Способ определения бактерицидных свойств материалов

Изобретение относится к биоизмерительным технологиям. Предложен способ определения бактерицидных свойств материалов. Способ включает инкубирование тестовых микроорганизмов Lactobacillus sp. в количестве от 5×10⁵ до 5×10⁶ жизнеспособных клеток на мл в жидкой питательной среде рН 6,6-7,4 в течение 4-8 ч при температуре от 20 до 45°С в присутствии тестируемых материалов и в их отсутствие. Измеряют интенсивность рассеивания света при длине волны от 500 до 950 нм (Iod), рН и электропроводность (X) образцов. Общую степень активирования или ингибирования (+/-) жизнедеятельности тестовых микроорганизмов определяют по формуле: ε_S=(ε_Iod+ε_X+ε_pH)/3, где ε_Iod, ε_pH и ε_X определяют по формулам ε_Y=100×(ΔYt-ΔYc)/ΔYc, где ΔY=Ye-Yb - разности значений Iod, рН или X, регистрируемых в начале (Yb) и в конце (Ye) инкубации тестовых образцов в присутствии тестируемых материалов (ΔYt) и в их отсутствие (ΔYc). Способ обеспечивает объективность определения бактериальных свойств материалов. 1 табл.

 

Изобретение относится к области биоизмерительных технологий, а именно к способам оценки с помощью тестовых микроорганизмов бактерицидных свойств различных материалов.

Известен «Способ определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным веществам» (патент RU №2505813, МПК G01N 33/48, дата приоритета 06.11.2012, опубликовано 27.01.2014), в котором антимикробную активность тестируемых веществ по отношению к тому или иному биоматериалу предлагается определять, исходя из количества колоний микроорганизмов, исходно содержащихся в означенном биоматериале и выросших на плотной накопительной питательной среде в присутствии тестируемого препарата, а также времени проявления видимого роста этих колоний. Недостатками этого способа являются его длительность (до 3-х суток), большая трудоемкость, большая материалоемкость по компонентам питательных сред, а также то, что антимикробная активность тестируемых веществ определяется визуально, а следовательно, достаточно субъективно.

Известен «Способ оценки эффективности антимикробного воздействия антисептиков на бактерии, существующие в форме биопленки» (патент RU №2603100, МПК C12Q, дата приоритета 29.10.2015, опубликовано 20.11.2016), в котором эффективность действия антисептиков на бактерии, выделенные из клинического материала пациента и существующие в жидкой питательной среде (ЖПС) в форме биопленки, предлагается определять как отношение рабочей концентрации антисептика к его минимальной подавляющей концентрации. При этом регистрацию эффективности действия той или иной концентрации тестируемого антисептика на биопленку предлагается проводить с помощью фотометра - по изменению цвета и помутнению ЖПС с тестовыми микроорганизмами, инкубируемой при заданной температуре в течение заданного времени (от 5-и суток и более) в присутствии тестируемого антисептика, взятого в упомянутой концентрации. Основными недостатками этого способа, как и в предыдущих случаях, являются его большая длительность и трудоемкость, а также невысокая объективность, поскольку рассматриваемый способ позволяет оценивать влияние тестируемых веществ лишь на скорость роста тестовых микроорганизмов, но не на интенсивность их метаболизма.

Наиболее близким к предлагаемому техническому решению является «Способ определения бактерицидных свойств сыворотки крови» (патент RU №2489489, МПК C12Q 1/18, дата приоритета 26.12.2011, опубликовано 10.08.2013), в котором бактерицидные свойства проб сыворотки крови определяют по уменьшению интенсивности люминесценции инкубируемого в LB-бульоне в присутствии тестируемых проб тестового трансгенного штамма Bacillus subtilis ВКПМ В-10548, эффективно экспрессирующего luxAB-гены грамотрицательного морского микроорганизма Photobacterium leiognathi (в результате чего синтезируется фермент люцифераза, обеспечивающий активное свечение, интенсивность которого зависит от общего количества жизнеспособных тестовых микроорганизмов и активности их метаболизма). При этом анализ осуществляют следующим образом:

