Способ оптимальной идентификации наиболее часто встречающихся цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, имеющих медицинское значение

Изобретение относится к медицинской микробиологии. Проводится идентификациия цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, изолированных при микробиологической диагностике дисбиотических состояний кишечника (дисбактериозов) у детей и взрослых. Способ включает пересев изучаемой колонии микроорганизмов, выросших на среде Эндо или Симмонса, пересев для первичной и последующей идентификации производится с использованием тестов: индолообразования, продукции сероводорода, подвижности и утилизации цитрата натрия. По характеру изменения изучаемые микроорганизмы в начале подразделяются на шесть условных групп. В дальнейшем в зависимости от принадлежности к определенной группе используются основной и при необходимости дополнительный для каждой группы тест, а именно: лизин и при необходимости мочевина - для I группы, включающей неподвижные бактерии, не продуцирующие индол и сероводород и ассимилирующие цитрат натрия при росте на среде Симмонса: Klebsiella pneumoniae с подвидами: ssp.pneumoniae, ssp.ozenae, ssp.rhinoscleromatis. Лизин и при необходимости последовательно сорбит, аргинин и рамноза - для III группы, включающей подвижные бактерии, не продуцирующие индол и сероводород и ассимилирующие цитрат натрия: Enterobacter cloacae ssp.cloacae, Enterobacter aerogenes, Serratia marcescens, Serratia plymuthica и Serratia rubidaea. Фенилаланин, а в дальнейшем малонат натрия - для IV группы, включающей подвижные штаммы, продуцирующие индол и не продуцирующие сероводород, а также ассимилирующие цитрат натрия: Citrobacter amalonaticus, Citrobacter koseri, а также бактерии рода Providencia. Фенилаланин и в дальнейшем лактоза - для VI группы, включающей бактерии подвижные, не продуцирующие индол и продуцирующие сероводород, в большинстве ассимилирующие цитрат натрия: Proteus mirabilis, Citrobacter freundii, Citrobacter youngae. Бактерии II и V группы идентифицируются только по первичным тестам и включают неподвижные штаммы, продуцирующие индол, не продуцирующие сероводород и ассимилирующие цитрат натрия: Klebsiella oxytoca (II группа), а также подвижные штаммы, продуцирующие индол и сероводород и в большинстве ассимилирующие цитрат натрия: Proteus vulgaris (V группа). Изобретение позволяет увеличить идентификацию путем определения рода, вида и подвида цитрат-ассимилирующих энтеробактерий. 1 табл.

 

Изобретение относится к области медицины и может найти применение в медицинской микробиологии при идентификации цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, изолированных при микробиологической диагностике дисбиотических состояний кишечника (дисбактериозов) у детей и взрослых, а также заболеваний; обусловленных этими энтеробактериями.

К цитрат-ассимилирующим бактериям семейства Enterobacte cloasae относятся представители различных родов и видов, обладающие способностью использовать цитрат натрия как единственный источник углерода. При посеве такого микроорганизма на питательную среду, содержащую цитрат натрия (среду Симмонса), в ходе реакции происходит сдвиг pН в щелочную сторону, в результате чего среда окрашивается в ярко-синий цвет (исходная среда имеет зеленую окраску).

К наиболее часто встречаемым в медицинской практике цитрат-ассимилирующим энтеробактериям относятся: род Клебсиелла -K.pneumoniae (с подвидами пневмонии, озены и риносклероматис), K.oxytoca; род Цитробактер - C.amalonaticus, C.freundii, C.koseri, C.youngae; род Энтеробактер - E.aerogenes, Е.cloacae; род Серрация - S.marcescens, S.plymuthica, S.rubidaea; род Провиденция; род Протеус - P.vulgaris, P.mirabilis.

