Способ получения ферментного препарата протеолитического действия

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к получению ферментного препарата, и в дальнейшем может быть использовано в производстве пищевых продуктов из слабосозревающих видов рыб и в производстве сыровяленой продукции. Способ включает измельчение сырья, выдерживание, отделение жидкой фракции фермента центрифугированием, консервирование хлористым натрием. В качестве сырья используют внутренности судака или леща, которые выдерживают при гидромодуле 1:1 в течение 5-5,5 ч при температуре 38-43°C. Внутренности судака выдерживают при рН 2,5, а внутренности леща при рН 9,5. В процессе выдерживания проводят ультразвуковую обработку в течение 4-5 мин с частотой 50 кГц, полученный жидкий ферментный препарат обезжиривают и консервируют. 3 ил.

 

Предлагаемое изобретение относится к области пищевой биотехнологии, в частности к способу получения ферментных препаратов, которые используются в пищевой промышленности для ускорения процесса созревания рыбной продукции.

Отходы от переработки рыб, богатые протеолитическими ферментами, являются доступным и дешевым сырьем для получения ферментных препаратов. Протеолитические ферменты, полученные из природного сырья, практически не вызывают побочных явлений при их применении, поэтому могут быть использованы в пищевой промышленности для улучшения качества производимых продуктов питания.

Известен способ получения ферментного препарата протеолитического действия из внутренностей свежих или мороженых рыб (Патент RU 1339917, МПК А23В 4/023, C12N 9/64, опубл. 15.07.1994 г.).

Способ предусматривает измельчение внутренностей (без половых продуктов) свежих или мороженых рыб (сельди иваси, сельди тихоокеанской, скумбрии и других созревающих рыб), консервирование путем добавления хлористого натрия в количестве 6-8% к массе сырья, выдерживание при естественном физиологическом значении рН при температуре 0-25°C в течение 2-3 ч (процесс автолиза) и центрифугирование для отделения жидкой фракции, представляющей собой ферментный препарат.

Недостатком данного способа является проведение автолиза без дополнительного внесения жидкой фракции, что снижает выход ферментного препарата. Применение в качестве консерванта хлористого натрия значительно ограничивает область применения ферментного препарата и снижает активность протеолитических ферментов, имеющих белковую природу. Отсутствие в технологии очистки жидкого ферментного препарата от липидов значительно ускоряет процесс окисления, а, следовательно, снижает качество готового продукта и уменьшает сроки его хранения.

Известен способ получения ферментного препарата протеолитического действия из внутренностей свежих или мороженых рыб без половых продуктов, включающий измельчение сырья, консервирование его хлористым натрием, выдерживание сырья при 25°C в течение 2-3 часов при естественном физиологическом значении рН и отделение жидкой фракции фермента центрифугированием (Патент RU 1339917, C12N 9/64, опубл. 15.07.1994 г.).

Однако протеолитическая активность полученного ферментного препарата низкая и составляет 3,5 ед/г. Кроме того, ферментный препарат содержит балластные белки, микрофлору и соли, т.к. способ не предусматривает стадию очистки.

Известен способ получения протеолитического ферментного препарата из внутренних органов рыб. Измельченное сырье подвергают автолизу в присутствии воды при гидромодуле 1:0,5 при рН 6,2±0,2 в течение 1-5 часов. После проведения автолиза жидкий автолизат, содержащий протеолитические ферменты, отделяют центрифугированием и подвергают очистке изопропиловым спиртом при гидромодуле 3:1 в течение 30-40 минут. Полученный в результате очистки жидкий ферментный препарат высушивают при температуре 150-180°C в течение 5-8 секунд (патент RU 2288951, C12N 9/64, опубл. 10.12.2006 г.).

Недостатками способа является использование изопропилового спирта, которое приводит к частичной потере ферментами каталитической активности, а высокая температура сушки приводит к частичной инактивации ферментов. В результате протеолитическая активность полученного препарата низкая и составляет не более 2,7 ед/г.

