Поливалентная вакцина против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота и способ ее применения

Группа изобретений относится к области медицины, а именно к иммунологии и ветеринарной медицине, и может быть использована для получения поливалентной вакцины против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота. Для этого вакцина изготовлена из культур Cl. perfringens типов А - №28, С - №3 и D - №91, которые выращивали на мясо-казеиновой среде в реакторе при +37°С в течение 4-16 часов в зависимости от времени токсинообразования конкретного штамма. Использовали полученные культуры, содержащие высокоактивные токсины с накоплением: Cl. perfringens тип D не менее 2000 ДЛМ/см3, тип А не менее 100 ДЛМ/см3 и тип С не менее 6000 ДЛМ/см3 для белых мышей, в которые после проведенного культивирования в реактор с культурой добавили формалин с содержанием 37% формальдегида к объему культуральной жидкости, предварительно установив рН 7,2. Инактивацию проводили при +37°С в течение 7 суток, полученные культуры центрифугировали, надосадок использовали для получения антигена. Для осаждения антигенов в культуральную жидкость добавили 18% трехпроцентного стерильный раствора гидроокиси алюминия, тщательно перемешали и оставили при температуре +20°С на 2-5 суток до полного просветления надосадочной жидкости, затем декантировали около 70% надосадочной жидкости с получением инактивированной вакцины. Группа изобретений относится также к применению полученной поливалентной вакцины против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота. Использование данной группы изобретений позволяет повысить сохранность молодняка, защищая от заболевания инфекционной анаэробной энтеротоксемии крупного рогатого скота. 2 н. и 1 з.п. ф-лы, 2 табл.

 

Изобретение относится к области ветеринарной медицины и биотехнологии.

Инфекционная анаэробная энтеротоксемия (Entertoxaemia infectiosa anaerobica) - острая, неконтагиозная токсикоинфекция, характеризующаяся общей интоксикацией, расстройством деятельности желудочно-кишечного тракта, поражением почек и нервными явлениями. Возбудителем анаэробной энтеротоксемии являются анаэробные, спорообразующие, неподвижные, крупные (4-6×1,5 мкм) грамположительные палочки из группы Cl. perfringens, располагающиеся одиночно, реже цепочками и группами. Различают шесть типов Cl. perfringen - A, B, C, D, E и F, сходные по культурально-морфологическим свойствам, но отличающиеся по патогенным особенностям и антигенной культуре образуемого ими токсина (Нестеров И.А. Эпизоотологический анализ факторов патогенеза возбудителя перфрингеоза животных / Вестник ветеринарии. 2011/2. №57. С. 23-27.). Согласно литературным данным, а также результатам собственных исследований, у молодняка анаэробную энтеротоксемию вызывают Cl. perfringen типов A, C и D.

Болезнь широко распространена на территории нашей страны и за рубежом. Заболевание проявляется спорадическими случаями, но имеют четкое постоянство. Характеризуется высокой летальностью, что приводит к значительному экономическому ущербу для хозяйств (Ветеринария Кубани / Болоцкий И.А., Васильев А.К., Семнцов В.И., и др. 2009. №4. С. 12-15; Ferrarezi М.С., Cardoso Т.С., Dutra I.S. Genotyping of Clostridium perfringens isolated from calves with neonatal diarrhea. // Anaerobe. 2008. №14. 328-331; Lebrun M., Filee P., Mousset В., Desmecht D., Galleni M., Mainil J.G., Linden A. The expression of Clostridium perfringens consensus beta2 toxin is associated with bovine enterotoxaemia syndrome. // Vet. Microbiol. 2007. №120. 151-157.).

Ликвидация анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота осуществляется двумя направлениями: специфической профилактикой и лечением, вакцинация обеспечивает невосприимчивость к заболеванию иммунизированных животных за счет образующегося иммунитета после введения препарата на достаточно длительный срок, лечение при данном заболевании мало эффективное и трудоемкое. В связи с этим основным методом борьбы является вакцинация стельных коров, которая обеспечивает сохранность новорожденных телят за счет колострального иммунитета.

