Способ индивидуальной оценки чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробным средствам

Изобретение относится к медицине, а именно к стоматологии. Сущность способа заключается в сравнении амплитуд тестовых сахарных (А_с) и карбамидных (А_к) кривых рН в средах полости рта до и после применения противомикробного средства (ΔA_c=A_1c-А_2с и ΔА_к=А_1к-А_2к). Тестовые сахарные кривые рН получают путем стимуляции кислотопродуцирующей микрофлоры полости рта 47% раствором сахарозы, а карбамидные - в результате стимуляции аммиак-продуцирующей микрофлоры 8% раствором карбамида. При этом определяют индивидуальную особенность чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству, обусловленную ее качественным составом, по коэффициенту асимметрии по формуле: К_а=ΔА_к/ΔА_с; а обусловленную ее количественным составом - по коэффициенту подавляющего действия по формуле: К_пд=[(а_1k+А_1с)/2] / [(А_2к+А_2с)/2]. Затем сравнивают значения коэффициентов с величинами эталонных значений, полученных у референтной группы обследованных, и по разности этих значений оценивают индивидуальную чувствительность ротовой микрофлоры к действию противомикробного средства. Использование способа позволяет достаточно быстро оценивать индивидуальную чувствительность ротовой микрофлоры к противомикробным средствам, дифференцировать оценку чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству по качественному и количественному показателям. 1 ил.

 

Изобретение относится к медицине, а именно к стоматологии.

Главной причиной развития основных стоматологических заболеваний: кариеса и воспалительных заболеваний пародонта является микрофлора полости рта. Развитие кариеса связано, главным образом, с метаболической активностью кислотопродуцирующих микроорганизмов (Streptococcus mutans и др.), перерабатывающих углеводы в процессе гликолиза в конечные продукты - органические кислоты (лактат, пируват и др.). Их обильное выделение микрофлорой зубного налета смещает его реакцию и реакцию омывающей смешанной слюны в кислую сторону.

Воспалительные заболевания пародонта связаны, в основном, с жизнедеятельностью протеолитической анаэробной микрофлоры (Actinobacillus actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia и др). Последняя в процессе метаболизма азотсодержащих веществ (карбамида, L-аргинина, нитратов, амидов аминокислот) продуцирует аммиак, который смещает реакцию в полости рта в щелочную сторону.

Борьба с патогенной микрофлорой является важным звеном профилактики и лечения кариеса и воспалительных заболеваний пародонта. С этой целью используются гигиенические и противомикробные средства. Однако их эффективность у каждого конкретного пациента существенно зависит от индивидуального качественного и количественного состава ротовой микрофлоры с учетом действующих в полости рта собственных факторов защиты организма. Поэтому для проведения оптимальных (наиболее эффективных и безвредных) противомикробных профилактики и лечения основных стоматологических заболеваний требуется индивидуальный выбор того или иного препарата, его минимальной дозы или концентрации, формы и длительности курса применения. Это особенно важно в связи с риском аллергизации организма, развитием дисбактериоза в полости рта и возможными другими побочными действиями противомикробных и гигиенических средств при их применении без учета индивидуальной чувствительности к ним ротовой микрофлоры.

Прототипом заявляемого способа авторы считают бактериологический метод или метод диффузии в агар с использованием бумажных дисков, подразумевающий взятие образцов микрофлоры из полости рта и их посев на питательные среды с последующей инкубацией в присутствии антибиотиков (например: «Лабораторные методы исследования в клинике»: справочник под ред. проф. В.В.Меньшикова. - М.: - Медицина. - 1987. - С.341-342).