на первом (подготовительном) этапе выращивают штамм Bacillus subtilis ВКПМ В-10548 на LB-агаре в присутствии канамицина в конечной концентрации 40 мкг/мл (что позволяет исключить рост не люминесцирующих штаммов) при 37°C в течение 24 часов. Полученную биомассу смывают стерильным LB-бульоном, после чего полученную суспензию стандартизуют до оптической плотности 1,2 отн. ед. при 540 нм (измеряемой в кюветах с длиной оптического пути 1 см);

на втором (основном) этапе смешивают суспензию бактериальных клеток и исследуемого образца сыворотки крови в соотношении 1:1 и инкубируют полученную смесь при 37°C в течение 30 минут. При этом до и после инкубации из тестовой смеси производят отбор аликвот по 250 мкл в кюветы для биолюминометра. И дополнительно вносят в них по 2 мкл деканаля в конечной концентрации 7×10^-6 М (окисляемого в присутствии молекулярного кислорода ферментом люциферазой - что и обеспечивает активное свечение тестового штамма).

На завершающем этапе осуществляют регистрацию уровня свечения в пробах в видимой сине-зеленой области спектра (420-600 им). При этом в качестве измерительного прибора могут использоваться биохемилюминометр «Биоток-10М», а также прочие отечественные и зарубежные люминометры, работающие в обозначенной области спектра и обеспечивающие соответствующую чувствительность измерений.

К основным недостаткам данного технического решения можно отнести:

- узкую область применения (анализ бактерицидных свойств только лишь сыворотки крови человека и животных);

- необходимость использования специально выведенного, трансгенного, узкоспециализированного штамма тестовых микроорганизмов - что дополнительно ограничивает область применения данного технического решения, поскольку для тестирования про- и антибиотических свойств разных химических и физических факторов могут требоваться разные тестовые организмы (либо лучше даже совокупность из нескольких разных видов и штаммов тестовых организмов);

- кроме того, штамм Bacillus subtilis ВКПМ В-10548, применяемый при реализации данного технического решения, не является широко доступным, и потому достаточно трудно сначала получить данный штамм, а затем длительное время поддерживать его чистоту, жизнеспособность и специфические свойства (выражающиеся, в частности, в активном синтезе фермента люциферазы);

- а также то, что рассматриваемый метод обладает не очень высокой объективностью, поскольку влияние тестируемых объектов (в качестве которых в данном случае выступают образцы сыворотки крови животных и человека) на тестовые организмы определяется всего лишь по одному косвенному параметру (интенсивности хемилюминесценции этих объектов) и с использованием тест-культуры с метаболизмом, не типичным по ряду параметров для большинства живых организмов.

В связи с неуклонным ростом производства и потребления человеческим обществом различной продукции все более актуальной в настоящее время становится проблема разработки достаточно экспрессных, объективных, простых, дешевых и доступных для широкого использования методов оценки про- и антибиотических свойств различных веществ, материалов, препаратов, пищевой и иной продукции, отходов различных производств и т.п.

В связи с вышесказанным, целью заявляемого изобретения стало создание способа, позволяющего, по сравнению с прототипом, более широкому кругу пользователей с большей объективностью оценивать бактерицидные свойства существенно более широкого круга тестируемых материалов.

