Способ количественного определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого




Владельцы патента RU 2782618:

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации (RU)

Изобретение относится к химико-фармацевтической промышленности, а именно к способу количественного определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого. Предлагается способ количественного определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого, включающий однократную экстракцию этиловым спиртом воздушно-сухого сырья точной навеской массой 1 г, в соотношении сырье:экстрагент 1:50, с последующей пробоподготовкой и определением оптической плотности методом дифференциальной спектрофотометрии, с использованием стандартного образца цинарозид, а при его отсутствии с использованием значения теоретического удельного показателя поглощения, в котором получают водно-спиртовое извлечение из почек дуба черешчатого путем однократной экстракции в течение 120 мин 70% этиловым спиртом воздушно-сухого сырья, измельченного до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2 мм; количественное определение суммы флавоноидов проводят при длине волны 400 нм в пересчете на цинарозид и содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид рассчитывают по формуле: где х - содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид, %; D - оптическая плотность испытуемого раствора; Do - оптическая плотность раствора стандартного образца (СО) цинарозида; m - масса сырья, г; mo - масса СО цинарозида, г; W - потеря в массе при высушивании, %, в случае отсутствия стандартного образца цинарозида используют теоретическое значение удельного показателя поглощения - 334: где х - содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид, %; D - оптическая плотность испытуемого раствора; m - масса сырья, г; 334 - удельный показатель поглощения (Е) СО цинарозида при 400 нм; W - потеря в массе при высушивании, %. Вышеописанный способ является специфичным и селективным способом количественного определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого. 8 ил., 1 пр.

 

Данное изобретение создано в рамках направления развития химико-фармацевтической промышленности и может быть использовано в центрах контроля качества лекарственных средств и контрольно-аналитических лабораториях при проведении количественного определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого (Quercus robur L.).

В настоящее время актуальным направлением современной фармации является изучение химического состава растительных объектов. Одними из перспективных биологически активных соединений (БАС) являются флавоноиды, поскольку данная группа веществ обладает широким спектром фармакологической активности, что является значимым при создании новых лекарственных препаратов на основе лекарственного растительного сырья (ЛРС).

С целью стандартизации биологически активных соединений (БАС) лекарственного растительного сырья необходимо разрабатывать новые и усовершенствовать имеющиеся методы количественного определения БАС как в сырье фармакопейном так и в перспективном малоизученном сырье, каким являются почки дуба черешчатого.

Изучение химического состава перспективных растительных объектов является важным направлением в современной фармации. Дуб черешчатый (Quercus robur L.) представитель семейства буковые (Fagaceae) является фармакопейным растением, в качестве ЛРС которого применяется кора [1, 4, 6, 7]. Кора дуба содержит дубильные вещества (галловая, эллаговая кислоты), флавоноиды (кверцетин, кверцитрин, лейкоантоциандин), тритерпены (фриделин, фриделинол, 3-фриделанол) и ряд других ценных веществ [1, 3, 5, 9]. На данный момент проведено морфолого-анатомическое исследование почек дуба черешчатого, в ходе которого изучены их диагностические признаки, имеющие важное значение в процессе стандартизации сырья [2].

Почки дуба черешчатого являются источником БАС фенольной природы, а именно флавоноида – цинарозида. Однако в научной литературе, отсутствуют данные относительно вопросов количественного определения и стандартизации веществ флавоноидной природы в почках дуба черешчатого.

Также для почек дуба черешчатого на сегодня отсутствуют методики спектрофотометрического определения флавоноидов. Однако, опираясь на имеющиеся данные фармакопейных методик анализа БАС в коре дуба черешчатого, предполагается, что будет рациональным использовать спектрофотометрический метод определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого в пересчете на цинарозид, как на представителя группы флавоноидов.

Прототипом данной методики стал способ количественного определения суммы флавоноидов в листьях тополя черного, недостатком которого является невозможность его применения к почкам дуба черешчатого [8, 10]. Поэтому, целью изобретения является разработка способа количественного определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого.