Наиболее близким аналогом заявляемого технического решения (прототипом) заявитель считает способ, включающий измельчение внутренних органов свежих или мороженых рыб океанического промысла (сельди иваси, сельди тихоокеанской, лососевых, скумбрии, мойвы, терпуга и других созревающих рыб), консервирование их хлористым натрием в количестве 6-8% к массе сырья, выдерживание гидролизуемой массы при естественном физиологическом значении рН при температуре 0-25°C в течение 2-3 часов и отделение жидкой фракции фермента центрифугированием. В условиях предлагаемой технологии сохраняется активность жидкого ферментного препарата в щелочной, нейтральной и кислой зонах рН. В результате проведенных исследований был получен ферментный препарат с повышенной протеолитической активностью за счет расширения рН-диапазона его действия (Патент RU 1339917, C12N 9/64, опубл. 15.07.1994 г.).

Данный способ осуществляет гидролиз внутренностей для выделения ферментного препарата без воды, что снижает выход ферментного препарата, не проводит очистку жидкого ферментного препарата от примесей, содержащихся в жидкой части и снижающих активность полученных протеолитических ферментов, а также его высушивание, что увеличивает затраты на расфасовку и упаковку препарата, его транспортировку и хранение.

Изобретение решает задачу повышения эффективности способа получения ферментного препарата, позволяя увеличить выход препарата и повысить его активность из внутренностей мороженых пресноводных рыб без половых продуктов, а именно, из судака и леща, имеющих в настоящее время промысловое значение в Калининградской области, за счет подбора опытным путем оптимальных параметров процесса автолиза и применения дополнительного средства его активации.

Для получения необходимого технического результата в способе получения протеолитического ферментного препарата из внутренностей мороженых рыб без половых продуктов, включающем измельчение сырья, выдерживание, отделение жидкой фракции фермента центрифугированием, консервирование хлористым натрием, предлагается в качестве сырья использовать внутренности судака или леща, которые предлагается выдерживать при гидромодуле 1:1 в течение 5-5,5 ч при температуре 38-43°C, причем внутренности судака выдерживать при рН 2,5, а внутренности леща - при рН 9,5, кроме того, в процессе выдерживания предлагается проводить ультразвуковую обработку в течение 4-5 мин с частотой 50 кГц, а полученный жидкий ферментный препарат обезжиривать и консервировать.

На прилагаемых к описанию графических материалах изображено:

на фиг. 1 - влияние ультразвуковой обработки сырья на протеолитическую активность ферментных препаратов;

на фиг. 2 - активность ферментных препаратов при различных температурах при термостатировании в течение 2 часов;

на фиг. 3 - активность (количество) ферментов, активных при различных уровнях рН (по методу Ансона), в ферментных препаратах из внутренних органов леща и судака.

На графиках приняты следующие обозначения:

1 - ферментный препарат из внутренностей леща;

2 - ферментный препарат из внутренностей судака.

Оптимальную температуру и термоустойчивость ферментного препарата из внутренних органов рыб определяли на основе фиксирования методом формольного титрования прироста азота свободных аминогрупп при воздействии фермента на субстрат - мышечную ткань салаки.

В фильтратах, освобожденных от белков при нагревании и последующем фильтровании образцов (контрольных и опытных), определяли азот концевых аминогрупп (амино-аммиачный азот) методом формольного титрования (по ГОСТ 7636-85).

Как видно из данных фиг. 2, ферментный препарат из внутренностей леща имеет наивысшую ферментативную активность при температуре 50°C, а ферментный препарат из внутренних органов судака - при температуре 35°C. Также можно заметить, что у ферментного препарата из внутренних органов судака активность остается постоянной при температурах от 35 до 55°C. Отсюда следует, что ферментный препарат из внутренних органов судака можно использовать в достаточно длинном ферментативном гидролизе сырья (протеины, кератин, коллаген).

Активность протеолитических ферментов в ферментных препаратах из внутренностей судака и леща при различных уровнях рН представлена на фиг 3.

Как показывает данный график (фиг. 3), активность протеолитических ферментов в препаратах проявляется при всех уровнях рН, но наибольшая активность для комплекса из судака при рН 2,5 (2,5 ед/г). Несколько ниже, но достаточно высокая активность в слабокислой зоне (при рН 5,5-2,0 ед/г). Это свидетельствует, что в продукте из внутренних органов судака преобладают кислые и слабокислые протеиназы. Присутствуют также нейтральные и щелочные протеиназы, т.е препарат комплексный.

