в линии Zea mays, выбранной из группы, состоящей из линии NP 1902, депонированной под номером NCIMB 41577, линии NP 1941, депонированной под номером NCIMB 41576, и линии NPNW 0351, депонированной под номером NCIMB 41578, а также к зерну или семени, им продуцируемому.

Изобретение относится к молекулярной биологии, генетической инженерии, медицине и предназначено для типирования вируса гриппа А. Предлагаемый способ типирования вируса гриппа основан на проведении двухэтапной полимеразной цепной реакции (ПЦР) кДНК вируса с последующей гибридизацией меченных биотином ампликонов с ДНК-микрочипом, содержащим соответствующие дискриминирующие гибридизационные зонды.

Изобретение относится к области биотехнологии и представляет собой набор олигонуклеотидных праймеров для идентификации ДНК животных, входящих в группу: свинья, бык, курица, овца, индейка, мышь, крыса, собака, кошка, и ДНК человека в сухих или консервированных кормах для животных и в сырых или подвергшихся кулинарной обработке мясных продуктах.

Предлагаемая группа изобретений относится к области биотехнологии, а именно к способу диагностики йерсиниоза лососевых рыб и набору для его осуществления. Данная группа изобретений может быть использована для выявления возбудителя йерсиниоза лососевых - Yersinia ruckeri - в пробах для диагностики болезней рыб в ветеринарии.

Изобретение относится к области биохимии, в частности к одновременной идентификации токсигенных штаммов геновариантов Vibrio cholerae О1 серогруппы биовара Эль Тор и их дифференциации по эпидемическому потенциалу.

Изобретение относится к области биотехнологии. Система состоит из следующих элементов: а) модуля подготовки образца, выполненного с возможностью захвата аналита из биологического образца в немикрожидкостном объеме на захватывающей частице, реагирующей на магнитное поле, и направления связанной с аналитом захватывающей частицы, реагирующей на магнитное поле, через первый микрожидкостный канал; б) реакционного модуля, включающего реакционную камеру, имеющую жидкостное сообщение с первым микрожидкостным каналом, и выполненного с возможностью иммобилизации связанной с аналитом захватывающей частицы, реагирующей на магнитное поле, и проведения реакции амплификации множества STR-маркеров аналита.

Настоящее изобретение предоставляет способ предсказания ответа трижды негативного рака молочной железы на терапию противоопухолевым средством. Способ включает: (a) лизирование опухолевых клеток, взятых от трижды негативной опухоли молочной железы, для получения клеточного экстракта; (b) определение уровня экспрессии VEGFR2 в клеточном экстракте; и (c) сравнение уровня экспрессии VEGFR2 в клеточном экстракте, полученном на стадии (b), с эталонным уровнем экспрессии VEGFR2.
Изобретение относится к области медицины и предназначено для детекции гриба Microsporum canis. Осуществляют выделение тотальной нативной ДНК из образца кожи и волос, проводят полимеразную цепную реакцию и амплификацию фрагмента гена 5.8S рРНК Microsporum canis с использованием специфических праймеров.

Изобретение относится к области биохимии. Предложен способ выделения коротких РНК из биологических жидкостей.

Представленное изобретение относится к области биотехнологии и касается способа обнаружения провируса лейкоза крупного рогатого скота. Охарактеризованный способ включает выявление фрагмента LTR (Long Terminal Repeat) - последовательности провируса лейкоза.

Изобретение относится к молекулярной биологии и касается биочипа для типирования вирусов Lassa (LASV), Junin (JUNV), Machupo (MACV), Guanarito (GTOV) и вирусов Ebola (EBOV) и Marburg (MARV), а также способа типирования указанных вирусов. Охарактеризованный биочип содержит гибридизационные зонды, ковалентно присоединенные непосредственно к микроматрице, имеющие структуру дискриминирующих ДНК-полинуклеотидов. Предлагаемый способ основан на проведении полимеразной цепной реакции кДНК вирусов с последующей гибридизацией меченных флуоресцентной меткой ампликонов с биочипом, содержащим дискриминирующие гибридизационные зонды. Представленные изобретения позволяют определять все известные субтипы вирусов LASV, JUNV, MACV, GTOV, EBOV и MARV. 2 н.п. ф-лы, 5 ил., 2 табл., 5 пр.