Исследование по совершенствованию специфической профилактики ведется с 1936 г, но вопрос по разработке эффективной вакцины против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота остается актуальным.

В настоящее время для иммунизации крупного рогатого скота против анаэробной энтеротоксемии предложен широкий спектр препаратов, как зарубежного, так и отечественного производства, например:

- вакцина «Ван Шот Ультра 8», состоящей из двух компонетов: лиофилизированного - лейкотоксин Mannhemia (Pasteurella) haemolytica, и жидкого - бактерин-токсоиды Cl. chauvoei, Cl. septicum, Cl. haemolyticum, О. novyi, Cl. sordellii, Cl. perfringens типов C и D, инактивированные формальдегидом, с добавлением адъюванта Стимуген. Иммунитет против клостридиозов ипневмоний, вызванных М. haemolytica, формируется у животных через 3 недели после двукратной вакцинации и сохраняется не менее 12 месяцев. Иммунизируют только клинически здоровых животных с 45-дневного возраста. Вакцину вводят подкожно двукратно с интервалом 4-6 недель в объеме 2 см3.

- вакцина «Токсипра Плюс» состоит избактерин-токсоидов Cl. perfringens типов B, C и D, Cl. novi тип B, Cl. septicum, Cl. chauvoei, Cl. tetani. Препарат вызывает формирование иммунного ответа у животных к клостридиозам через 21 день после двукратного введения, который сохраняется 12 месяцев.

- вакцина «Мультиклос» изготовлена из анатоксинов, полученных при культивировании штаммов Cl. septicum, Cl. novyi тип B, Cl. sordellii, Cl. perfringens типов C и D, а также инактивированных культур Cl. chauvoei и Cl. haemolyticum, с добавлением 25 мг алюмокалиевых квасцов в качестве адъюванта и 5 мг фенола в качестве консерванта.

Недостатком представленных зарубежных вакцин является многокомпонентность и высокая стоимость, а также не полное соответствие антигенного состава этиологической структуре клостридиозов в РФ. Отсутствием антигена Cl. perfringens типа A - одного из основных возбудителей, вызывающих анаэробную энтеротоксемию у молодняка крупного рогатого скота, делает их малоэффективными в хозяйствах, где превалирует возбудитель этого типа.

В Российской Федерации существуют похожие препараты против клостридиозов крупного рогатого скота:

- вакцина «Антокс-9» состоящая из смеси токсинов штаммов Cl. perfringens типов В (С) и Д, Cl. oedematiens и бактериальных клеток штамма Cl. septicum инактивированных формалином и осажденных гидратом окиси алюминия.

- известная вакцина «Клостбовак-8» изготовлена из штаммов Cl. chauvoei, Cl. septicum, анатоксинов Cl. novyi (oedematiens) тип В, Cl. perfringens типов A, C и D, Cl. tetani, инактивированных формальдегидом (0,5%), с добавлением гидрата окиси алюминия - 15%.

Иммунизируют крупный рогатый скот и овец в возрасте от 45 дней. Вакцину вводят подкожно: овцам в бесшерстный участок под локтевым суставом, крупному рогатому скоту в заднюю треть шеи двукратно с интервалом 21-28 дней в объеме 3 мл.

Ревакцинируют животных ежегодно однократно по аналогичной схеме. Телят и ягнят дополнительно однократно вакцинируют в возрасте 6 месяцев.

Все перечисленные отечественные вакцины предназначены для специфической профилактики животных с 1,5 месячного возраста, а также стельных коров.

Однако, несмотря на актуальность в настоящее время ассоциированных вакцин, следует отметить, что высокое содержание антигенов отрицательно влияет на безвредность применения препаратов, а также создает менее выраженный иммунитет к каждому из компонентов. Поэтому, в хозяйствах неблагополучных по анаэробной энтеротоксемии, для вакцинации стельных коров с целью создания колострального иммунитета у новорожденных телят, целесообразно применять вакцины против отдельных видов возбудителей. В настоящее время такие препараты отечественного производства отсутствуют, хотя их использование в стационарно неблагополучных хозяйствах очень эффективно.