У протеолитического комплекса из леща максимальная активность наоборот при рН 9,5 (3,3 ед/г). Активность эта выше, чем у препарата из судака при всех значениях рН, начиная с рН 6,4. В нейтральной зоне рН (рН 7,2) также фиксируется ферментативная активность комплекса из леща (1,5 ед/г), что равно максимальной активности кислых протеиназ судака.

Отсюда следует, что ферментный препарат из внутренних органов судака и леща можно будет использовать в производстве созревающей продукции (пресервов), так как пресервы в основном имеют рН 6,5 за исключением пресервов в маринадной заливке.

При сравнении с прототипом предлагаемые режимы получения ферментного препарата повышают его ферментативную активность с 2,5 ед./г при рН 6,0-7,0, указанную в прототипе, до 3,5-4,5 ед./г. При предлагаемых физиологических значениях рН 2,5 и 9,5, увеличивают выход ферментного препарата с 47% (указанный в прототипе) до 55,6% в данном способе из внутренних органов судака и до 56,7% из внутренних органов леща.

Определение протеолитической активности (ПА) ферментного препарата проводилось модифицированным методом Ансона (ГОСТ 20264.2-88). Данная методика основана на гидролизе казеината натрия исследуемым ферментным препаратом при температуре термостатирования 30°C в течение 10 мин. до образования пептидов и аминокислот при различных уровнях рН (2,5; 5,5; 7,2; 9,5) и с последующим их определением.

Эффективность процесса автолиза оценивалась по количеству гидролизованного белка (глубине гидролиза), выраженному в ед./г., и рассчитывалась по следующей формуле:

где:

D - оптическая плотность исследуемого раствора;

4 - отношение объемов реакционной смеси и раствора гомогената после добавления трихлоруксусной кислоты (ТХУ);

ТЭ - тирозиновый эквивалент, определяемый по градуировочному графику, мкмоль/см3;

10 - продолжительность гидролиза субстрата, мин;

m - масса гомогената, взятая на протеолиз (расчет ведется на 1 см3 раствора гомогената), мг;

1000 - переводной коэффициент полученных единиц на 1 г гомогената.

Примеры осуществления данного способа:

Пример 1. 1 кг внутренних органов судака после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 38°C в течение 5,5 часов с рН, 2,5±0,2 и без ультразвуковой обработки, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием при 2800-3000 оборотах в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - желтый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА), 1,8 ед./г; выход ФП (ферментного препарата), % - 40,1.

Пример 2. 1 кг внутренних органов судака после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 38°C в течение 5,5 часов с рН, 2,5±0,2 и при ультразвуковой обработке в течение 2 мин с частотой 50 кГц, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием при 2800-3000 оборотах в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - желтый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА), 2,7 ед./г; выход ФП (ферментного препарата), % - 47,3.

Пример 3. 1 кг внутренних органов судака после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 38°C в течение 5,5 часов с рН, 2,5±0,2 и при ультразвуковой обработке в течение 4 мин с частотой 50 кГц, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием при 2800-3000 оборотах в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - желтый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА), 3,1 ед./г (в зависимости от времени года); выход ФП (ферментного препарата), % - 55,6.

Пример 4. 1 кг внутренних органов судака после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 38°C в течение 5,5 часов с рН, 2,5±0,2 и при ультразвуковой обработке в течение 6 мин с частотой 50 кГц, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием при 2800-3000 оборотах в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - желтый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА), 3,7 ед./г (в зависимости от времени года); выход ФП (ферментного препарата), % - 58,5.

Пример 5. 1 кг внутренних органов судака после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 38°C в течение 5,5 часов с рН, 2,5±0,2 и при ультразвуковой обработке в течение 8 мин с частотой 50 кГц, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием при 2800-3000 оборотах в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - желтый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА), 2,5 ед./г (в зависимости от времени года); выход ФП (ферментного препарата), % - 48,8.

Пример 6. 1 кг внутренних органов леща после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 43°C в течение 5 часов с рН, 9,5±0,2 и без ультразвуковой обработки, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием в течение 2800-3000 оборотов в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - коричневый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА) - 1.6 ед./г; выход ФП (ферментного препарата), % - 39,7.