Техническим результатом является создание способа количественного определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого в пересчете на
цинарозид.

Технический результат достигается тем, что получают водно-спиртовое извлечение из почек дуба черешчатого путем однократной экстракции в течение 120 минут 70% этиловым спиртом воздушно-сухого сырья точной навеской массой 1 г, измельченного до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2 мм, в соотношении «сырье-экстрагент» 1:50; количественное определение суммы флавоноидов проводят методом дифференциальной спектрофотомерии при длине волны 400 нм в пересчете на стандартный образец (СО) цинарозид и содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид и абсолютно сухое сырье рассчитывают по формуле:

где:

x – содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид, %;

D – оптическая плотность испытуемого раствора;

Do – оптическая плотность раствора стандартного образца цинарозида;

m – масса сырья, г;

mо – масса стандартного образца цинарозида, г;

W – потеря в массе при высушивании, %;

в случае отсутствия стандартного образца цинарозида для расчета целесообразно использовать теоретическое значение его удельного показателя поглощения, равное 334:

где:

x – содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид, %;

D – оптическая плотность испытуемого раствора;

m – масса сырья, г;

334 – удельный показатель поглощения (E) стандартного образца цинарозида при длине волны 400 нм;

W – потеря в массе при высушивании, %.

При изучении спектральных характеристик было выявлено, что именно
цинарозид определяет характер кривой поглощения водно-спиртового извлечения из почек дуба черешчатого. Определено, что в УФ-спектре водно-спиртового извлечения почек дуба черешчатого наблюдается батохромный сдвиг длинноволновой полосы флавоноидов (Фиг. 1), как и в случае цинарозида (Фиг. 2), где кривая 1 на фигуре 1 и фигуре 2 демонстрирует исходный раствор водно-спиртового извлечения из почек дуба черешчатого или исходный раствор цинарозида соответственно, а кривая 2 – раствор водно-спиртового извлечения из почек дуба черешчатого в присутствии алюминия хлорида или раствор цинарозида в присутствии алюминия хлорида соответственно.

Изучение УФ-спектров (Фиг. 4), где кривая 1 – раствор цинарозида, а кривая 2 - раствор цинарозида с добавлением алюминия хлорида показало, что раствор СО цинарозида в присутствии алюминия хлорида имеет максимум поглощения при длине волны 400 нм. В УФ-спектре водно-спиртового извлечения из почек дуба черешчатого в дифференциальном варианте на (Фиг. 3) так же обнаруживается при длине волны 400 нм максимум поглощения, который соответствует максимуму поглощения спиртового раствора цинарозида.

Данный факт позволяет проводить спектрофотометрическое определение суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого при аналитической длине волны 400 нм.

Также нами было изучено влияние экстрагента на процесс экстракции. На (Фиг. 5) представлена зависимость выхода флавоноидов почек дуба черешчатого от концентрации экстрагента. В результате эксперимента в качестве оптимального экстрагента нами был выбран 70% этиловый спирт, так как выход действующих веществ из сырья при его использовании максимален.

Далее нами был изучен вопрос относительно продолжительности экстракции на кипящей водяной бане, на (Фиг. 6) представлена зависимость выхода флавоноидов почек дуба черешчатого от времени экстракции на кипящей водяной бане, при этом было выбрано время экстракции 120 минут.

На (Фиг. 7) представлена зависимость выхода флавоноидов почек дуба черешчатого от соотношения «сырье-экстрагент». Из Фиг. 7 видно, что максимальный выход действующих веществ наблюдается при соотношении «сырье-экстрагент» 1:50, по этой причине данное соотношение было выбрано нами в качестве оптимального.

На (Фиг.8) представлена зависимость выхода флавоноидов почек дуба черешчатого от степени измельчения почек. Из Фиг. 8 видно, что максимальный выход действующих веществ наблюдается при степени измельчения – 2 мм.