Эти микроорганизмы являются условно-патогенными. Они в незначительных количествах могут находиться в толстом отделе кишечника человека, составляя его так называемую «нормальную» микрофлору. При дисбиотических нарушениях кишечника (дисбактериозе) количество условно-патогенной микрофлоры и в том числе цитрат-ассимилирующих бактерий может значительно увеличиться и превысить возрастную норму, что выявляется при целенаправленной микробиологической диагностике и требует соответствующего лечения. Кроме того, нельзя не учитывать и факт значительного увеличения изоляции при дисбактериозах кишечника многокомпонентных микробных ассоциаций, в состав которых, как правило, входят цитрат-ассимилирующие бактерии, а также возможности этих микроорганизмов вызывать инфекционные заболевания с кишечной и внекишечной локализацией.

Идентификации как таковой группы цитрат-ассимилирующих бактерий, дающих возможность определить не только род, но и вид, а иногда и подвид, используя при этом ограниченный набор тестов, в доступной нам литературе не встретилось.

Наибольшую популярность в последние годы приобрели автоматические бактериологические анализаторы для микрообъемной идентификации, в том числе энтеробактерий. В нашей стране широкое распространение получил метод идентификации бактерий с помощью баканализатора Vitek-2 Compact (производства фирмы Bio Merieux, Франция). Подобной техникой оснащены крупные лаборатории и медицинские центры. Такого типа баканализаторы позволяют быстро, без значительных физических затрат и при этом с большой точностью идентифицировать значительное число известных микроорганизмов. Однако большим недостатком идентификации микроорганизмов с помощью этого баканализатора является высокая стоимость как самой аппаратуры, так и расходных материалов к ней, что делает невозможным исследование большого объема материала; кроме того, такая аппаратура едва ли доступна для маленьких лабораторий или других небольших медучреждений. При использовании подобных анализаторов для идентификации цитрат-ассимилирующих энтеробактерий происходит необоснованный расход тест-систем, так как для каждого штамма микроорганизма аппарат использует 64 диагностических теста, тогда как цитрат-ассимилирующие бактерии не требуют такого количества, а могут быть определены с помощью гораздо меньшего набора, что позволяет значительно удешевить их идентификацию, сохранив при этом достаточно высокую точность.

Известен ряд методов идентификации энтеробактерий, число и эффективность которых из года в год повышается. Наиболее востребованными и достаточно точными являются макро- и микрообъемные методы биохимической идентификации (использование СИБов - системы индикаторных бумажных, ПБДЭ - пластин биохимических, диагностирующих энтеробактерий - обе системы производства «Микроген», г. Нижний Новгород). Однако обе эти системы не лишены недостатков, так, для системы ПБДЭ необходимо наличие большого числа (20) лунок с субстратами и требуется использование таких тестов, которые при идентификации цитрат-ассимилирующих бактерий могут быть опущены или заменены другими. Кроме того, при использовании этой системы нередко бывают затруднения при учете результатов в связи с недостаточным размером лунки, что сказывается как на точности посева, так и учета результатов.

Наиболее близким способом к заявляемому является способ использования СИБов, дающий возможность провести идентификацию с помощью 13 тестов, но он неудобен технически, требует значительных затрат рабочего времени, лабораторной посуды с предварительным ее мытьем, заготовкой, стерилизацией и некоторыми другими манипуляциями, что также увеличивает время выполнения исследования, трудозатраты и в конечном итоге его стоимость. Кроме того, способ с использованием СИБов обладает низкой глубиной идентификации: он предназначен только для межродовой и межвидовой идентификации и не способен определить подвид микроорганизма.

Техническим результатом заявленного решения является увеличение глубины идентификации путем определения рода, вида и подвида цитрат-ассимилирующих энтеробактерий.

