Среда для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к средам для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов, и может быть использовано как для лечения, так и для профилактики гнойно-воспалительных осложнений у пациентов. Среда для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов на основе культуральной среды RPMI - 1640 (Roswell Park Memorial Institute) содержит 10% раствор фитогемоагглютинина и сыворотку собственной крови, полученной из любой центральной или периферической вены пациента, для которого выращивают культуру аутологичных лимфоцитов, при следующем соотношении компонентов, объемные %: сыворотка собственной крови пациента - 0,75-1,2; 10%-ный раствор фитогемоагглютинина в культуральной среде RPMI - 1640-0,008-0,013; культуральная среда RPMI - 1640 - остальное до 100%. Изобретение позволяет с высокой степенью надежности исключить аллергические реакции организма пациента, повысить содержание лимфобластов в культуре аутологичных лимфоцитов, исключить появление чужеродного белка и обеспечить необходимую стерильность за счет исключения прорастания бактерий. 1 табл.

 

Изобретение относится к области медицины, а именно к биотехнологии, к среде для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов, и может быть использовано как для лечения, так и для профилактики гнойно-воспалительных осложнений у пациентов в условиях хирургических, травматологических и других стационаров. Изобретение позволяет быстро и доступно получить безопасный для пациента материал для заместительной клеточной технологии.

Известна среда для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов, содержащая культуральную среду RPMI - 1640 (Roswell Park Memorial Institute) (см. патент РФ №2333243, МПК С12N 5/08, 2005 г.).

Однако известная среда для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов при своем использовании обладает следующими недостатками:

- не обеспечивает выращивание аутологичных лимфоцитов с необходимым содержанием лимфобластов (содержание лимфомассы до 0,9×109/л),

- не обеспечивает надежного исключения аллергических реакций организма пациента, в том числе у травматолого-ортопедических пациентов после перенесенной высокой хирургической агрессии,

- не обеспечивает исключение появления чужеродного белка.

Задачей изобретения является создание среды для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов.

Техническим результатом является обеспечение надежного исключения аллергических реакций организма пациента, в том числе у травматолого-ортопедических пациентов после перенесенной высокой хирургической агрессии, повышение содержания культуры аутологичных лимфоцитов, исключение появления чужеродного белка, обеспечение необходимой и достаточной стерильности за счет исключения прорастания бактерий, а также обеспечение выращивания аутологичных лимфоцитов с большим содержанием лимфобластов.

Технический результат достигается в предложенной среде для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов сочетанием компонентов использованных для ее изготовления, а также количественным соотношением входящих в нее компонентов.

Технический результат достигается тем, что предложена среда для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов, содержащая культуральную среду RPMI - 1640 (Roswell Park Memorial Institute), а также 10% раствор фитогемоагглютинина в культурной среде RPMI - 1640 и сыворотку собственной крови, полученной из любой центральной или периферической вены пациента, для которого выращивают культуру аутологичных лимфоцитов, при следующем соотношении компонентов, объемные %:

сыворотка собственной крови пациента 0,75-1,2
10%-ный раствор фитогемоагглютинина в
культурной среде RPMI - 1640 0,008-0,013
культуральная среда RPMI - 1640 остальное до 100%.

Культурная среда RPMI - 1640 используется следующего состава:

Компоненты Мол. Конц. Молярность
Неорганические соли
Нитрат кальция (Ca(NO3)2 236 100,00 0,424
Хлорид калия (KCI) 75 400,00 5,30
Сульфат магния (MgSO4) 120 48,84 0,407
Хлорид натрия (NaCl) 58 6000,00 103,44
Бикарбонат натрия (NaHCO3) 84 2000,00 23,800
Фосфат натрия (Na2HPO4) 142 800,00 5,63
Другие компоненты
Глюкоза 180 2000,00 11,10
Глутатион, восстановленный 307 1,50 0,0032
Феноловый красный 398 5,00 0,0125
Аминокислоты
L-аргинин 174 200,00 1,10
L-аспарагин 132 50,00 0,379
L-аспарагиновая кислота 133 20,00 0,150
Дигидрохлорид L-цистеина 313 65,00 0,206
L-глутаминовая кислота 147 20,00 0,136
L-глутамин 146 300,00 2,05
Глицин 75 10,00 0,133
L-гистидин 155 15,00 0,0967
L-гидроксипролин 131 20,00 0,153
L-изолейцин 131 50,00 0,382
L-лейцин 131 50,00 0,382
Гидрохлорид L-лизина 146 40,00 0,219
L-метионин 149 15,00 0,101
L-фенилаланин 165 15,00 0,0909
L-пролин 115 20,00 0,174
L-серин 105 30,00 0,286
L-треонин 119 20,00 0,168
L-триптофан 204 5,00 0,0245
Динатриевая соль L-тирозина, 261 29,00 0,110
L-валин 117 20,00 0,171
Витамины
Биотин 244 0,20 0,008
D-пантотенат кальция 477 0,25 0,0005
Холинхлорид 140 3,00 0,0214
Фолиевая кислота 441 1,00 0,0022
Изоинозит 180 35,00 0,194
Ниацинамид 122 1,00 0,0081
п-Аминобензойная кислота 137 1,00 0,0072
Пиридоксин HCl 206 1,00 0,0048
Рибофлавин 376 0,20 0,0005
Тиамин HCl 337 1,00 0,0029
Витамин В 12 1355 0,005 0,00000369