Изобретение направлено на профилактику анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота.

Вакцина против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота содержит следующие компоненты: анатоксины Clostridium perfringens типов A - №28, C - №3 и D - №91, формалин с содержанием 37% формальдегида и 3% раствора гидроокиси алюминия. Способ применения вакцины включает подкожное введение препарата для иммунизации нетелей и стельных коров с целью профилактики анаэробной энтеротоксемии у молодняка крупного рогатого скота. Вакцину вводят в дозе 5 см3. При первичной вакцинации животных иммунизируют двукратно с интервалом 21-28 дней. В последующем ранее вакцинированным животным препарат вводят однократно в дозе 5 см3. Изобретение повышает сохранность молодняка и защищает неблагополучные хозяйства от заболевания инфекционной анаэробной энтеротоксемии крупного рогатого скота.

Применение данной вакцины вызывает образования напряженного иммунитета у молодняка и взрослого поголовья крупного рогатого скота продолжительностью 12 месяцев после двукратной вакцинации. У телят, полученных от вакцинированных коров, формируется колостральный иммунитет, продолжительностью до 14 дней.

Используемые штаммы характеризуются следующими свойствами:

Культуральные свойства - на среде Китт-Тароцци производственные штаммы Cl. perfringens дают бурный рост с сильным равномерным помутнением бульона и обильным газообразованием; на глюкозо-кровяном агаре образуют крупные, гладкие, серо-белого цвета, выпуклые колонии с ровными краями, окруженные зоной гемолиза.

Морфологические свойства: в мазках из культуры бактерии представляют собой грамположительные, неподвижные, прямые, короткие, толстые палочки, с округленными концами. Размер 4-6×1,0-1,5 мкм. Образуют большие овальные споры, располагающиеся центрально или субтерминально. В процессе лабораторного и производственного культивирования споры и капсулы обычно не образуются.

Ферментативные свойства: ферментирует глюкозу, лактозу, сахарозу с образованием кислоты и газа, не ферментирует маннит и дульцит. Культуры токсичны, вызывают гибель белых мышей в течение 12 часов.

Пример 1. При изготовление вакцины использовали наиболее иммуногенные производственные штаммы Cl. perfringens типов A - №28, C - №3 и D - №91, которые выращивали на мясо-казеиновой среде в реакторе при +37°C в течение 4-16 часов в зависимости от времени токсинообразования конкретного штамма. Токсичность культур определяли на белых мышах, которым внутривенно вводили культуральную жидкость в объеме 0,5 см3, при наличии токсина гибель животных должна была произойти в течение 24 часов.

Для изготовления вакцины использовали культуры, образующие в течение установленного требованиями промышленных регламентов времени, высокоактивные токсины с накоплением: Cl. perfringens тип D не менее 2000 ДЛМ/см3; тип А не менее 100 ДЛМ/см3 и тип C не менее 6000 ДЛМ/см3 для белых мышей массой 16-18 гр. После проведенного культивирования, в реактор с культурой добавили формалин с содержанием 37% формальдегида, предварительно установив pH 7,2. Инактивацию проводили при +37°C в течение 7 суток с ежедневным перемешиванием 3-4 раза. Инактивированные культуры центрифугировали для удаления бактериальных клеток, а надосадок использовали для получения антигена.

Для осаждения антигенов в культуральную жидкость добавили 18% трехпроцентного стерильный раствор гидроокиси алюминия, тщательно перемешали и оставили при температуре +20°C на 2-5 суток до полного просветления надосадочной жидкости, затем декантировали около 70% надосадочной жидкости. Полученную инактивированную вакцину против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота расфасовывали во флаконы емкостью 100-200 см3, контролировали внешний вид, наличие посторонних примесей, стерильность, безвредность и иммуногенную активность.

Пример 2. Проведения контроля лекарственного средства в лабораторных условиях по следующим показателям: внешний вид, наличие посторонних примесей, стерильность, остаточную токсичность, безвредность и иммуногенную активность.