Учитывая, что увеличение числа операций на стадии пробоподготовки ведет к возрастанию ошибки, выбор сделан в пользу одностадийного процесса экстракции с подтверждением требуемой точности количественного определения.

Таким образом, было определено, что оптимальными параметрами экстракции являются: однократное извлечение 70% этиловым спиртом на кипящей водяной бане в течение 120 минут в соотношении «сырье-экстрагент» – 1:50, оптимальная степень измельчения – 2 мм.

Следует обратить внимание, что для почек дуба черешчатого цинарозид не является специфичным веществом, однако пересчет на него производился исходя из схожих максимумов поглощения раствора цинарозида и водно-спиртового извлечения поек дуба черешчатого находятся в области 400 нм и характерного для цинарозида кратковолнового и длинноволнового спектров, целесообразным является определение содержания суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид при длине волны 400 нм.

Способ реализуется следующим образом.

Методика количественного определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого. Аналитическую пробу сырья измельчают до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2 мм. Около 1 г измельченного сырья (точная навеска) помещают в колбу со шлифом вместимостью 100 мл, прибавляют 50 мл 70% этилового спирта. Колбу закрывают пробкой и взвешивают на тарированных весах с точностью до ±0,01. Колбу присоединяют к обратному холодильнику и нагревают на кипящей водяной бане (умеренное кипение) в течение 120 мин. Затем колбу охлаждают в течение 30 мин, закрывают той же пробкой, снова взвешивают и восполняют недостающий экстрагент до первоначальной массы. Извлечение фильтруют через бумажный фильтр (красная полоса). Испытуемый раствор готовят следующим образом: 5 мл полученного извлечения помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, прибавляют 1 мл 3% спиртового раствора алюминия хлорида и доводят объем раствора до метки спиртом этиловым 96% (испытуемый раствор А). Измеряют оптическую плотность испытуемого раствора на спектрофотометре при длине волны 400нм через 40 минут после приготовления. В качестве раствора сравнения используют раствор, полученный следующим образом: 5 мл извлечения (1:50) помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл и доводят объем раствора спиртом этиловым 96% до метки.

Примечание: Приготовление раствора стандартного образца - цинарозида. Около 0,01 г (точная навеска) цинарозида помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, растворяют в 30 мл 70% этилового спирта при нагревании на водяной бане. После охлаждения содержимого колбы до комнатной температуры доводят объем раствора 70% этиловым спиртом до метки (раствор А цинарозида). 2 мл раствора А цинарозида помещают в мерную колбу на 25 мл, прибавляют 1 мл 3% спиртового раствора алюминия хлорида и доводят объем раствора до метки спиртом этиловым 96 % (испытуемый раствор Б цинарозида). Измеряют оптическую плотность раствора Б на спектрофотометре при длине волны 400 нм. В качестве раствора сравнения используют раствор, который готовят следующим образом: 2 мл раствора А цинарозида помещают в мерную колбу на 25 мл и доводят объем раствора до метки спиртом этиловым 96% (раствор сравнения Б цинарозида).

Содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид и абсолютно сухое сырье в процентах (X) вычисляют по формуле:

где D – оптическая плотность испытуемого раствора;

Do – оптическая плотность раствора СО цинарозида;

m – масса сырья, г;

mо – масса СО цинарозида, г;

W – потеря в массе при высушивании в процентах.

В случае отсутствия стандартного образца цинарозида целесообразно использовать теоретическое значение удельного показателя поглощения – 334.

где D – оптическая плотность испытуемого раствора;

m – масса сырья, г;

334 – удельный показатель поглощения (E) СО цинарозида при 400 нм;

W – потеря в массе при высушивании в процентах.

Значение удельного показателя поглощения (E) для СО цинарозида при 400 нм рассчитывалось экспериментально по формуле:

где D – оптическая плотность испытуемого раствора;

m0 – масса СО цинарозида, г;

V1 – Объем колбы 1, мл;

V2 – Объем колбы 2, мл;

q – Объем аликвоты, мл;

Предлагаемый способ поясняется следующими примерами.

Пример 1.