Пример 7. 1 кг внутренних органов леща после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 43°C в течение 5 часов с рН, 9,5±0,2 и при ультразвуковой обработке в течение 2 мин с частотой 50 кГц, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием в течение 2800-3000 оборотов в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - коричневый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА) - 2.6 ед./г; выход ФП (ферментного препарата), % - 45,1.

Пример 8. 1 кг внутренних органов леща после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 43°C в течение 5 часов с рН, 9,5±0,2 и при ультразвуковой обработке в течение 4 мин с частотой 50 кГц, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием в течение 2800-3000 оборотов в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - коричневый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА) - 3.2 ед./г; выход ФП (ферментного препарата), % - 50,8.

Пример 9. 1 кг внутренних органов леща после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 43°C в течение 5 часов с рН, 9,5±0,2 и при ультразвуковой обработке в течение 5 мин с частотой 50 кГц, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием в течение 2800-3000 оборотов в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - коричневый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА) - 3.5 ед./г; выход ФП (ферментного препарата), % - 56,7.

Пример 10. 1 кг внутренних органов леща после разделки и очистки от ожирков замораживали при температуре - 18°C. Затем сырье измельчали и подвергали автолизу в присутствии растворов слабых кислот при гидромодуле 1:1 при температуре 43°C в течение 5 часов с рН, 9,5±0,2 и при ультразвуковой обработке в течение 8 мин с частотой 50 кГц, потом отделяли непроферментированный остаток центрифугированием в течение 2800-3000 оборотов в минуту, далее жидкий автолизат подвергали очистке в сепараторе с частотой вращения барабана 6500 об/мин при температуре 30°C, в дальнейшем жидкий раствор ферментного препарата консервировали хлоридом натрия в соотношении 10% от массы сырья.

Характеристика продукта: однородный раствор, без посторонних включений, цвет светло - коричневый, запах рыбный, без порочащих признаков, протеолитическая активность (ПА) - 2.4 ед./г; выход ФП (ферментного препарата), % - 46,2.

Наиболее оптимальным способом получения ферментного препарата из внутренних органов судака и леща являются примеры 4 и 9, так как они имеют наибольшую ПА и достаточный выход ферментного препарата. В процессе увеличения ультразвуковой обработки ферментные комплексы разрушаются.

Способ получения протеолитического ферментного препарата из внутренностей без половых продуктов свежих или мороженых рыб, включающий измельчение сырья, выдерживание с буферными растворами, отделение жидкой фракции фермента центрифугированием, консервирование хлористым натрием, отличающийся тем, что в качестве сырья используют внутренности без половых продуктов свежих или мороженых судака или леща, которые выдерживают с буферными растворами при гидромодуле 1:1 в течение 5-5,5 ч при температуре 38-43°С, причем внутренности судака выдерживают при рН 2,5, а внутренности леща при рН 9,5, кроме того, в процессе выдерживания проводят ультразвуковую обработку в течение 4-5 мин с частотой 50 кГц мощностью 500 Вт, полученный жидкий ферментный препарат обрабатывают для отделения жира на сепараторе и консервируют.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к биотехнологии. Предложен способ продукции рекомбинантного химозина, предусматривающий совместную трансформацию рекомбинантной плазмиды GS115/pPICZα-Chym и рекомбинантной плазмиды GS115/pPIC9-HAC1 в штамм P.

Изобретение относится к биотехнологии. Предложен способ продукции рекомбинантного химозина, предусматривающий совместную трансформацию рекомбинантной плазмиды GS115/pPICZα-Chym и рекомбинантной плазмиды GS115/pPIC9-HAC1 в штамм P.

Настоящее изобретение относится к способу получения частиц рекомбинантного аденоассоциированного вирусного вектора (rAAV) с высоким уровнем выделения или с высоким титром. Способ включает: сбор клеток и/или супернатанта культуры клеток, содержащих частицы вектора rAAV; необязательную их концентрацию; лизис; фильтрацию; подвергание полученного осветленного лизата ионообменной хроматографии на колонке и необязательно концентрацию полученного элюата; смешивание элюата с колонки или концентрированного элюата с колонки с хлоридом цезия и подвергание полученной смеси градиентному ультрацентрифугированию для отделения частиц полноценного вектора rAAV от частиц пустого капсида AAV и других связанных с вектором AAV примесей; сбор частиц полноценного вектора rAAV, отделенных на предыдущей стадии, и получение состава частиц полноценного вектора rAAV в буфере с неионным поверхностно-активным веществом; подвергание частиц полноценного вектора rAAV, полученных на предыдущей стадии, обмену буфера посредством проточной фильтрации вдоль потока с последующей фильтрацией.