Внешний вид вакцины - представляет собой суспензию желто-серого цвета, при хранении которой образуется светло-серый осадок, легко разбивающийся в равномерную взвесь. Во флаконах отсутствует плесень и механические примеси.

Для определения контроля стерильности вакцины проводили в соответствии с ГОСТом 28085-2013 «Средства лекарственные биологические для ветеринарного применения. Метод бактериологического контроля стерильности». Посев вакцины производилина питательные среды - МПБ, МПА, агар Сабуро, Китт-Тароцци. Инкубировали посевы на среде Сабуро при +22°C, а остальные среды при +37°C. Наличие роста определяли визуально. Вывод вакцина стерильная, рост бактериальной и грибной микрофлоры на питательных средах отсутствовал в течение 14 суток наблюдения.

Остаточную токсичность проверяли путем подкожного введения 10 белым мышам инактивированной вакцины в разведении 1:10 физиологическим раствором, в дозе 0,5 см3. Срок наблюдения за животными составил 10 дней. После окончания опыта все белые мыши живы и клинически здоровы. Отсюда следует вывод, что разработанная вакцина не токсичная для лабораторных животных.

Определение безвредности препарата проводили на 2 морских свинках массой 350-400 гр. Вакцину вводили подкожно в дозе 1 см3. Препарат считали безвредным, если морские свинки в течение 10 суток после введения вакцины оставались живы и клинически здоровы. Результат, вакцина безвредная, не вызывает поствакцинальные осложнения на лабораторных животных.

Определение иммуногенной активности вакцины против анаэробной энтеротоксемии проверяли на 5 кроликах. Препарат вводили подкожно в дозе 2 см3, через 21 день вакцинацию повторили. На 14 дней после последнего введения препарата проводили взятия крови у иммунизированных кроликов из ушной вены. Полученную от вакцинированных кроликов сыворотку крови исследовали на наличие титра антитоксических антител в реакции нейтрализации токсинов Cl. perfringens. Сыворотку, разливали по пробиркам по 1 мл, а затем в нее добавляли токсины различных типов клостридий в равном по объему количестве с предварительно установленной активностью, оставили для связывания при +20°C на 45 минут, затем вводили внутривенно по 0,5 см3 пяти белым мышам на каждую смесь. Параллельно ставили контроль, белым мышам ввели оттитрованные смертельные дозы токсинов бактерий Cl. perfringens типов A, C и D. Вакцину считают активной против энтеротоксемии, если сыворотка крови от иммунизированных кроликов предохраняет не менее четырех мышей из пяти, взятых в опыт, при гибели всех мышей контрольной группы. Полученные нами данные указаны в таблице 1.

Из таблицы 1 видно, что вакцина обладает высокой антигенной активностью. Сыворотка крови кроликов, двукратно иммунизированных вакциной, предохраняет от гибели 80-100% подопытных белых мышей, при 100% гибели контрольных животных.

Полученная инактивированная вакцина отвечает современным требованиям качества, являясь полностью безопасной при введении животным и высокоэффективной, что позволяет индуцировать у животных иммунитет высокой степени напряженности.

Пример 3. Определение профилактической эффективности инактивированной вакцины против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота проводили в ЗАО «Племрепродуктор «Васильевское» Сергиев-Посадского района Московской области, стационарно неблагополучном по анаэробной энтеротоксемии. Подобрали две группы животных опытную и контрольную. Опытная группа состояла из 48 стельных коров и 70 телят 14-20 дневного возраста. Коровам вакцину вводили подкожно в заднюю треть шеи, в дозе 5 см3 двукратно с интервалом 3 недели, чтобы вторая доза вакцины была введена не позднее 3-6 недель до отела коров. Телят иммунизировали двукратно с интервалом 21 день в дозе 3 см3. Перед применением флакон с вакциной нагревали до комнатной температуры и тщательно встряхнули. Вакцину вводили с соблюдением правил асептики и антисептики. Контрольная группа сформирована из 40 глубокостельных коров и 63 голов телят, такого же возраста, что и в опытной группе, животных не вакцинировали и не проводили лечение. Результаты исследования указаны в таблице 2.