Среди существенных признаков, характеризующих предложенную среду для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов, отличительными являются:

- дополнительное содержание в культурной среде 10%-ного раствора фитогемоагглютинина в культурной среде RPMI - 1640,

- дополнительное содержание в культурной среде сыворотки собственной крови, полученной из любой центральной или периферической вены пациента, для которого выращивают культуру аутологичных лимфоцитов,

- выбор содержания компонентов, объемные %:

сыворотка собственной крови пациента 0,75-1,2
10%-ный раствор фитогемоагглютинина в
культурной среде RPMI - 1640 0,008-0,013
культуральная среда RPMI - 1640 остальное до 100%.

Экспериментальные исследования предложенной среды для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов показали ее высокую эффективность. Предложенная среда для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов при своем использовании в процессе иммунокоррегирующей терапии с использованием лимфоцитарной взвеси обеспечивает надежное исключение аллергических реакций организма пациента, в том числе у травматолого-ортопедических пациентов после перенесенной высокой хирургической агрессии, обеспечивает повышение содержания культуры аутологичных лимфоцитов до 2×109/л, исключает появления чужеродного белка, обеспечивает необходимую и достаточную стерильность. Одновременно было установлено, что использование предложенной среды для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов обеспечивает выращивание аутологичных лимфоцитов с большим содержанием лимфобластов.

Качественное и количественное содержание предложенной «Среды для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов» заявленного состава является оптимальным результатом проведения в Федеральном государственном учреждении «Центральный научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии имени Н.Н.Приорова Росмедтехнологий» (ЦИТО) комплекса научно-исследовательских работ.

Предложенная среда для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов используется следующим образом. Осуществляют забор цельной крови пациента из любой его центральной или периферической вены в предварительно промытый гепарином шприц в количестве 10 мл и отстаивают ее в течение 100-140 минут. Затем отбирают лейкоцитарную фракцию в количестве 0,5-1,5 мл и вводят в нее 5 мл культуральной среды RPMI - 1640, а также 5 мл собственной сыворотки пациента. Разливают полученную клеточную взвесь в стерильные емкости по 2 мл и вводят в каждую емкость по 5 мл культуральной среды RPMI - 1640 и по 0,01 мл 10%-ного раствора фитогемоагглютинина в культуральной среде RPMI - 1640. Емкости с культурой лимфоцитов размещают в термостате и выдерживают при температуре 37°С в течение 72 часов, затем полученную в каждой емкости клеточную культуру аутологичных лимфоцитов центрифугируют в физиологическом растворе (5 мл) 3-5 раз при скорости вращения 1000 об/мин по 10 минут, при этом после каждого центрифугирования сливают надосадочную жидкость и в каждую емкость добавляют по 5 мл физиологического раствора для повторения центрифугирования клеточной культуры аутологичных лимфоцитов. Клеточная масса аутологичных лимфоцитов готова для своего использования. Из 5 флаконов, в которых культивировались аутологичные лимфоциты, собирают клеточную взвесь, доводят до объема 10 см3 физраствором и вводят внутривенно пациенту в любую его центральную или периферическую вену.

Реализация предложенной среды для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов иллюстрируется следующими клиническими примерами.

Пример 1. Пациент П., 55 лет, поступил в 8 травматолого-ортопедическое отделение ФГУ ЦИТО с диагнозом «Сочетанная травма.

Закрытая черепно-мозговая травма. Сотрясение головного мозга. Закрытый оскольчатый перелом правой бедренной кости со смещением отломков». Анализ иммунного статуса показал: общее количество лимфоцитов 1,0×109/л, абсолютное количество Т-лимфоцитов 0,68×109/л.

Пациенту выполнили оперативное вмешательство - остеосинтез правой бедренной кости пластиной.

Накануне оперативного вмешательства выполнили забор цельной крови пациента из его центральной вены в предварительно промытый гепарином шприц в количестве 10 мл. Забранную цельную кровь пациента отстаивали в течение 100 минут. Для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов в отобранной лейкоцитарной фракции использовали предложенную среду на основе культуральной среды RPMI - 1640, содержащей 0,75 объемных % сыворотки собственной крови пациента и 0,013 объемных % 10%-ного раствора фитогемоагглютинина в культурной среде RPMI - 1640.