Изобретение относится к области биотехнологии. Раскрываются способы и композиции для определения наличия рака у субъекта и оценки эффективности лечения у него же. Раскрывается способ использования полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) и техники мультиплексной полимеразной цепной реакции, а также шаблонная реакция обмена и экстензии (TEER) для обнаружения наличия точечных мутаций, усечения или слияния киназы анапластической лимфомы. Предложенная группа изобретений может быть использована в медицине. 3 н. и 21 з.п. ф-лы, 6 ил., 3 табл., 5 пр.

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к способу количественного определения нуклеиновых кислот. Способ включает мечение универсального эталонного олигонуклеотида флуоресцентным маркером. Создают стандартную кривую, используя серийные разведения меченого универсального эталонного олигонуклеотида, путем построения графика зависимости интенсивности флуоресцентного маркера от концентрации меченого эталонного олигонуклеотида. Амплифицируют целевую нуклеиновую кислоту в присутствии флуоресцентного маркера, который метит амплифицированную целевую нуклеиновую кислоту, при этом универсальный эталонный олигонуклеотид не амплифицируют или совместно не амплифицируют с целевой нуклеиновой кислотой. Сравнивают в реальном времени интенсивность флуоресцентного маркера, связанного с меченой амплифицированной целевой нуклеиновой кислотой, со стандартной кривой. Определяют количество амплифицированной целевой нуклеиновой кислоты. Предложенное изобретение позволяет количественно определять нуклеиновые кислоты для исследования генной экспрессии без необходимости нормализовать данные к конститутивному гену или к синтетическому гену интереса. 14 з.п. ф-лы, 21 ил., 3 табл., 6 пр.

Изобретения относятся к области ветеринарной микробиологии и касаются олигонуклеотидных праймеров для идентификации штаммов и изолятов бактерии Pasteurella multocida серогруппы D, а также способа с их использованием. Предложенный способ включает выделение культур микроорганизмов из патологического материала на искусственных питательных средах. Проведение ПЦР с синтетическими олигонуклеотидными праймерами, имеющими нуклеотидные последовательности SEQ ID NO:1 - 5' catcgcatccagaatagcaaact 3', SEQ ID NO:2 - 5' ctccgatgctttggttgtg 3' на район гена dcbF, отвечающего за синтез гепарозансинтетазы. Перенос продукта амплификации на гель и оценку проведения реакции. В случае положительной реакции синтезируется фрагмент, соответствующий размеру 355 п.н. Представленные изобретения могут быть использованы в ветеринарной микробиологии для диагностики пастереллеза сельскохозяйственных животных. 2 н.п. ф-лы, 5 табл., 1 ил., 4 пр.
Изобретение относится к области генетической инженерии, молекулярной биологии и медицины. Предложен набор биомаркеров старения сердца, включающий множество полинуклеотидов, которые дифференциально экспрессируются в ткани сердца у старых субъектов по сравнению с молодыми субъектами, в котором полинуклеотиды выбирают из двух или более генов, вовлеченных в передачу Wnt-сигнала в ткани сердца, где гены представляют собой Dlgh1, Magi3, Akt1, Dab2, Rac1, Ctnnb1, Camk2d, Mapk1, Senp2, Smad3, Mark2, Ccnd1 и Pias4, а также соответствующая композиция и способ скрининга средства или режима на их способность замедлять старение сердца. 3 н. и 13 з.п. ф-лы, 4 табл., 1 пр.
Изобретение относится к области медицины, а именно к способу прогнозирования депрессии тяжелой степени у мужчин с ишемической болезнью сердца (ИБС). Сущность способа состоит в том, что у мужчин с ИБС устанавливают временную и структурную связь между ИБС и признаками депрессии, измеряют уровень личностной тревожности с помощью теста Спилбергера-Ханина. При уровне личностной тревожности менее 45 баллов определяют полиморфизмы -1438A/G гена рецептора серотонина типа 2А и Val66Met гена нейротрофического мозгового фактора, после чего у больных, являющихся носителями аллеля S полиморфизма 5-HTTLPR, аллеля G полиморфизма -1438A/G и генотипа ValVal полиморфизма Val66Met, прогнозируют депрессию тяжелой степени. Использование заявленного способа позволяет эффективно выявлять пациентов с высоким риском развития депрессии тяжелой степени и назначить им своевременную дифференцированную психофармакотерапию. 7 пр.