Из данной таблице видно, что в опытной группе состоящих из 48 стельных коров заболело 2 головы. От иммунизированных коров получили 43 здоровых новорожденных теленка, только у 2 телят наблюдали признаки диареи, снижения аппетита, повышения температуры тела, животные были угнетены. Падеж телят, от вакцинированных коров отсутствовал. В контрольной группе заболело 15 стельных коров, 3 головы пало. От стельных коров получили 24 теленка, из которых у 13 новорожденных телят наблюдали признаки анаэробной энтеротоксемии, здоровых было 7 голов и 4 теленка пало. Иммунизированные телята старшего возраста, живы и клинически здоровы, один теленок заболел, в то время как в контрольной группе из 63 телят, здоровых было 26, заболело 24 теленка, от анаэробной энтеротоксемии пало 13 голов.

Следовательно, вакцина против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота безвредная для животных, обладает высокой иммуногенной активностью, не вызывает осложнений после введения.

Применение данной вакцины в неблагополучном хозяйстве позволило снизить заболеваемость и гибель телят и тем самым повысить сохранность молодняка крупного рогатого скота.

Полученные для производства антигены отвечают современным требованиям качества, являясь полностью безопасными при введении животным и высокоэффективными, что позволяет индуцировать у животных иммунитет высокой степени напряженности.

Вакцина обеспечивает формирование иммунитета у вакцинированных коров, снижая тем самым возникновение случаев заболевания анаэробной энтеротоксемией животных. Вакцина в рекомендуемых, а также двукратно превышающих дозах, безвредная. Лечебными свойствами не обладает.

Пример 4. Биологические свойства и порядок применения вакцины против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота.

Активными компонентами вакцины являются антитоксины Cl. perfringens типов A, C, D. Все компоненты безвредны, обладают высокой эффективностью и полностью совместимы.

Вакцина при двукратном введении с интервалом 3-4 недель в соответствующих дозах вызывает у молодняка и взрослого поголовья крупного рогатого скотаобразование напряженного иммунитета продолжительностью 12 месяцев. У новорожденных телят, полученных от вакцинированных коров, формируется колостральный иммунитет.

Порядок применения вакцины. Вакцину применяют с профилактической целью в угрожаемых и стационарно неблагополучных хозяйствах по анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота. Иммунизируют клинически здоровые животные. В хозяйствах, неблагополучных по анаэробной энтеротоксемии специфическую профилактику начинают с иммунизации стельных коров и нетелей, которым прививают двукратно с интервалом 3-4 недели, в объеме 5 см3. В последующем ранее вакцинированным животным вакцину вводят однократно в объеме 5 см3 за 3-6 недель до отела. Коров ревакцинируют перед каждым отелом. Для иммунизации телят препарат вводят подкожно в объеме 4 см3.

Перед применением флаконы с вакциной необходимо тщательно встряхивать, а в холодное время подогревать в водяной бане до 37-38°C.

Молоко и продукты убоя, полученные от иммунизированных животных, в любое время после вакцинации реализуются без ограничений.

При проведении прививок необходимо соблюдать правила асептики и антисептики. Место введения вакцины дезинфицируют 70% раствором этилового спирта. Шприцы и иглы используют одноразовые, для каждого животного.

Противопоказания к применению:

- не вакцинировать больных и ослабленных животных;

- не применять гипериммунные сыворотки или иммунодепрессанты в течение 1 месяца после вакцинации.