Выращенную клеточную массу аутологичных лимфоцитов, содержащую 1,95×109/л культуры аутологичных лимфоцитов с большим содержанием лимфобластов ввели внутривенно пациенту в кубитальную вену предплечья. Послеоперационный период - гладкий. Показатели клеточного иммунитета нарастали уже на следующий день после введения культуры аутологичных лимфоцитов. К3-5 дню после введения общее количество лимфоцитов в крови пациента составило 1,3×109/л, абсолютное количество Т-лимфоцитов составило 0,8×109/л, количество Т-супрессоров составило 0,013×109/л. К 10 дню после введения общее количество лимфоцитов в крови пациента составило 1,4×109/л, абсолютное количество Т-лимфоцитов составило 1,0×109/л, количество Т-супрессоров составило 0,018×109. Определено увеличение содержания иммуноглобулинов классов G, М и А.

У пациента после перенесенной высокой хирургической агрессии в процессе иммунокоррегирующей терапии с использованием лимфоцитарной взвеси обеспечено надежное исключение аллергических реакций организма, обеспечено повышение содержания культуры аутологичных лимфоцитов, исключены появления чужеродного белка, обеспечена необходимая и достаточная стерильность. Использование предложенной среды для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов обеспечивает выращивание аутологичных лимфоцитов с большим содержанием лимфобластов. Качество жизни пациента хорошее.

Пример 2. Пациентка К., 65 лет, поступила в 8 травматолого-ортопедическое отделение ФГУ ЦИТО с диагнозом «Правосторонний гонартроз 3-4 степени, выраженная вальгусная деформация нижней конечности, анкилоз правого тазобедренного сустава». Анализ иммунного статуса показал: общее количество лимфоцитов 0,95×109/л, абсолютное количество Т-лимфоцитов 0,64×109/л.

Пациентке выполнили оперативное вмешательство - надмыщелковая остеотомия бедра и надкостный остеосинтез из расширенного латерального доступа.

Накануне оперативного вмешательства выполнили забор цельной крови пациентки из ее центральной вены в предварительно промытый гепарином шприц в количестве 10 мл. Забранную цельную кровь пациентки отстаивали в течение 100 минут. Для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов в отобранной лейкоцитарной фракции использовали предложенную среду на основе культуральной среды RPMI - 1640, содержащей 1,2 объемных % сыворотки собственной крови пациента и 0,010 объемных % 10%-ного раствора фитогемоагглютинина в культурной среде RPMI - 1640.

Выращенную клеточную массу аутологичных лимфоцитов, содержащую 1,92×109/л, культуры аутологичных лимфоцитов с большим содержанием лимфобластов, ввели внутривенно пациентке в кубитальную вену предплечья. Послеоперационный период - гладкий. Показатели клеточного иммунитета нарастали уже на следующий день после введения культуры аутологичных лимфоцитов. К 3-5 дню после введения общее количество лимфоцитов в крови пациентки составило 1,25×109/л, абсолютное количество Т-лимфоцитов составило 0,75×109/л, количество Т-супрессоров составило 0,012×109/л. К 10 дню после введения общее количество лимфоцитов в крови пациентки составило 1,4×109/л, абсолютное количество Т-лимфоцитов составило 1,0×109/л, количество Т-супрессоров составило 0,017×109. Определено увеличение содержания иммуноглобулинов классов G, М и А.

У пациентки после перенесенной высокой хирургической агрессии в процессе иммунокоррегирующей терапии с использованием лимфоцитарной взвеси обеспечено надежное исключение аллергических реакций организма, обеспечено повышение содержания культуры аутологичных лимфоцитов, исключены появления чужеродного белка, обеспечена необходимая и достаточная стерильность. Использование предложенной среды для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов обеспечивает выращивание аутологичных лимфоцитов с большим содержанием лимфобластов. Качество жизни пациентки хорошее.

Пример 3. Пациентка Д., 69 лет, поступила в 8 травматолого-ортопедическое отделение ФГУ ЦИТО с диагнозом «Левосторонний гонартроз 3-4 степени, выраженная вальгусная деформация нижней конечности, анкилоз левого тазобедренного сустава». Анализ иммунного статуса показал: общее количество лимфоцитов 0,9×109/л, абсолютное количество Т-лимфоцитов 0,60×109/л.

Пациентке выполнили оперативное вмешательство - надмыщелковая остеотомия бедра и надкостный остеосинтез из расширенного латерального доступа.