Технический результат достигается тем, что в способе оптимальной идентификации наиболее часто встречающихся цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, имеющих медицинское значение, включающем пересев изучаемой колонии микроорганизмов, выросших на среде Эндо или Симмонса, пересев для первичной и последующей идентификации производится с использованием ограниченного набора тестов: индолообразования, продукции сероводорода, подвижности и утилизации цитрата натрия, по характеру изменения которых изучаемые микроорганизмы в начале подразделяются на шесть условных групп, а в дальнейшем, в зависимости от принадлежности к определенной группе, используются основной и при необходимости дополнительный для каждой группы тест, а именно лизин и при необходимости мочевина - для I группы, включающей неподвижные бактерии, не продуцирующие индол и сероводород и ассимилирующие цитрат натрия при росте на среде Симмонса: Klebsiella pneumoniae с подвидами: ssp.pneumoniae, ssp.ozenae, ssp.rhinoscleromatis; лизин и при необходимости последовательно сорбит, аргинин и рамноза - для III группы, включающей подвижные бактерии, не продуцирующие индол и сероводород и ассимилирующие цитрат натрия: Enterobacter cloacae ssp.cloacae, Enterobacter aerogenes, Serratia marcescens, Serratia plymuthica и Serratia rubidaea; фенилаланин, а в дальнейшем малонат натрия - для IV группы, включающей подвижные штаммы, продуцирующие индол и не продуцирующие сероводород, а также ассимилирующие цитрат натрия: Citrobacter amalonaticus, Citrobacter koseri, а также бактерии рода Providencia; фенилаланин и в дальнейшем лактоза - для VI группы, включающей бактерии подвижные, не продуцирующие индол и продуцирующие сероводород, в большинстве ассимилирующие цитрат натрия: Proteus mirabilis, Citrobacter freundii, Citrobacter youngae; бактерии II и V группы идентифицируются только по первичным тестам и включают неподвижные штаммы, продуцирующие индол, не продуцирующие сероводород и ассимилирующие цитрат натрия: Klebsiella oxytoca (II группа), а также подвижные штаммы, продуцирующие индол и сероводород и в большинстве ассимилирующие цитрат натрия: Proteus vulgaris (V группа).

Способ оптимальной идентификации наиболее часто встречающихся цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, имеющих медицинское значение, осуществляют следующим образом.

Чистую культуру изучаемого микроорганизма, выросшую на чашечных средах Эндо или Симмонса, засевают на мясо-пептонный бульон (для определения продукции индола и сероводорода), на 0,3% мясо-пептонный агар (для определения подвижности) и на пробирочную среду Симмонса (для определения утилизации цитрата натрия). В том случае, если изучаемый штамм изолирован со среды Симмонса, посев на эту среду в пробирке не делается. После инкубации посевов в термостате при 37°С в течение 18-20 час производят учет результатов; при этом идентифицируемые микроорганизмы в зависимости от изменения указанных субстратов могут быть отнесены к одной из шести групп.

К I группе относятся неподвижные бактерии, не продуцирующие индол и сероводород и ассимилирующие цитрат натрия при росте на среде Симмонса - Klebsiella pneumoniae с подвидами (ssp.pneumoniae, ssp.ozenae, ssp.rhinoscleromatis), основным тестом для дифференциации которых является лизин, а дополнительным - мочевина.

Ко II группе относятся неподвижные бактерии, продуцирующие индол, не продуцирующие сероводород и ассимилирующие цитрат натрия; в эту группу входит только единственный вид - Klebsiella oxytoca, который окончательно дифференцируется уже по первичным тестам.

III группа включает подвижные бактерии, не продуцирующие индол и сероводород и ассимилирующие цитрат натрия - Enterobacter cloacae ssp.cloacae, Enterobacter aerogenes, Serratia marcescens, Serratia plymuthica и Serratia rubidaea, основной дифференцирующий тест группы - лизин, дополнительные тесты - сорбит и аргинин и при необходимости дальнейшей идентификации - рамноза.