1. Поливалентная вакцина против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота, изготовлена из культур Cl. perfringens типов А - №28, С - №3 и D - №91, которые выращивали на мясо-казеиновой среде в реакторе при +37°С в течение 4-16 часов в зависимости от времени токсинообразования конкретного штамма, использовали полученные культуры, содержащие высокоактивные токсины с накоплением: Cl. perfringens тип D не менее 2000 ДЛМ/см3, тип А не менее 100 ДЛМ/см3 и тип С не менее 6000 ДЛМ/см3 для белых мышей, в которые после проведенного культивирования в реактор с культурой добавили формалин с содержанием 37% формальдегида к объему культуральной жидкости, предварительно установив рН 7,2, инактивацию проводили при +37°С в течение 7 суток, полученные культуры центрифугировали, надосадок использовали для получения антигена, для осаждения антигенов в культуральную жидкость добавили 18% трехпроцентного стерильного раствора гидроокиси алюминия, тщательно перемешали и оставили при температуре +20°С на 2-5 суток до полного просветления надосадочной жидкости, затем декантировали около 70% надосадочной жидкости с получением инактивированной вакцины.

2. Способ применения поливалентной вакцины против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота по п. 1, характеризуется тем, что при первичной вакцинации стельных коров и нетелей иммунизируют двукратно с интервалом 21-28 дней, вторую дозу вакцины вводят не позднее 3-6 недель до отела, в последующем ранее вакцинированным стельным коровам и нетелям вакцину вводят однократно в дозе 5 см3 за 3-6 недель до каждого следующего отела, при этом для иммунизации телят 14-20 дневного возраста препарат вводят двукратно с интервалом 3-4 недели подкожно в объеме 3 см3.

3. Способ по п. 2, характеризующийся тем, что коров ревакцинируют перед каждым отелом.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области органической химии, а именно к гетероциклическому соединению формулы I или его фармацевтически приемлемой соли, где R1 представляет собой C1-7-алкил или C1-7-алкокси-C1-7-алкил; R2 выбран из группы, состоящей из водорода, галогена, C1-7-алкоксикарбонил-C1-7-алкила и C1-7-алкоксикарбонил-C2-7-алкенила; R3 представляет собой водород; R4 выбран из группы, состоящей из -O-(CH2)m-NHR5 и -O-(CO)-(CH2)n-NHR6, где m представляет собой 2, n представляет собой 1, R5 представляет собой водород и R6 представляет собой водород.

Изобретение относится к новым биологически активным соединениям - серебряным солям 5,6-диарил-4-[4-(ацетиламиносульфонил)фенил]-3,5-дигидропирроло[3,4-с]пиразол-3-онов формулы (I, II) R1=Н, R2=4-Cl (I), R1=4-Br, R2=Н (II), обладающим противомикробной активностью и низкой токсичностью.

Изобретение относится к фармацевтике, а именно к фармацевтической субстанции для получения лекарственного средства для лечения инфицированных ран. При этом субстанция характеризуется включением эффективного количества активных компонентов мирамистина и хитозана, а также уксусной кислоты в качестве вспомогательного вещества и воды при следующем содержании ингредиентов, в % (масс.): Мирамистин - 0,05, Хитозан - 1,0, Уксусная кислота - 0,6, Вода очищенная - до 100,0.
Изобретение относится к химико-фармацевтической промышленности, а именно к составу твердой дозированной лекарственной формы препарата фурацилина с ускоренным высвобождением, предназначенного для приготовления раствора для наружного и местного применения.

Изобретение относится к новому соединению формулы (I) или его фармацевтически приемлемой соли, обладающими свойствами ингибитора LTA-4-гидролазы. Соединения могут найти применение для лечения заболевания и расстройства, которое облегчается посредством ингибирования активности LTA4-h.

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии, в частности к вакцинам ассоциированным против парагриппа-3, инфекционного ринотрахеита, вирусной диареи, рота- и коронавирусной инфекций крупного рогатого скота.
Группа изобретений относится к медицине, а именно к ветеринарии, и может быть использована для получения жидкой стабильной вакцины, содержащей живой вирус свиней. Жидкая стабильная вакцина содержит живой аттенуированный вирус репродуктивного и респираторного синдрома свиней (РРСС),10-30% (мас./об.) сахароспирта и 0,15-0,75 М аминокислоты, выбранной из группы, состоящей из аргинина, глутаминовой кислоты и глицина; где жидкая стабильная вакцина имеет pH 6,0-8,0.