Цель эта достигается за счет того, что в предлагаемом способе (который включает такие операции как: подготовка тестовых образцов, инкубирование этих образцов как в присутствии тестируемых материалов, так и в их отсутствие, сопровождающееся измерением свойств этих образцов в начале и в конце их инкубации, и последующее определение бактерицидных свойств тестируемых материалов на основании упомянутых измерений) тестовые образцы перед началом их инкубирования представляют собой Lactobacillus sp.в количестве от 5×10⁵ до 5×10⁶ жизнеспособных клеток на мл, суспендированную в водном растворе, изначально содержащем 4-10 г/л лактозы, 16-20 г/л белкового гидролизата и 1,8-2,2 г/л NaCl, и имеющем pH 6,6-7,4; инкубирование этих образцов в присутствии тестируемых материалов (в качестве которых могут выступать как отдельные химические вещества или частица, так и их разнообразные смеси) проводят в течение 6-10 часов при температуре, оптимальной для развития штамма Lactobacillus, выбранного в качестве тестового (в диапазоне от 20 до 45°C); свойства образцов определяют путем измерения значений упругого светорассеяния в диапазоне длин волн от 500 до 950 нм (Iod), pH и электропроводности (X); после чего общую степень активирования или ингибирования (+/-) жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми материалами определяют по формуле:

ε_S=(ε_Iod+ε_X+ε_pH)/3,

где ε_Iod, ε_X и ε_pH определяют по формулам ε_Y=100×(ΔYt-ΔYc)/ΔYc,

где ΔY=Ye-Yb - разности значений Iod, X или pH, регистрируемых в начале (Yb) и в конце (Ye) инкубации тестовых образцов в присутствии тестируемых материалов (ΔYt) и в их отсутствие (ΔYc).

При этом, выбор Lactobacillus в качестве тестовых микроорганизмов связан с тем, что кисломолочные бактерии широко распространены в природе, обладая развитой ферментной системой, активно участвуют в естественном разложении многих природных и антропогенных материалов, легко культивируются и, вследствие всего вышеупомянутого, широко используются в различных методах биотестирования, научных исследованиях, а также биотехнологических процессах.

Выбор количества жизнеспособных тестовых микроорганизмов, которое должно присутствовать в тестовых образцах перед началом их инкубации в присутствии и в отсутствие тестируемых материалов (от 5×10⁵ до 5×10⁶ кл/мл), определяется тем, что при меньшем количестве таковых микроорганизмов увеличивается длительность инкубации, необходимая для достижения максимальной чувствительности заявляемого способа анализа; а при большем количестве тестовых микроорганизмов снижается интенсивность их роста и метаболизма, что приводит к уменьшению чувствительности анализа.

Выбор исходного состава жидкой питательной среды, входящей в состав тестовых образцов (водный раствор с pH 6,6-7,4, содержащий 4-10 г/л лактозы, 16-20 г/л белкового гидролизата и 1,8-2,2 г/л NaCl), связан с необходимостью обеспечения оптимальных условий для развития в этой среде тестовых микроорганизмов - что, как и в предыдущем случае, нужно для увеличения чувствительности и снижения продолжительности анализа.

Выбор режима инкубирования тестовых образцов (6-10 часов при 20-45°C) связан с тем, что при более длительном инкубировании снижается интенсивность роста и метаболизма тестовых микроорганизмов (что приводит к соответствующему снижению чувствительности анализа); при других температурах инкубирования интенсивность роста и метаболизма тестовых микроорганизмов также снижается (что приводит к уменьшению чувствительности анализа и необходимости увеличения его длительности); а при меньшем времени инкубирования тестовые микроорганизмы не успевают в достаточной степени среагировать на изменения в окружающей их среде, вызванные присутствием там тестируемых материалов (что приводит к снижению как чувствительности, так и объективности анализа).

Увеличение (по сравнению с прототипом) объективности и спектра применимости заявляемого способа анализа обеспечивается тем, что в ходе него осуществляется точная, инструментальная, количественная оценка изменения 3-х различных параметров (Iod, pH и X), характеризующих метаболическую активность общепринятых тестовых микроорганизмов (Lactobacillus sp.) вследствие воздействия на них широкого круга тестируемых материалов (которые могут включать в себя как различные отдельные химические вещества и частицы, так и их разнообразные смеси). В то время как в прототипе влияние тестируемых материалов на тестовые микрорганизмы определялось всего лишь по одному параметру тестового образца (а именно, интенсивности его хемилюминесценции), достаточно косвенно характеризующему метаболическую активность тестовых микроорганизмов. Причем данным способом предлагалось оценивать бактерицидные свойства весьма узкого круга тестируемых материалов (а именно, сыворотки крови человека и животных), и к тому же, с помощью трансгенного, узкоспециализированного штамма тестовых микроорганизмов (Bacillus subtilis ВКПМ В-10548) с достаточно нетипичным метаболизмом.