IV группа включает подвижные штаммы, продуцирующие индол и не прдуцирующие сероводород, а также ассимилирующие цитрат натрия - Citrobacter amalonaticus, Citrobacter koseri, а также бактерии рода Providencia. Основной дифференцирующий тест группы - фенилаланин, дополнительный - малонат натрия.

V группа объединяет подвижные штаммы, продуцирующие индол и сероводород и ассимилирующие цитрат натрия; сюда, как и во II группу, относится единственный вид - Proteus vulgaris, который дифференцируется по первичным четырем тестам (отдельные штаммы этого микроорганизма могут не утилизировать цитрат натрия).

Роды и виды бактерий, составляющие VI группу, подвижны, не продуцируют индол и продуцируют сероводород, в большинстве утилизируют цитрат натрия - Proteus mirabilis, Citrobacter freundii, Citrobacter youngae. Основной дифференцирующий тест группы - фенилаланин, дополнительный - лактоза. Кроме того, осуществление заявляемого способа представлено в табличной форме (см. приложение).

Для сравнения основных параметров предлагаемого способа было произведено параллельное изучение одних и тех же штаммов цитрат-ассимилирующих энтеробактерий с использованием трех способов: с помощью индикаторных дисков (СИБ) производства «Микроген», Нижний Новгород, баканализатора Vitek-2 Compact 30 производства фирмы «Bio Merieux, Франция, и предлагаемого способа. Результаты отражены в таблице 1.

Результаты, полученные при этом, свидетельствуют о высокой точности предлагаемого способа, практически не уступающей способам сравнения. Кроме того, предлагаемый способ дает возможность идентифицировать большинство микроорганизмов не только до рода и вида, но и до подвида так же, как при использовании высокоточного способа с использованием баканализатора Vitek-2 Compact 30, тогда как способ с использованием СИБов идентифицирует только до рода и вида. Количество используемых тестов значительно меньше у предлагаемого способа, чем у способов сравнения. Стоимость исследования одного микроорганизма у предлагаемого способа в 1,5 раза меньше, чем при применении СИБов, и в 5,4 раза ниже, чем при использовании баканализатора Vitek-2 Compact 30. Кроме того, предлагаемый способ поможет проводить идентификацию цитрат-ассимилирующих штаммов энтеробактерий без использования импортной техники и расходных материалов, что является своего рода средством импортозамещения.

В течение 2015-2016 годов с помощью предлагаемого метода нами было идентифицировано 250 штаммов цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, изолированных от лиц с дисбиотическими нарушениями кишечника

Способ оптимальной идентификации наиболее часто встречающихся цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, имеющих медицинское значение, позволяющее увеличить глубину идентификации путем определения рода, вида и подвида цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, найдет применение в микробиологической диагностике.

Способ оптимальной идентификации наиболее часто встречающихся цитрат-ассимилирующих энтеробактерий, имеющих медицинское значение, включающий пересев изучаемой колонии микроорганизмов, выросших на среде Эндо или Симмонса, отличающийся тем, что пересев для первичной и последующей идентификации производится с использованием ограниченного набора тестов: индолообразования, продукции сероводорода, подвижности и утилизации цитрата натрия, по характеру изменения которых изучаемые микроорганизмы в начале подразделяются на шесть условных групп, а в дальнейшем, в зависимости от принадлежности к определенной группе, используются основной и при необходимости дополнительный для каждой группы тест, а именно лизин и при необходимости мочевина - для I группы, включающей неподвижные бактерии, не продуцирующие индол и сероводород и ассимилирующие цитрат натрия при росте на среде Симмонса: Klebsiella pneumoniae с подвидами: ssp. pneumoniae, ssp. ozenae, ssp. rhinoscleromatis; лизин и при необходимости последовательно сорбит, аргинин и рамноза - для III группы, включающей подвижные бактерии, не продуцирующие индол и сероводород и ассимилирующие цитрат натрия: Enterobacter cloacae ssp. cloacae, Enterobacter aerogenes, Serratia marcescens, Serratia plymuthica и Serratia rabidaea; фенилаланин, а в дальнейшем малонат натрия - для IV группы, включающей подвижные штаммы, продуцирующие индол и не продуцирующие сероводород, а также ассимилирующие цитрат натрия: Citrobacter amalonaticus, Citrobacter koseri, а также бактерии рода Providencia; фенилаланин и в дальнейшем лактоза - для VI группы, включающей бактерии подвижные, не продуцирующие индол и продуцирующие сероводород, в большинстве ассимилирующие цитрат натрия: Proteus mirabilis, Citrobacter freundii, Citrobacter youngae; бактерии II и V группы идентифицируются только по первичным тестам и включают неподвижные штаммы, продуцирующие индол, не продуцирующие сероводород и ассимилирующие цитрат натрия: Klebsiella oxytoca (II группа), а также подвижные штаммы, продуцирующие индол и сероводород и в большинстве ассимилирующие цитрат натрия: Proteus vulgaris (V группа).