Накануне оперативного вмешательства выполнили забор цельной крови пациентки из ее центральной вены в предварительно промытый гепарином шприц в количестве 10 мл. Забранную цельную кровь пациентки отстаивали в течение 100 минут. Для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов в отобранной лейкоцитарной фракции использовали предложенную среду на основе культуральной среды RPMI - 1640, содержащей 0,95 объемных % сыворотки собственной крови пациента и 0,008 объемных % 10%-ного раствора фитогемоагглютинина в культурной среде RPMI - 1640.

Выращенную клеточную массу аутологичных лимфоцитов, содержащую 1,92×109/л культуры аутологичных лимфоцитов с большим содержанием лимфобластов, ввели внутривенно пациентке в кубитальную вену предплечья. Послеоперационный период - гладкий. Показатели клеточного иммунитета нарастали уже на следующий день после введения культуры аутологичных лимфоцитов. К 3-5 дню после введения общее количество лимфоцитов в крови пациентки составило 1,25×109/л, абсолютное количество Т-лимфоцитов составило 0,78×109/л, количество Т-супрессоров составило 0,011×109/л. К 10 дню после введения общее количество лимфоцитов в крови пациентки составило 1,3×109/л, абсолютное количество Т-лимфоцитов составило 0,9×10%, количество Т-супрессоров составило 0,017×109. Определено увеличение содержания иммуноглобулинов классов G, М и А.

У пациентки после перенесенной высокой хирургической агрессии в процессе иммунокоррегирующей терапии с использованием лимфоцитарной взвеси обеспечено надежное исключение аллергических реакций организма, обеспечено повышение содержания культуры аутологичных лимфоцитов, исключены появления чужеродного белка, обеспечена необходимая и достаточная стерильность. Использование предложенной среды для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов обеспечивает выращивание аутологичных лимфоцитов с большим содержанием лимфобластов. Качество жизни пациентки хорошее.

Среда для выращивания культуры аутологичных лимфоцитов, содержащая культуральную среду RPMI-1640 (Roswell Park Memorial Institute), отличающаяся тем, что дополнительно содержит 10%-ный раствор фитогемоагглютинина и сыворотку собственной крови, полученную из любой центральной или периферической вены пациента, для которого выращивают культуру аутологичных лимфоцитов, при следующем соотношении компонентов, об.%:

сыворотка собственной крови пациента 0,75-1,2
10%-ный раствор фитогемоагглютинина в
культуральной среде RPMI-1640 0,008-0,013
культуральная среда RPMI-1640 остальное до 100%.


 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области медицины и может быть использовано для диагностических целей в гематологии, онкологии и других отраслях медицины, а также в ветеринарии и биологии.

Изобретение относится к области медицины и может быть использовано для диагностических целей в гематологии, онкологии и других отраслях медицины, а также в ветеринарии и биологии.
Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано для получения стабильных клеточных культур. .
Изобретение относится к области биотехнологии. .
Изобретение относится к области медицинской биотехнологии, конкретно к получению клеточных линий, используемых для создания противоопухолевых вакцин. .

Изобретение относится к области клеточной биологии, конкретно к индукции дифференциации стволовых клеток в миокардиальные клетки-предшественники, которые могут быть использованы для эффективных методов лечения сердечной недостаточности.

Изобретение относится к области клеточной биологии, конкретно к индукции дифференциации стволовых клеток в миокардиальные клетки-предшественники, которые могут быть использованы для эффективных методов лечения сердечной недостаточности.
Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к применению эритропоэтина (ЭПО) для стимуляции структурной регенерации тканей, и может быть использовано в медицине.

Изобретение относится к вариантам фармакологической композиции, предназначенной для стимулирования роста и регенерации клеток, а также к способам ее получения. .

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к получению клеточных популяций Т-лимфоцитов, и может быть использовано в медицине. .

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к получению клеточных линий, и может быть использовано для иммунотерапии и иммунопрофилактики у пациентов со злокачественными новообразованиями

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к получению клеточных линий, и может быть использовано для иммунотерапии и иммунопрофилактики у пациентов со злокачественными новообразованиями

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к получению клеточных линий, и может быть использовано для иммунотерапии и иммунопрофилактики у пациентов со злокачественными новообразованиями

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к получению клеточных линий, и может быть использовано для иммунотерапии и иммунопрофилактики у пациентов со злокачественными новообразованиями

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к получению клеточных линий, и может быть использовано для иммунотерапии и иммунопрофилактики у пациентов со злокачественными новообразованиями

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к способу получения трехмерных матриц для тканеподобных структур из клеток животного происхождения

Изобретение относится к генной инженерии и может быть использовано для продуцирования белка ядрышка SURF-6 млекопитающих

Изобретение относится к генной инженерии и может быть использовано для продуцирования белка ядрышка SURF-6 млекопитающих
Наверх