Указанный способ заключается в том, что со спинки языка, зубного налета или пародонтальных карманов берут образцы микрофлоры и в виде взвеси в стерильном физиологическом растворе наносят в количестве 1 мл на поверхность плотной питательной среды, предназначенной для культивирования аэробной микрофлоры, в чашке Петри. Взвесь равномерно распределяют по чашке, остатки жидкости отсасывают пипеткой. Чашку подсушивают при комнатной температуре 30-40 мин, после чего на поверхность чашки с помощью пинцета помещают бумажные диски, пропитанные противомикробными средствами. В качестве таких дисков используют изготовленные заводским путем диски, содержащие одну концентрацию антибиотика, соответствующую рекомендациям ВОЗ (диски с противомикробными и гигиеническими средствами не производятся). Чашку инкубируют при 37°С в течение 18 часов в перевернутом вверх дном положении в термостате. Учет результатов производят, измеряя с помощью линейки диаметры зоны задержки роста микробов вокруг дисков, включая диаметр диска.

Недостатками этого метода являются его низкая точность из-за того, что оценка чувствительности проводится вне полости рта, без учета естественных факторов защиты организма, а также без учета функциональной активности микрофлоры. При этом активность анаэробной микрофлоры никак не учитывается, поскольку эта микрофлора не культивируется на указанной питательной среде. Оценка чувствительности микрофлоры возможна только к антибиотикам, поскольку бумажные диски с антисептиками и гигиеническими средствами не производятся.

Длительность метода велика (высушивание - 30-40 мин, инкубация 18 часов). Он также дорог из-за необходимости использования питательных сред, дисков с антибиотиками и лабораторного оборудования (термостат, средства стерилизации и др.) Доступность метода ограничена, так как для его реализации требуется микробиологическая лаборатория.

Для оптимизации воздействия на ротовую микрофлору противомикробных и гигиенических средств и с целью устранения указанных недостатков прототипа предлагаем способ индивидуальной оценки чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробным средствам. Техническим результатом предлагаемого способа является оценка действия на кислото- и аммиак-продуцирующую микрофлору полости рта противомикробных и гигиенических средств с учетом количественного и качественного состава этой микрофлоры у индивидуума.

Способ заключается в сравнении амплитуд тестовых кривых рН в средах полости рта до и после применения противомикробного средства. Получают тестовые кривые рН, характеризующие метаболическую активность кислотопродуцирующей и аммиак-продуцирующей микрофлоры. Далее для выявления индивидуальных особенностей чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству проводят сравнение полученных значений амплитуд с эталонными значениями для данного средства.

Для реализации способа измеряют рН смешанной слюны (зубного или язычного налета) у пациента любым доступным методом (электрометрический, индикаторный, колориметрический) (начальное значение рН), затем он полощет рот в течение 30 секунд 15 мл 8% раствора карбамида (тестовый раствор карбамида), затем в последующие 15 минут определяют рН смешанной слюны и фиксируют его максимальное значение. По разнице между максимальным и начальным значениями определяют амплитуду первой тестовой карбамидной кривой изменения рН в щелочную сторону (A_1k).

После восстановления за счет буферных свойств слюны ее рН к начальному значению (в среднем через 40 мин) пациент полощет рот в течение 30 с 47% раствором сахарозы, затем в последующие 15 минут определяют рН смешанной слюны и фиксируют его минимальное значение. По разнице между минимальным и начальным значениями определяют амплитуду первой тестовой сахарозной кривой изменения рН в кислую сторону (A_1c).

Далее пациент использует тестовую дозу противомикробного средства (например, ротовую ванночку с 15 мл метрогила в течение 1 минуты), после чего вновь определяют начальное значение рН и проводят, как и в первом случае, последовательную активацию микрофлоры тестовыми растворами карбамида и сахарозы. Рассчитывают амплитуды вторых тестовых карбамидной и сахарозной кривых рН (А_2k и А_2с) (см. чертеж).

Рассчитывают разность между первой и второй амплитудами тестовых карбамидных кривых рН:

Индивидуальную оценку чувствительности аммиак-продуцирующей ротовой микрофлоры к противомикробному средству проводят по выраженности (силе) противомикробного действия (по цифровому значению _ΔА_к). Этот критерий характеризует степень подавления тестовой дозой противомикробного средства метаболической активности аммиак-продуцирующей ротовой микрофлоры у конкретного пациента.