Настоящее изобретение относится к способу получения частиц рекомбинантного аденоассоциированного вирусного вектора (rAAV) с высоким уровнем выделения или с высоким титром. Способ включает: сбор клеток и/или супернатанта культуры клеток, содержащих частицы вектора rAAV; необязательную их концентрацию; лизис; фильтрацию; подвергание полученного осветленного лизата ионообменной хроматографии на колонке и необязательно концентрацию полученного элюата; смешивание элюата с колонки или концентрированного элюата с колонки с хлоридом цезия и подвергание полученной смеси градиентному ультрацентрифугированию для отделения частиц полноценного вектора rAAV от частиц пустого капсида AAV и других связанных с вектором AAV примесей; сбор частиц полноценного вектора rAAV, отделенных на предыдущей стадии, и получение состава частиц полноценного вектора rAAV в буфере с неионным поверхностно-активным веществом; подвергание частиц полноценного вектора rAAV, полученных на предыдущей стадии, обмену буфера посредством проточной фильтрации вдоль потока с последующей фильтрацией.

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к получению полипептида химозина, имеющего одну или более следующих замен: S164G, L12M, V51L, R61S, E83S, L105E, D144Q, Q162S, M165E, L180I, V203A, L221I, S226T, T239S, R242E, G251D или G251W, V260T, I263L, R266V, S273Y, Q288E, G289S, E294Q, Y307F, V309I, R316L и/или V317L; или одну или более следующих замен: V32L, I45V, N50K, G70D или G70N, D98V, N100Q, V136I, M142I, H146R, S154A, V155F, M157L, D158S, V198I, I200V, F223V, K231N, G244D, V248I, R254S, M256L, V259I, E262T, D267Q, D279E, T284S, N291Q, N292H, L295K и/или K321P относительно верблюжьего химозина.

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к получению полипептида химозина, имеющего одну или более следующих замен: S164G, L12M, V51L, R61S, E83S, L105E, D144Q, Q162S, M165E, L180I, V203A, L221I, S226T, T239S, R242E, G251D или G251W, V260T, I263L, R266V, S273Y, Q288E, G289S, E294Q, Y307F, V309I, R316L и/или V317L; или одну или более следующих замен: V32L, I45V, N50K, G70D или G70N, D98V, N100Q, V136I, M142I, H146R, S154A, V155F, M157L, D158S, V198I, I200V, F223V, K231N, G244D, V248I, R254S, M256L, V259I, E262T, D267Q, D279E, T284S, N291Q, N292H, L295K и/или K321P относительно верблюжьего химозина.

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к получению нового димера полипептида полифемузина из организма L. polyphemus.

Группа изобретений относится к биотехнологии. Предложены пептидное соединение в качестве специфического ингибитора цистеиновых катепсинов и его применения.

Группа изобретений относится к биотехнологии. Предложены пептидное соединение в качестве специфического ингибитора цистеиновых катепсинов и его применения.

Изобретение относится к способу активации трипсина. При осуществлении способа перемешивают 0,5-1,0%-ный раствор трипсина на 0,1 М фосфатном буферном растворе с рН 7,5-8,0 и температурой раствора +28-30°С в магнитной мешалке с подогревом в течение 15-20 мин с частотой вращения магнитного якоря 500-1500 об/мин.

Изобретение относится к биотехнологии. Способ получения продуктов ферментации из крахмалсодержащего материала, предусматривающий: (а) разжижение крахмалсодержащего материала с помощью смеси ферментов, содержащей 1-20 г термостабильной сериновой протеазы/метрическая тонна (MT) крахмалсодержащего материала, характеризующейся по меньшей мере 80% идентичностью последовательности с SEQ ID NO: 3; (b) осахаривание продукта из стадии (а); (c) ферментацию с помощью подходящего организма и (d) необязательно извлечение продукта, полученного на стадии (с).
Наверх