Группа изобретений относится к области медицины и может быть использована для диагностических исследований. Группа изобретений характеризует автоматическую систему количественной амплификации в реальном времени, способ автоматической очистки нуклеиновой кислоты и количественного определения амплификации гена с использованием указанной системы, способ автоматического измерения количества жизнеспособных клеток патогенных бактерий, анализа патогенных бактерий на чувствительность к антибиотикам и автоматического получения антигенной плотности с использованием указанной системы, а также способ очистки связывающей нуклеиновой кислоты-мишени, которой мечен антиген-мишень, содержащийся в биологическом образце, с использованием указанной автоматической системы. Группа изобретений обеспечивает возможность автоматической обработки большого количества образцов за короткий период времени, а также позволяет проводить разнообразные медико-биологические анализы в одной системе. 7 н. и 52 з.п. ф-лы, 48 ил.

Изобретение относится к области биохимии, в частности к способу определения присутствия или отсутствия локуса устойчивости к пыльной головне в растении маиса, а также к способу определения растения маиса, которое проявляет устойчивость к пыльной головне, где способ включает обнаружение в идиоплазме растения маиса, по меньшей мере, одной аллели маркерного локуса, расположенного на хромосомном участке хромосомы 2 маиса, включающем и фланкированном umc1736 и umc2184. Изобретение позволяет эффективно определять растение маиса, проявляющее устойчивость к пыльной головне. 2 н. и 3 з.п. ф-лы, 4 ил., 7 табл., 20 пр.

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к способу обнаружения ДНК возбудителя туберкулеза - микобактерий туберкулезного комплекса с одновременным установлением генотипа возбудителя и определением генетических детерминант устойчивости к широкому спектру противотуберкулезных препаратов, включая рифампицин, изониазид, фторхинолоны, канамицин, капреомицин, амикацин, этамбутол, в клиническом образце на дифференцирующем олигонуклеотидном микрочипе. Метод основан на мультиплексной ПЦР с одновременным флуоресцентным маркированием ПЦР-продуктов с последующей гибридизацией полученных продуктов на олигонуклеотидном микрочипе, содержащем набор специфичных дискриминирующих олигонуклеотидов. Изобретение также касается олигонуклеотидного микрочипа, набора праймеров и набора олигонуклеотидных зондов, используемых при осуществлении способа. Изобретение позволяет проводить анализ ДНК, выделенной непосредственно из клинического образца, выявлять генотипы возбудителя туберкулеза, ассоциированные с повышенной вирулентностью и трансмиссивностью, обеспечивать персонифицированный выбор эффективных противотуберкулезных препаратов для каждого конкретного пациента, проводить эпидемиологическое генотипирование. 4 н. и 5 з.п. ф-лы, 7 ил., 3 табл., 8 пр.

Изобретение относится к области биоинженерии и касается генетической конструкции, предназначенной для введения в хромосому Yarrowia lipolytica гена RecA из Bacillus subtilis. Представленная конструкция характеризуется последовательностью SEQ ID NO 1. Адресация рекомбинантного белка RecA в митохондрии происходит за счет лидерных последовательностей мРНК гена SOD2, обладающих сродством к внешней поверхности митохондрий и обеспечивающих котрансляционный транспорт RecA внутрь митохондрий. Изобретение позволяет получать рекомбинантные продуценты на основе Y.lipolytica, несущие трансгены в митохондриальном геноме, и предназначено для создания генетической системы модификации митохондриального генома in vivo с целью лечения генетических митохондриальных заболеваний человека. 2 ил.
Наверх