Аналитическую пробу сырья почек дуба черешчатого (заготовлено в Самарской области, Похвистневский район, с. Первомайск, июль-август 2020 г.) измельчают до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2 мм. Около 1 г измельченного сырья (точная навеска) помещают в колбу со шлифом вместимостью 100 мл, прибавляют 50 мл 70% этилового спирта. Колбу закрывают пробкой и взвешивают на тарированных весах с точностью до ±0,01. Колбу присоединяют к обратному холодильнику и нагревают на кипящей водяной бане (умеренное кипение) в течение 120 мин. Затем колбу охлаждают в течение 30 мин, закрывают той же пробкой, снова взвешивают и восполняют недостающий экстрагент до первоначальной массы. Извлечение фильтруют через бумажный фильтр (красная полоса). Испытуемый раствор готовят следующим образом: 5 мл полученного извлечения помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл, прибавляют 1 мл 3% спиртового раствора алюминия хлорида и доводят объем раствора до метки спиртом этиловым 96% (испытуемый раствор А). Измеряют оптическую плотность испытуемого раствора на спектрофотометре при длине волны 400нм через 40 минут после приготовления. В качестве раствора сравнения используют раствор, полученный следующим образом: 5 мл извлечения (1:50) помещают в мерную колбу вместимостью 25 мл и доводят объем раствора спиртом этиловым 96% до метки.

Для расчета содержания суммы флавоноидов готовят раствор стандартного образца цинарозида, добавляют к нему 3% спиртовой раствор хлорида алюминия, измеряют оптическую плотность окрашенного комплекса при длине волны 400 нм и определенное значение оптической плотности используют в формуле расчета.

Приготовление раствора стандартного образца цинарозида.

Около 0,01 г (точная навеска) цинарозида помещают в мерную колбу вместимостью 50 мл, растворяют в 30 мл 70% этилового спирта при нагревании на водяной бане. После охлаждения содержимого колбы до комнатной температуры доводят объем раствора 70% этиловым спиртом до метки (раствор А цинарозида). 2 мл раствора А цинарозида помещают в мерную колбу на 25 мл, прибавляют 1 мл 3% спиртового раствора алюминия хлорида и доводят объем раствора до метки спиртом этиловым 96 % (испытуемый раствор Б цинарозида). Измеряют оптическую плотность раствора Б на спектрофотометре при длине волны 400 нм. В качестве раствора сравнения используют раствор, который готовят следующим образом: 2 мл раствора А цинарозида помещают в мерную колбу на 25 мл и доводят объем раствора до метки спиртом этиловым 96% (раствор сравнения Б цинарозида).

Содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид и абсолютно сухое сырье в процентах (X) вычисляют по формуле:

где D – оптическая плотность испытуемого раствора;

Do – оптическая плотность раствора СО цинарозида;

m – масса сырья, г;

mо – масса СО цинарозида, г;

W – потеря в массе при высушивании в процентах.

В случае отсутствия стандартного образца цинарозида целесообразно использовать теоретическое значение удельного показателя поглощения – 334.

где D – оптическая плотность испытуемого раствора;

m – масса сырья, г;

334 – удельный показатель поглощения (E) СО цинарозида при 400 нм;

W – потеря в массе при высушивании в процентах.

Значение удельного показателя поглощения (E) для СО цинарозида при 400 нм рассчитывалось экспериментально по формуле:

где D – оптическая плотность испытуемого раствора;

m0 – масса СО цинарозида, г;

V1 – Объем колбы 1, мл;

V2 – Объем колбы 2, мл;

q – Объем аликвоты, мл;

Содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид x=0,23%, что сравнимо со значением, полученном в примере 1 в пределах погрешности (±0,0118).

Все результаты были статистически обработаны. Ошибка единичного количественного определения составила ±4,98%.