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области микробиологии. Предложен способ получения трехмерных структур, используемых для детекции, выделения или подсчета микроорганизмов.

Изобретение относится к биотехнологии. Универсальная питательная среда для культивирования коринебакетрий, нокардий и родококков содержит панкреатический гидролизат кильки, Д- глюкозу, KH2PO4, MgSO4, водный голубой, натрий углекислый, агар микробиологический, геотермальная вода, стерильная деффибринированная кровь животных и парафин в заданном соотношении компонентов.
Изобретение относится к медицинской микробиологии и представляет собой набор, содержащий авирулентные штаммы Yersinia pestis подвида pestis биовара orientalis КМ 2011, подвида pestis биовара antiqua КМ 2008, КМ 2012, КМ 260 (12), КМ 130(3), подвида pestis биовара medievalis КМ 2010, КМ 2014, КМ 2024, подвида caucasica КМ 2013, штаммы Yersinia pseudotuberculosis КМ 2004, КМ 2005, КМ 2006, Yersinia enterocolitica КМ 2007 и штамм Pasteurella multocida КМ 2003, депонированные в Государственной коллекции патогенных бактерий «Микроб».

Изобретение относится к области биохимии. Описан способ дифференциации штаммов Yersinia pestis на основной и неосновные подвиды методом ПЦР в режиме реального времени.

Изобретение относится к области биохимии и молекулярной биологии, в частности к набору олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченого зонда. Указанный набор предназначен для идентификации ДНК возбудителя бластомикоза Blastomyces dermatitidis методом полимеразной цепной реакции с гибридизационно-флуоресцентным учетом результатов.
Изобретение относится к области биохимии. Предложено биосенсорное устройство для обнаружения биологических микро- и нанообъектов, таких как бактерии и вирусы.

Группа изобретений относится к области биохимии. Предложено устройство и способ для обнаружения целевых биомолекул с использованием вышеуказанного устройства.

Группа изобретений относится к области медицины. Предложены заготовка для изготовления тест-системы для проведения экспресс-диагностики инфекции Helicobacter pylori по уреазной активности биоптата и способ изготовления вышеуказанной тест-системы.

Изобретение относится к области биохимии. Предложен способ оценки пригодности водорослей и цианобактерий для формирования активного ила очистных сооружений.
Изобретение относится к микробиологии. Питательная среда для культивирования и выращивания биомассы чумного микроба вакцинного штамма Y.

Группа изобретений относится к биотехнологии. Заявлена группа изобретений: Штамм микроорганизма L.

Изобретения касаются способа регуляции иммунной системы субъекта, включающего введение субъекту композиции, включающей бактериальный вид Roseburia hominis; способа лечения нарушения у субъекта, включающего введение субъекту композиции, включающей Roseburia hominis; фармацевтической композиции, включающей Roseburia hominis, и способа производства такой композиции.