А доступность заявляемого способа анализа более широкому кругу пользователей обеспечивается, во-первых, возможностью применения для регистрации параметров тестовых образцов таких простых в эксплуатации, доступных и дешевых, переносных приборов, как например нефелометр «WGZ-2», иономер «Эксперт-001» и кондуктометр «Эксперт-002». Во-вторых, применением при анализе минимального числа дополнительных реагентов и ручных операций по засеву и оценке роста и метаболической активности тестовых микроорганизмов в присутствии тестируемых материалов (в то время как в прототипе предлагалось использовать такие специфические химические реагенты, как канамицин, деканаль и т.п., а также осуществлять множество дополнительных ручных операций по выращиванию тестовых микроорганизмов на LB-агаре и последующему приготовлению суспензии бактериальных клеток в LB-бульоне). И в-третьих, возможностью применения для анализа таких хорошо доступных и легко культивируемых тестовых микроорганизмов, как Lactobacillus sp.(в то время как в прототипе в качестве тестовых микроорганизмов предлагалось использовать штамм Bacillus subtilis ВКПМ В-10548, мало доступный и трудно культивируемый в условиях необходимости поддержания требуемой степени чистоты и жизнеспособности данной микробиологической культуры, нужных для осуществления Bacillus subtilis ВКПМ В-10548 таких специфических свойств, как, в частности, активный синтез фермента люциферазы).

Реализация предлагаемого способа определения бактерицидных свойств материалов осуществляется следующим образом:

Этап 1. Готовится питательная среда (ПС), представляющая собой стерильный водный раствор с pH 6,6-7,4, содержащий 4-10 г/л лактозы, 16-20 г/л белкового гидролизата и 1,8-2,2 г/л NaCl. После чего все емкости с ПС хранятся в герметично закрытом виде, в отсутствие света, при 2-4°C.

Этап 2. Отбираются тестируемые материалы (ТМ); после чего доставляются в лабораторию и хранятся там до начала анализа в темном месте, в герметически закрытом виде, при 2-4°C.

Этап 3. Подготавливается исходный тестовый образец (ТО). Для чего в одну большую емкость с ПС стерильно вносится 1-10 об. % закваски, содержащей суспендированные в ПС жизнеспособные клетки Lactobacillus sp. После чего упомянутая емкость герметично закрывается и инкубируется в течение 12 ч при температуре, оптимальной для развития штамма Lactobacillus, выбранного в качестве тестового (из диапазона от 20 до 45°C).

Затем в упомянутой емкости измеряется интенсивность света, упруго рассеиваемого ТО на длине волны 500-950 нм (Iod). И по предварительно построенному калибровочному графику (представляющему собой зависимость Iod ТО от концентрации содержащихся в нем клеток Lactobacillus sp.) удостоверяется, что полученное значение Iod соответствует концентрации Lactobacillus sp.в ТО от 5×10⁵ до 5×10⁶ клеток на мл (кл/мл).

После этого, если измеренная Iod соответствует концентрации Lactobacillus sp. в ТО меньше 5×10⁵ кл/мл; то емкость с ТО инкубируется в тех же условиях, что и ранее в течение еще 6 ч; после чего для нее проводится повторное определение Iod. А если измеренная Iod соответствует концентрации Lactobacillus sp. в ТО больше 5×10⁶ кл/мл; то ТО в той же емкости разбавляется необходимым количеством ПС.

Этап 4. Если нас интересует концентрационная зависимость бактерицидного действия тестируемых материалов, либо эти материалы имеют слишком высокую исходную токсичность (так что ожидается, что в неразведенном виде они будут слишком сильно ингибировать развитие тестовых микроорганизмов), то делается необходимое количество разведений исходных материалов. После чего каждый материал или каждое его разведение делится на 3-5 равных частей, каждая из которых помещается в отдельную емкость, куда также добавляется заданное количество ТО, подготовленного на 3-м этапе анализа.