Таким образом, предлагаемый способ количественного определения суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид в почках дуба черешчатого с использованием дифференциальной спектрофотометрии разработан впервые для данного вида сырья и обладает следующими преимуществами:

1. Разработанный метод разработан впервые, является специфичным и селективным и позволяет определять сумму флавоноидов в почках дуба черешчатого в пересчете на цинарозид, что обеспечивается проведением однократной экстракции сырья 70% этиловым спиртом, что способствует максимально извлекать целевые вещества (флавоноиды) из почек дуба.

2. Пересчет суммы флавоноидов идет на специфическое для почек дуба черешчатого вещество флавоноидной природы – цинарозид, определяющее характер кривой поглощения в УФ – спектре испытуемого раствора (длина волны 400 нм)

3. Ошибка единичного определения предлагаемого способа составляет ±4,98%, что свидетельствует об объективности разработанного способа.

Этот способ можно применять в центрах контроля качества лекарственных средств, на фармацевтических предприятиях и контрольно-аналитических лабораториях при проведении количественного анализа почек дуба черешчатого.

ИСТОЧНИКИ ИНФОРМАЦИИ:

1. Assessment report on Quercus robur L., Quercus petraea (Matt.) Liebl., Quercus pubescens Willd., cortex EMA/HMPC/3206/2009.

2. Ryabov NA, Ryzhov VM, Tarasenko LV, Sokhina AA. Anatomical and morphological study of the buds of the English oak Quercus robur L. Pharmaceutical botany: modernity and prospects: Collection of materials. FSBEI HE Samara State Medical University of the Ministry of Health of Russia; Edited by V.A. Kurkin. Samara. 2017; 149-158 (In Russ.).

3. Буданцев А.Л., Растительные ресурсы России: Дикорастущие цветковые растения, их компонентный состав и биологическая активность. Том. 1. Семейства Actinidiaceae-Malvaceae, Euphorbiaceae-Haloragaceae. / отв. ред. А.В. Буданцев. СПб.; М., Товарищество научных изданий КМК, 2009. 158 с.

4. Губанов И.А., Киселёва К.В., Новиков В.С., Тихомиров В.Н., Иллюстрированный определитель растений Средней России. Т.-2: Покрытосеменные (двудольные: раздельнолепестные). М.: Т-во научных изданий КМК, Ин-т технологических исследований. – 2003. – С. 34.

5. ГФ РФ XIV издания / ФС.2.5.0071.18 Дуба кора Quercus cortex. –М.: Минздрав РФ. – 2018. – С. 6029-6033.

6. Кароматов И.Д., Махмудова Г.Ф.К. Дуб обыкновенный - применение в лечебной практике // Биология и интегративная медицина. - 2016. - № 3. - С. 41-47.

7. Киселева Т.Л., Смирнова Ю.А. Лекарственные растения в мировой медицинской практике: государственное регулирование номенклатуры и качества. – М.: Издательство профессиональной ассоциации натуротерапевтов. – 2009. - С. 183-184.

8. Куприянова Е.А., Куркин В.А. Разработка подходов к стандартизации листьев тополя черного // Аспирантский вестник Поволжья. – 2018. – № 5-6. – С. 17-21. doi:10.17816/2072-2354.2018.18.3.17-21

9. Куркин В.А. Фармакогнозия: Учебник для студентов фармацевтических вузов (факультетов) / В.А. Куркин. – 4-е, перераб. и доп. – Самара : ООО «Офорт», ФГБОУ ВО СамГМУ Минздрава России, 2019. – 966-969 с.

10. Патент РФ № 2701726 01.10.2019. Способ количественного определения суммы фдавоноидов в листьях тополя черного.