Количество растворов карбамида и сахарозы, активирующих ротовую микрофлору, длительность их экспозиции и концентрации подобраны опытным путем так, чтобы получать наиболее выраженные изменения рН в средах полости рта в щелочную и кислую стороны у пациентов референтной группы (с удовлетворительной гигиеной полости рта, обычным составом ротовой микрофлоры, без патологии со стороны зубов и пародонта). В качестве тестовой дозы противомикробного средства используют дозу, рекомендуемую производителем для клинического применения.

Рассчитывают разность между первой и второй амплитудами тестовых сахарозных кривых рН:

Индивидуальную оценку чувствительности кислотопродуцирующей ротовой микрофлоры к противомикробному средству проводят по выраженности (силе) противомикробного действия (по цифровому значению _ΔА_с).

Для выявления индивидуальных особенностей чувствительности ротовой микрофлоры по ее качественному составу к противомикробному средству рассчитывают индивидуальный коэффициент асимметрии (К_к), как частное от деления _ΔА_к и _ΔА_с:

Сравнение индивидуального коэффициента асимметрии с эталонным его значением (К_э) для данного противомикробного средства характеризует индивидуальную особенность чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству по ее качественному составу (показатель ИЧРМ_кач):

где ИЧРМ_кач - качественный показатель индивидуальной чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству.

При этом эталонное значение (К_э) получают заранее в специальном исследовании, как среднее при оценке коэффициента асимметрии для данного противомикробного средства в референтной группе обследуемых, имеющих удовлетворительную гигиену полости рта и обычную (нормальную) микрофлору и не имеющих патологии зубов и пародонта.

Величина показателя ИЧРМ_кач характеризует индивидуальную качественную особенность чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству, которую необходимо учитывать при выборе оптимального противомикробного средства для данного пациента.

Для выявления индивидуальных особенностей чувствительности ротовой микрофлоры по ее количественному составу к противомикробному средству рассчитывают коэффициент его подавляющего действия (К_пд) у индивидуума:

Сравнение индивидуального коэффициента К_пд с его эталонным значением (К_пдэ) для данного противомикробного средства характеризует индивидуальную особенность чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству по ее количественному составу (показатель ИЧРМ_кол):

где ИЧРМ_кол - количественный показатель индивидуальной чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству.

При этом эталонное значение (К_пдэ) получают заранее в отдельном исследовании, как среднее при оценке коэффициента подавляющего действия для данного противомикробного средства в референтной группе обследуемых, имеющих удовлетворительную гигиену полости рта и обычную (нормальную) микрофлору, и не имеющих патологии зубов и пародонта.

Величина показателя ИЧРМ_кол характеризует индивидуальную количественную особенность чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству, которую необходимо учитывать при выборе оптимальной концентрации, дозы и экспозиции конкретного противомикробного средства для данного пациента.

Преимущества предлагаемого способа в сравнении с прототипом.

1. Он более точный за счет комплексной оценки подавления средством метаболической активности ротовой микрофлоры (включая и анаэробную) непосредственно в полости рта, то есть в условиях действия собственных факторов противомикробной защиты организма, а также за счет возможности оценивать чувствительность к любым противомикробным и гигиеническим средствам (включая антисептики, фитопрепараты, бактериофаги и др.).

2. Он позволяет оценивать индивидуальную чувствительность ротовой микрофлоры к противомикробным средствам достаточно быстро (реализуется в течение 3-3,5 часов), что в 6 раз быстрее в сравнении с прототипом.

3. Дифференцировать оценку чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству по качественному и количественному показателям, что невозможно с помощью прототипа;

4. Относительно недорогой и более доступный в сравнении с прототипом на клиническом приеме стоматолога - требуется только рН-метр, растворы карбамида и сахарозы.