Этап 5. Все емкости, приготовленные на 4-м этапе анализа, плюс некоторое количество контрольных емкостей, содержащих ТО без добавок тестируемых материалов (а также, в случае необходимости, ТО с заданным количеством вещества или смеси веществ, про- или антимикробная активность которых известны заранее) закрываются, перемешиваются и помещаются в термостат, где инкубируются в течение 6-10 часов при температуре, оптимальной для развития штамма Lactobacillus, выбранного в качестве тестового (из диапазона от 20 до 45°C). При этом непосредственно перед началом и после окончания этой инкубации во всех упомянутых емкостях регистрируются значения таких параметров ТО (изменяющихся вследствие роста и размножения там тестовых микроорганизмов, а также преобразования ими в ходе метаболической активности одних веществ, входящих в состав ТО, в другие) как pH, интенсивность света, упруго рассеиваемого в диапазоне длин волн от 500 до 950 нм (Iod) и электропроводность (X).

Этап 6. После этого общая степень активирования или ингибирования (+/-) жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми материалами рассчитывается по формуле ε_S=(ε_Iod+ε_X+ε_pH)/3,

где ε_Iod, ε_X и ε_pH определяют по формулам ε_Y=100×(ΔYt-ΔYc)/ΔYc,

где ΔY=Ye-Yb - разности значений Iod, X или pH, регистрируемых в начале (Yb) и в конце (Ye) инкубации ТО в присутствии тестируемых материалов (ΔYt) и в их отсутствие (ΔYc).

Упомянутый способ может быть реализован с применением таких основных измерительных приборов, как нефелометр («WGZ-2» или иной, позволяющий с достаточной степенью чувствительности измерять для жидких, водных образцов интенсивность света, упруго рассеиваемого в диапазоне длин волн от 500 до 950 нм), иономер («Эксперт-001» или иной, позволяющий с достаточной степенью чувствительности измерять pH жидких, водных образцов) и кондуктометр («Эксперт-002» или иной, позволяющий с достаточной степенью чувствительности измерять изменение электропроводности жидких, водных образцов).

Более детально настоящее изобретение описывается следующим конкретным примером. Исследовались бактерицидные свойства материалов, изготовленных в виде пленок толщиной 0,3 мм на основе поливинилхлорида (ПВХ) с добавками 0, 1 и 10 масс. % крахмала и яблочного пектина. Каждый из этих материалов разрезался на 9 фрагментов размером 10×20 мм, каждый из которых помещался в отдельную пробирку с 6 мл тестовой среды (ТС), в качестве которой использовались суспензии, содержащие около 10⁶ жизнеспособных клеток Lactobacillus acidophilus АТСС 4356, Lactobacillus helveticus АТСС 8018 либо Lactobacillus kefiri АТСС 35411 в 1 мл водного раствора, исходно стерильного, имевшего pH 7,0±0,2 и содержавшего 6,0±0,1 г/л лактозы + 18±0,1 г/л белкового гидролизата + 2,0±0,1 г/л NaCl. Затем все эти пробирки (включая 9 контрольных, содержавших те же ТС, но без добавления какого-либо из тестируемых материалов) перемешивались, закрывались ватно-марлевыми пробками и инкубировались при 30°C в течение 9-и часов. При этом непосредственно перед началом инкубации и сразу после ее окончания последовательно у ТС в каждой из пробирок регистрировались интенсивность света, упруго рассеиваемого в диапазоне длин волн от 500 до 950 нм (Iod), pH и электропроводность (X). Причем значения Iod регистрировались с помощью нефелометра «WGZ-2». Значения pH регистрировались с помощью иономера «Эксперт-001» с комбинированным электродом «ЭСК-10601/7». А значения X регистрировались с помощью кондуктометра «Экс-перт-002» с датчиком «УЭП-П-С», работающим на частоте 1,6 кГц.