Способ количественного определения суммы флавоноидов в почках дуба черешчатого, включающий однократную экстракцию этиловым спиртом воздушно-сухого сырья точной навеской массой 1 г, в соотношении сырье:экстрагент 1:50, с последующей пробоподготовкой и определением оптической плотности методом дифференциальной спектрофотометрии, с использованием стандартного образца цинарозид, а при его отсутствии с использованием значения теоретического удельного показателя поглощения, отличающийся тем, что получают водно-спиртовое извлечение из почек дуба черешчатого путем однократной экстракции в течение 120 мин 70% этиловым спиртом воздушно-сухого сырья, измельченного до размера частиц, проходящих сквозь сито с отверстиями диаметром 2 мм; количественное определение суммы флавоноидов проводят при длине волны 400 нм в пересчете на цинарозид и содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид рассчитывают по формуле:

где

х - содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид, %;

D - оптическая плотность испытуемого раствора;

Do - оптическая плотность раствора стандартного образца (СО) цинарозида;

m - масса сырья, г;

mo - масса СО цинарозида, г;

W - потеря в массе при высушивании, %,

в случае отсутствия стандартного образца цинарозида используют теоретическое значение удельного показателя поглощения - 334:

где

х - содержание суммы флавоноидов в пересчете на цинарозид, %;

D - оптическая плотность испытуемого раствора;

m - масса сырья, г;

334 - удельный показатель поглощения (Е) СО цинарозида при 400 нм;

W - потеря в массе при высушивании, %.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к аналитическим сенсорным системам и может быть использовано для детектирования активных форм кислорода в биологических и иных пробах, а также при проведении хемилюминесцентного иммунологического анализа с повышенной чувствительностью. Устройство для хемилюминесцентного анализа содержания активных форм кислорода в биологических и иных пробах содержит насос для ввода с помощью трубок жидких реактивов из емкостей с хемилюминофором и исследуемыми пробами в микрофлюидный чип, выход которого связан трубкой с емкостью для слива, и фотоприемник, при этом микрофлюидный чип и фотоприемник помещены в светонепроницаемый корпус, причем микрофлюидный чип выполнен по меньшей мере двухканальным и содержит диэлектрическую подложку с нанесенной на нее метаповерхностью из обработанных лазерным излучением металлических наночастиц, обладающих локализованным плазмонным резонансом в спектральной полосе хемилюминесценции используемого хемилюминофора, а в светонепроницаемый корпус также включены два линейных взаимно-ортогонально ориентированных поляризатора, наложенных на различные каналы микрофлюидного чипа, расположенные друг за другом по ходу распространения излучения вращатель поляризации и установленный непосредственно перед входом фотоприемника третий линейный поляризатор излучения, совпадающий по ориентации с одним из линейных поляризаторов, наложенных на микрофлюидный чип.

Изобретение относится к области физических исследований вещества методами оптической спектроскопии и касается способа детекции энантиомеров хиральных органических молекул. Способ включает в себя модификацию ахиральных нанопроволок молекулами исследуемого аналита и молекулами стандарта с известной хиральностью, иммобилизацию полученных модифицированных нанопроволок на нижней отражающей поверхности, нанесение на иммобилизованные модифицированные нанопроволоки верхней отражающей поверхности на расстоянии, обеспечивающем увеличение амплитуды спектров гигантского комбинационного рассеяния, и снятие спектров гигантского комбинационного рассеяния молекул исследуемого аналита.

Изобретение относится к области биотехнологии и касается методик измерения локальной температуры среды, в частности внутриклеточной температуры. Предлагается новый подход к измерению внутриклеточной температуры с высокой точностью (от 0,1 до 0,3°С) и возможностью измерения с высоким пространственным разрешением (до 300 нм) в биологических средах (клетках и тканях), а также температуры клеток и тканей с помощью оптических методов.

Изобретение относится к системе и способу неинвазивного определения свойств яйца. Система для определения одного или более свойств яйца до инкубации содержит по меньшей мере один вакуумный захват, содержащий разряжаемый под давлением конденсатор, причем указанный вакуумный захват выполнен с возможностью удержания яйца с помощью системы всасывания, и при этом указанный разряжаемый под давлением конденсатор расположен на пути распространения летучих органических соединений, выделяемых яйцом, и указанный разряжаемый под давлением конденсатор выполнен с возможностью улавливания собранных летучих органических соединений; и блок управления, выполненный с возможностью получения данных, указывающих на то, что собранные летучие органические соединения просканированы электромагнитным излучением в ТГц диапазоне, и обработки указанных данных для определения сигнатуры, указывающей на по меньшей мере одно свойство яйца, с получением таким образом информационных данных, свидетельствующих о по меньшей мере одном свойстве яйца.