ПРИМЕР.

Обследуемый в течение суток до определения не использовал никаких противомикробных средств и не принимал еду за 3 часа до обследования.

С помощью рН-метра «Denver Basic» и рН-чувствительного FET-электрода определили начальное значение рН смешанной слюны обследуемого, которую он сплюнул в пробирку в объеме 1 мл. Это значение составило 7,10 ед. рН (pH_s). Далее обследуемый набрал в рот 15 мл 8% раствора карбамида и в течение 30 с полоскал им рот (тестовый раствор карбамида), после чего выплюнул. Далее у него тем же способом с интервалом 2-5 мин определяли рН сплевываемой смешанной слюны и на 15 минуте после полоскания раствором карбамида фиксировали его максимальное значение. Это значение составило 7,68 ед. рН (рН_mах1). Рассчитали амплитуду первой тестовой карбамидной кривой: A_1k=рН_mах1-pH_s=7,68-7,10=0,58 ед. рН (см. чертеж). Через 35 минут от начала опыта значение рН смешанной слюны за счет ее буферных свойств вернулось к начальному значению (pH_s=7,10 ед. рН). Обследуемый в течение 30 с полоскал рот 15 мл 47% раствора сахарозы (тестовый раствор сахарозы), после чего выплюнул. Далее у него тем же способом с интервалом 2-5 мин определяли рН сплевываемой смешанной слюны и на 18 минуте после полоскания раствором сахарозы фиксировали его минимальное значение. Это значение составило 6,51 ед. рН (pH_min1). Рассчитали амплитуду первой тестовой сахарозной кривой: A_1c=pH_s - pH_min1=7,10-6,51=0,61 ед. рН. Через 85 минут от начала опыта значение рН смешанной слюны за счет ее буферных свойств вернулось к начальному значению (pH_s=7,10 ед. рН).

Затем пациент в течение 2 минут полоскал рот 15 мл раствора метрогила (жидкий препарат метронидазола - противомикробного средства, действующего преимущественно на анаэробную уреазопозитивную аммиакпродуцирующую микрофлору). Сразу после выплевывания метрогила обследуемый повторно в течение 30 с полоскал рот 15 мл 8% раствора карбамида (тестовый раствор карбамида). Как и в первом случае, после этого с интервалом 2-5 минут у него определяли рН сплевываемой смешанной слюны. Максимальное значение рН зафиксировали на 12 минуте после повторного полоскания рта тестовым раствором карбамида. Оно составило 7,26 ед. рН (рН_mах2). После восстановления через 30 минут после полоскания рта метрогилом рН смешанной слюны к начальному значению (pH_s) пациент повторил полоскание рта тестовым раствором сахарозы. Последующее измерение рН смешанной слюны выявило его минимальное значение на 20 минуте после полоскания сахарозой, которое составило 6,63 ед. рН.

Рассчитали амплитуду второй тестовой карбамидной кривой рН смешанной слюны: А_2к=рН_mах2 - pHs=7,26-7,10=0,16. Разность амплитуд двух тестовых карбамидных кривых рН смешанной слюны (ΔА_к) составила:

ΔА_к-a_1k-А_2к=0,58-0,16=0,42 ед. рН.

Полученная величина ΔА_к (0,42 ед. рН) характеризовала индивидуальную чувствительность аммиак-продуцирующей ротовой микрофлоры пациента к 2-минутному полосканию рта 15 мл раствора метрогила.

Рассчитали амплитуду второй тестовой сахарозной кривой рН смешанной слюны: A_2c=pH_s-pH_min2=7,10-6,63=0,47. Разность амплитуд двух тестовых сахарозных кривых рН смешанной слюны (ΔА_с) составила: ΔА_с=A_1c-А_2с=0,61-0,47=0,14 ед. рН. Полученная величина ΔА_c (0,14 ед. рН) характеризовала индивидуальную чувствительность кислотопродуцирующей ротовой микрофлоры пациента к 2-минутному полосканию рта 15 мл раствора метрогила.