Настоящее изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к получению противомикробных пептидов, и может быть использовано в медицине для лечения или предотвращения бактериальной и грибковой инфекции.
Изобретение относится к медицине и может быть использовано в хирургии и, в частности, в гнойной хирургии. Осуществляют вскрытие флегмоны мягких тканей и консервативное лечение гнойной раны.

Настоящее изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к способу получения стабильной наносуспензии. Представлен способ получения стабильной наносуспензии, содержащей по меньшей мере один природный материал, при этом способ включает стадии: предоставление по меньшей мере одного природного материала, в котором 100% объема частиц имеет размер частиц менее 320 мкм; диспергирование указанного по меньшей мере одного природного материала в растворителе; измельчение дисперсии таким образом, что 90% объема частиц имеет размер частиц менее 500 нм (D90<500 нм), причем стадия диспергирования или стадия измельчения включает добавление стабилизатора, причем по меньшей мере один природный материал выбран из группы, состоящей из растений, цианобактерий, водорослей и грибов, и природный материал не содержит женьшень.

Настоящее изобретение относится к области фаговой терапии и касается композиции и способа ее использования. Представленная композиция содержит: первый и второй очищенные штаммы бактериофага, причем каждый из указанных штаммов имеет геном, характеризующийся по меньшей мере 99%-ной идентичностью последовательности по отношению к нуклеотидной последовательности, выбранной из группы, состоящей из SEQ ID NO:1 и SEQ ID NO:2, демонстрирующие антибактериальную активность против Staphylococcus aureus; третий и четвертый очищенные штаммы бактериофага, имеющие геном, характеризующийся по меньшей мере 99%-ной идентичностью последовательности по отношению к нуклеотидным последовательностям SEQ ID NO:3 и SEQ ID NO:4 соответственно, демонстрирующие антибактериальную активность против Pseudomonas aeruginosa; и пятый очищенный штамм бактериофага, имеющий геном, характеризующийся по меньшей мере 99%-ной идентичностью последовательности по отношению к нуклеотидной последовательности SEQ ID NO:5, демонстрирующий антибактериальную активность против Acinetobacter baumannii.

Изобретение относится к биотехнологии. Изобретение представляет собой способ получения вакцины ассоциированной против колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции телят и поросят, включающий получение антигенов путем выделения из пораженных органов телят и поросят эпизоотических штаммов Escherichia coli, продуцирующих экзотоксины, гемолитических штаммов Streptococcus bovis и Enterococcus faecalis, выращивание которых проводят раздельно на питательном бульоне, при этом культуры Escherichia coli выращивают в течение 7 дней, а культуры Streptococcus bovis и Enterococcus faecalis в течение 24 ч до концентрации 5-6 млрд микробных клеток в 1 мл, после чего их инактивируют формалином до его конечной концентрации 0,3-0,4% в течение 14 суток, где после инактивации формалином антигенов осуществляют стерилизующую фильтрацию бульонной культуры Escherichia coli для получения бесклеточной культуральной среды, содержащей токсины Escherichia coli, которую смешивают с культуральными средами, содержащими клетки гемолитических штаммов Streptococcus bovis и Enterococcus faecalis, при следующем соотношении компонентов, мас.

Изобретение относится к ветеринарной медицине и может быть использовано для профилактики острых кишечных заболеваний телят. Способ профилактики острых кишечных заболеваний телят, включающий двукратную иммунизацию стельных коров за 30 дней до отела в дозе 5,0 мл/гол.

Изобретения касаются иммуногенной композиции (варианты) и способа получения композиции (варианты). Представленные композиции содержат конъюгаты капсулярных сахаридов Neisseria meningitides серогрупп А, С, Y, W135 и X со столбнячными анатоксинами или CRM197.