Изобретение относится к области анализа материалов с использованием оптических средств, а именно к способам и устройствам микробиологических анализов, и может быть использовано в качестве основного инструмента для оценки динамики популяций микроорганизмов в исследуемой среде. 2 н.п.

Изобретение относится к области сельского хозяйства и может быть использовано для проведения клубневого анализа партий картофеля в картофелеводстве, семеноводстве, защите растений, а также в научно-исследовательских целях для выведения нематодоустойчивых сортов картофеля и изучения взаимоотношений нематод и бактерий.

Изобретение относится к области оптического приборостроения и касается способа мультиспектрального скоростного получения пространственных изображений. При осуществлении способа генерируют квазинепрерывное фемтосекундное лазерное излучение на центральной длине волны в диапазоне 1,3-2,0 мкм с частотой следования импульсов 0,1-5 МГц, осуществляют его оптическое выпрямление в нелинейно-оптическом органическом кристалле в условиях фазового синхронизма с получением пучка широкополосного терагерцевого излучения в диапазоне частот электромагнитного излучения 0,1-10 ТГц и средней мощностью 100 мВт и пространственным разрешением порядка длины волны используемого терагерцевого излучения 90-900 мкм.

Изобретение относится к аналитической химии и может быть использовано при определении иттрия (III) в технологических растворах, природных и техногенных водах. Способ определения иттрия (III) включает приготовление сорбента, извлечение иттрия (III) из раствора сорбентом, переведение иттрия (III) в комплексное соединение, отделение сорбента от раствора, измерение интенсивности люминесценции поверхностного комплекса иттрия(III) с 8-оксихинолин-5-сульфокислотой и определение содержания иттрия.

Использование: для детектирования колебаний в диапазоне частот 0,1-5 ТГц. Сущность изобретения заключается в том, что детектор терагерцовых колебаний содержит гетероструктуру на основе последовательно расположенных на подложке слоев антиферромагнетика и немагнитного металла и приемных электродов, связанных с регистратором, при этом гетероструктура выполнена на прозрачной для терагерцового излучения подложке, антиферромагнетик представляет собой одноосный антиферромагнитный изолятор с легкой осью анизотропии, который нанесен на подложку в виде штыревой гребенчатой структуры, при этом гетероструктура включает средство для перестройки рабочей частоты, выполненное в виде источника постоянного магнитного поля, вектор напряженности которого направлен параллельно легкой оси антиферромагнитного материала.

Изобретение относится к устройству обнаружения и полуколичественного определения вредных веществ в воздухе. Сущность: устройство содержит блок (1) управления, модуль (2) размещения индикаторного плоского элемента (ИПЭ), связанный с каналом (3) воздуховода, ротационный насос (4) для прокачивания воздуха через канал (3) воздуховода, блок (5) считывания информации с ИПЭ, источник (13) питания с интерфейсом (14) внешнего питания.

Изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к способу экстракции флавоноидов из растительного сырья. Предложен способ экстракции флавоноидов из растительного сырья, заключающийся в том, что смешивают исходные природные компоненты из сбора растительной композиции, состоящего из травы пустырника сердечного, травы зверобоя продырявленного, травы мелиссы лекарственной и травы тимьяна ползучего в соотношении 4:2,5:2,5:1, которые измельчают до размера частиц 2-3 мм, добавляют 40% водный раствор эвтектического растворителя, полученного на основе бетаина гидрохлорида и пропиленгликоля в мольном соотношении 1:3, при соотношении сырье:экстрагент 1:15 и после смешивания нагревают до 60°С на водяной бане с постоянным помешиванием до образования однородной прозрачной жидкости в виде конечного продукта.
© Патентный поиск, поиск патентов на изобретения - FindPatent.RU 2012-2024
Политика конфиденциальности 2021-10-25 2022-10-31T12:40:27
Наверх