Рассчитали индивидуальный коэффициент асимметрии:

К_а=_ΔА_к/_ΔА_с=0,42/0,14=3

Полученное значение К_а свидетельствует, что у конкретного пациента чувствительность аммиак-продуцирующей микрофлоры полости рта к 2-минутному полосканию раствором метрогила в 3 раза выше, чем кислотообразующей.

Рассчитали показатель ИЧРМ_кач:

ИЧРМ_кач=К_а/К_э=3/3,15=0,95

При этом в качестве К_э использовали его табличное значение (3,15), полученное опытным путем в исследованиях, проведенных в референтной группе пациентов. Полученное значение ИЧРМ_кач свидетельствует о том, что у конкретного пациента имеется качественное смещение состава ротовой микрофлоры на 5% в сторону преобладания кислотопродуцирующих штаммов микроорганизмов.

Рассчитали показатели Кпд и ИЧРМ_кол:

К_пд=[(A_1k+А_1c)/2]/[(А_2к+А_2с)/2]=[(0,58+0,61)/2]/[(0,16+0,47)]=1,9

ИЧРМ_кол=К_пд/К_пдэ=1,9/2,2=0,86

Полученное значение показателя К_пд говорит о том, что активность ротовой микрофлоры под влиянием 2-минутного полоскания рта раствором метрогила снизилась в 1,9 раза, а показателя ИЧРМ_кол - о том, что для этого конкретного пациента 2-минутного полоскания рта противомикробным средством оказалось недостаточно для оптимального подавления микрофлоры и время его экспозиции в полости рта следует увеличить на 13,6%, либо использовать другую форму препарата. При этом в качестве К_пдэ использовали его табличное значение (2,2), полученное опытным путем в исследованиях, проведенных в референтной группе пациентов.

Таким образом, в ходе исследования, длившегося 160 минут, удалось оценить индивидуальную чувствительность ротовой микрофлоры пациента к 2-минутному полосканию рта раствором метрогила и в цифровом выражении оценить индивидуальные качественные и количественные особенности чувствительности ротовой микрофлоры к данному препарату.

Способ индивидуальной оценки чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробным средствам, включающий бактериологическую оценку действия противомикробного средства путем определения степени подавления ее активности этим средством, отличающийся тем, что оценивают действие противомикробного средства на кислото- и аммиак-продуцирующую микрофлору путем сравнения амплитуд тестовых сахарных и карбамидных кривых рН в средах полости рта до и после его применения по формулам

ΔA_c=A_1c-A_2c,

где ΔА_с - изменение амплитуд тестовых сахарных кривых рН;

A_1c - амплитуда тестовой сахарной кривой до применения противомикробного средства;

А_2c - амплитуда тестовой сахарной кривой после применения противомикробного средства;

ΔА_к=А_1k,-А_2к,

где ΔА_к - изменение амплитуд тестовых карбамидных кривых рН;

A_1k - амплитуда тестовой карбамидной кривой до применения противомикробного средства;

A_2k - амплитуда тестовой карбамидной кривой после применения противомикробного средства,

и определяют индивидуальную особенность чувствительности ротовой микрофлоры к противомикробному средству, обусловленную ее качественным составом, по коэффициенту асимметрии по формуле

К_а=ΔА_к/ΔА_с

где К_а - коэффициент асимметрии;

а обусловленную ее количественным составом - по коэффициенту подавляющего действия по формуле

К_пд=[(А_1k+А_1с)/2]/[(А_2к+А_2с)/2],

где К_пд - коэффициент подавляющего действия,

затем сравнивают значения коэффициентов с величинами эталонных значений, и по разности этих значений оценивают индивидуальную чувствительность ротовой микрофлоры к действию противомикробного средства.