Группа изобретений относится к области биотехнологии. Предложен способ получения 2,4-дигидроксибутирата (2,4-ДГБ) из гомосерина, включающий два этапа: 1) замещение первичной аминогруппы гомосерина карбонильной группой для получения 2-оксо-4-гидроксибутирата (ОГБ), и 2) восстановление полученного ОГБ до 2,4-ДГБ.
Изобретение относится к биотехнологии. Способ культивирования бифидобактерий предусматривает внесение бифидобактерий в питательную среду, содержащую гидролизат гороха с содержанием аминного азота 160-180 мг, отвар листьев и стеблей люцерны, кукурузный экстракт, Д(-)-лактозу, натрий фосфорнокислый однозамещенный, сульфат железа семиводный, цистеин и осветленную творожную сыворотку в заданном соотношении компонентов и проводят наращивание биомассы бифидобактерий в течение 24 часов.

Изобретение относится к биотехнологии. Универсальная питательная среда для культивирования коринебакетрий, нокардий и родококков содержит панкреатический гидролизат кильки, Д- глюкозу, KH2PO4, MgSO4, водный голубой, натрий углекислый, агар микробиологический, геотермальная вода, стерильная деффибринированная кровь животных и парафин в заданном соотношении компонентов.
Изобретение относится к медицинской микробиологии. Питательная среда для культивирования туляремийного микроба содержит настой мозга теленка, мясной настой из мяса крупного рогатого скота, питательный бульон для культивирования микроорганизмов сухой (СПБ), дрожжевой экстракт, глюкозу, L-цистеин, магний сернокислый, натрий сернистокислый, агар микробиологический, эмульсию желтка куриного яйца и дистиллированную воду при заданном соотношении компонентов.

Группа изобретений относится к области биохимии. Предложен способ получения капсулярного полисахарида Haemophilus influenzae типа b, применение вышеуказанного капсулярного полисахарида для получения вакцинной композиции и способ получения вакцинной композиции.

Изобретение относится к области биохимии. Предложен способ продуцирования С2-оксигенатов путем анаэробной ферментации с использованием микробной культуры карбоксидотрофного микроорганизма.

Изобретение относится к области биотехнологии. Штамм бактерий Pseudomonas plecoglossicida 2,4-D, обладающий способностью биодеградировать устойчивые токсичные соединения перфтороктансульфоновой кислоты (ПФОС), депонирован во Всероссийской коллекции микроорганизмов Федерального государственного бюджетного учреждения науки Институт биохимии и физиологии микроорганизмов им.

Изобретение относится к способу получения модели ожирения животного. Способ предусматривает инокулирование аксенического животного бактерией Enterobacter cloacae, имеющей ген 16S рРНК, для получения инокулированного животного, где последовательность гена 16S рРНК представляет собой SEQ ID NO.1; и кормление инокулированного животного кормом, имеющим 34,9% содержания жира, в течение по крайней мере четырех недель для получения модели ожирения животного.

Настоящее изобретение относится к биотехнологии и пищевой промышленности. Предложен способ производства консерванта продуктов питания. Способ предусматривает получение продукта сбраживания глюкозы с помощью лактобактерий Lactobacillus helveticus ВКПМ В-10475, Lactobacillus helveticus ВКПМ В-10713, Lactobacillus fermentum ВКПМ В-11711, Lactobacillus rhamnosus ВКПМ B-11710 и уксуснокислых бактерий Acetobacter aceti ВКПМ B-1276 в ферментере при соотношении бактерий 2:2:2:1:3 при 33-37°С в течение 24-30 часов при рН=6,0-6,5. Полученную культуральную жидкость отделяют от бактерий, очищают, затем осуществляют распылительную сушку при 180-220°С или пастеризацию при 72-78°С в течение 5-10 минут. Изобретение обеспечивает получение биологического консерванта, предотвращающего порчу пищевых продуктов. 2 з.п. ф-лы, 1 табл., 2 пр.
Наверх