Изобретение относится к медицине, а именно к комбинированным вакцинам, содержащим в одном препарате несколько антигенов. Представленная комбинированная вакцина содержит в своем составе следующие компоненты: коклюшный, в качестве которого используется вакцина коклюшная бесклеточная очищенная 60-70 мкг, дифтерийный анатоксин - 15-20 Lf, столбнячный анатоксин 5-7,5 Lf, рекомбинантный поверхностный антиген вируса гепатита В (HBsAg) 5-10 мкг, вакцину Haemophilus influenzae тип b конъюгированную (Hib) 8-12 мкг, алюминия гидроксид (в пересчете на алюминий Al3+) от 0,3 до 0,55 мг.

Изобретение относится к области медицины и касается комбинированной вакцины для профилактики коклюша, дифтерии и столбняка. Представленная вакцина содержит коклюшный компонент, дифтерийный и столбнячный анатоксины, адсорбированные на алюминия гидроксиде.

Изобретение относится к области биотехнологии и микробиологии. Описана вакцина для профилактики сибирской язвы и некробактериоза животных.

Изобретение относится к области ветеринарной медицины и касается вакцины, ассоциированной против эшерихиоза, стрептококкоза и стафилококкоза крупного рогатого скота.

Представленная группа изобретений касается слитых белков, нуклеиновых кислот, кодирующих такие белки, экспрессирующей кассеты, обеспечивающей экспрессию нуклеиновой кислоты, вектора, включающего такую кассету, способа диагностики in vitro-боррелиоза, набора для такой диагностики, в которых используют упомянутые белки, а также вакцинной композиции для профилактики боррелиоза, включающей такие белки.

Изобретения относятся к химерным белкам, нуклеиновой кислоте, кодирующей такой белок, экспрессирующей кассете, обеспечивающей экспрессию нуклеиновой кислоты, вектора, включающего экспрессирующую кассету, способу диагностики и набора для диагностики.
Изобретение относится к области медицины, в частности к способу лечения анальной трещины. Способ лечения острой и хронической анальных трещин, включающий получение плазмы и её введение в трещину, при том в основание трещины вводят ботокс в дозе 10-30 ед., затем осуществляют забор венозной крови в пробирку, содержащую цитрат натрия, в количестве 18 мл, центрифугируют при 3600 об/мин в течение 16 мин, отбирают из полученной плазмы верхний слой в количестве 2,0 мл и его утилизируют, после чего оставшийся слой плазмы переносят в стерильную пробирку, в плазму добавляют раствор хлористого кальция из расчета 1,0 мл 10% раствора хлорида кальция на 10 мл аутоплазмы и вводят в основание трещины.

Группа изобретений относится к области медицины, а именно к иммунологии и ветеринарной медицине, и может быть использована для получения поливалентной вакцины против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота. Для этого вакцина изготовлена из культур Cl. perfringens типов А - №28, С - №3 и D - №91, которые выращивали на мясо-казеиновой среде в реакторе при +37°С в течение 4-16 часов в зависимости от времени токсинообразования конкретного штамма. Использовали полученные культуры, содержащие высокоактивные токсины с накоплением: Cl. perfringens тип D не менее 2000 ДЛМсм3, тип А не менее 100 ДЛМсм3 и тип С не менее 6000 ДЛМсм3 для белых мышей, в которые после проведенного культивирования в реактор с культурой добавили формалин с содержанием 37 формальдегида к объему культуральной жидкости, предварительно установив рН 7,2. Инактивацию проводили при +37°С в течение 7 суток, полученные культуры центрифугировали, надосадок использовали для получения антигена. Для осаждения антигенов в культуральную жидкость добавили 18 трехпроцентного стерильный раствора гидроокиси алюминия, тщательно перемешали и оставили при температуре +20°С на 2-5 суток до полного просветления надосадочной жидкости, затем декантировали около 70 надосадочной жидкости с получением инактивированной вакцины. Группа изобретений относится также к применению полученной поливалентной вакцины против анаэробной энтеротоксемии молодняка крупного рогатого скота. Использование данной группы изобретений позволяет повысить сохранность молодняка, защищая от заболевания инфекционной анаэробной энтеротоксемии крупного рогатого скота. 2 н. и 1 з.п. ф-лы, 2 табл.

Наверх