Далее, изменения каждого из измеренных параметров ТС рассчитывались по формуле: ΔY=Ye-Yb (где Yb и Ye - значения Iod, pH или X, зарегистрированные в каждой из контрольных и тестовых пробирок в начале и в конце их инкубирования). Затем все полученные значения ΔY_i усреднялись (по пробиркам, содержащим одни и те же материалы в одних и тех же ТС), и для каждого из усредненных значений рассчитывался 95% доверительный интервал. После чего общая степень активирования или ингибирования (+/-) жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми материалами рассчитывалась по формуле: ε_S=(ε_Iod+ε_pH+ε_X)/3,

где ε_Y=100×(ΔYt-ΔYc)/ΔYc, a ΔYt и ΔYc - изменения значений Iod, pH или X, произошедшие за время инкубирования ТС в присутствии тестируемых материалов (ΔYt) и в их отсутствие (ΔYc). Результаты этих расчетов представлены в таблице 1.

Условные обозначения: «К-1» и «К-10» - ПВХ материалы с добавками 1 и 10 масс. % крахмала; «К-1» и «К-10» - ПВХ материалы с добавками 1 и 10 масс. % яблочного пектина; «ПВХ» - 100% ПВХ.

Из представленного видно, что у разных видов и штаммов Lactobacillus реакция на присутствие тестируемых материалов, в целом, была в значительной мере сходной. При этом ПВХ основа тестируемых материалов сама по себе либо с минимальным количеством добавок максимально ингибировала жизнедеятельность тестовых микроорганизмов. В то время как тестируемые материалы с большим количеством крахмала или пектина в своем составе ингибировали жизнедеятельность тестовых микроорганизмов уже значительно меньше. Причем происходило это в большей мере в присутствии крахмала нежели в присутствии пектина.

Таким образом, заявляемый способ может обеспечить расширение области применения определения бактерицидных свойств различных материалов, а также повышение объективности такого определения и доступности его для использования более широким кругом пользователей.

Способ определения бактерицидных свойств материалов, включающий подготовку тестовых образцов, содержащих достаточное количество жизнедеятельных тестовых микроорганизмов, суспендированных в изначально стерильной жидкой питательной среде, инкубирование этих образцов как в присутствии тестируемых материалов, так и в их отсутствие, сопровождающееся измерением свойств тестовых образцов в начале и в конце их инкубирования, и последующее определение бактерицидных свойств тестируемых материалов, отличающийся тем, что тестовые микроорганизмы представляют собой Lactobacillus sp., количество которых в тестовых образцах перед началом инкубации последних должно составлять от 5×10⁵ до 5×10⁶ жизнеспособных клеток на мл, жидкая питательная среда, используемая для приготовления тестовых образцов, представляет собой стерильный водный раствор с рН 6,6-7,4, содержащий 4-10 г/л лактозы, 16-20 г/л белкового гидролизата и 1,8-2,2 г/л NaCl, инкубирование тестовых образцов проводят в течение 4-8 ч при температуре, оптимальной для развития штамма Lactobacillus sp., выбранного в качестве тестового (в диапазоне от 20 до 45°С), свойства образцов определяют путем измерения интенсивности света, упруго рассеиваемого в диапазоне длин волн от 500 до 950 нм (Iod), рН и электропроводности (X), после чего общую степень активирования или ингибирования (+/-) жизнедеятельности тестовых микроорганизмов тестируемыми материалами определяют по формуле: ε_S=(ε_Iod+ε_X+ε_pH)/3,

где ε_Iod, ε_pH и ε_X определяют по формулам ε_Y=100×(ΔYt-ΔYc)/ΔYc,

где ΔY=Ye-Yb - разности значений Iod, рН или X, регистрируемых в начале (Yb) и в конце (Ye) инкубации тестовых образцов в присутствии тестируемых материалов (ΔYt) и в их отсутствие (ΔYc).