Способ накопления листериозного микроба (listeria monocytogenes)

Изобретение относится к микробиологии, а именно к санитарно-гигиеническому контролю за инфицированностью морской среды. Способ накопления листериозного микроба (Listeria monocytogenes) включает культивирование листерий в среде обогащения при температуре 18-20°С, причем среда обогащения содержит растворитель и питательную основу. В качестве растворителя используют стерильную морскую воду, а в качестве питательной основы минеральные соли в маточных растворах, мг/л дистиллированной воды, причем 1 литр среды обогащения состоит из 5 маточных растворов и стерильной морской воды. Изобретение обеспечивает более полное выявление и учет внеорганизменных популяций листерий, обитающих в морской воде. 1 ил.

 

Изобретение относится к микробиологии, а именно к санитарно-гигиеническому контролю за инфицированностью Listeria monocytogenes морской воды и морепродуктов.

Водная среда является одной из экологических ниш обитания L.monocytogenes. Начиная с конца 80-х годов и до настоящего времени в ряде стран Европы и Америки были отмечены многочисленные вспышки листериоза у людей, связанные с употреблением в пищу инфицированных морских продуктов. В связи с этим проблема изоляции штаммов листериозного микроба из морской среды является достаточно актуальной.

Очень низкая концентрация листерий по сравнению с количеством сопутствующей сапрофитной микрофлоры в исследуемых образцах затрудняет выделение возбудителя методом прямого высева на дифференциально-диагностическую среду. Для увеличения количества листериозного микроба в исследуемых образцах используют способ накопления культуры возбудителя на средах обогащения.

Известен способ накопления листериозного микроба при температуре 4-6°С в течение 14 суток на среде обогащения - фосфатно-солевом буфере (ФСБ) [Беленева И.А. Автореф. дис. канд. биол. наук. - Владивосток, 1996. - 197 с.]. Среду готовят на основе дистиллированной воды с добавлением NaH2PO4 безводн. - 2,3 г/л и Na2HPO4 безводн. - 12,5 г/л, NaCl - 5,8 г/л, рН 7,4. Т.к. накопление культуры проводится при температуре 4-6°С, этот способ получил название «холодовое» обогащение.

Принцип метода заключается в том, что при выдерживании исследуемых образцов, отобранных из теплокровного организма, на «холоде» происходит подавление сопутствующей мезофильной микрофлоры. В условиях отсутствия конкурентной микрофлоры листерии, обладающие психрофильными свойствами, активно размножаются, что приводит к увеличению концентрации возбудителя в исследуемом материале. Учитывая тот факт, что в образцах, отобранных из морской среды, сопутствующей микрофлорой являются психрофильные микроорганизмы, метод «холодового» обогащения является неэффективным.

Недостатками данного метода являются:

1. Отсутствие фактора, сдерживающего размножение сопутствующей психрофильной флоры.

2. Невозможность изолировать штаммы L.monocytogenes из морской среды в неизмененном (природном) виде при использовании неадаптированной среды обогащения, из-за известной изменчивости листериозного микроба.

3. Неполное выявление и учет внеорганизменных популяций L.monocytogenes из морской среды.

Задачей данного изобретения является более полное выявление и учет внеорганизменных популяций листерий, обитающих в морской среде, за счет сдерживания размножения сопутствующей психрофильной флоры и предотвращение изменчивости листериозного микроба.

Достигается это тем, что накопление листериозного микроба в исследуемых образцах, отобранных из морской среды, проводится при температуре 18-20°С в течение 14 суток на среде обогащения для L.monocytogenes, включающей в себя растворитель и питательную основу. В качестве растворителя используют стерильную морскую воду, а в качестве питательной основы - минеральные соли при следующем соотношении компонентов в маточных растворах, мг/л дистиллированной воды:

Раствор №1:

NaH2PO4 - 10

NaNO3 - 150

Раствор №2:

Na2SiO3×9Н2О - 30-60

Раствор №3:

CuSO4×5H2O - 0,0196

ZnSO4×7H2O - 0,044

CoCl2×6Н2O - 0,020

MnCl2×4H2O - 0,360

Na2MoO4×2H2O - 0,0126

Раствор №4:

Na2EDTA - 6,8

Раствор №5:

FeCl3×6Н2O - 5,3

Причем 1 литр среды обогащения состоит из маточных растворов в следующем количестве:

Раствор №1 - 0,5-2 мл

Раствор №2 - 0,5-2 мл

Раствор №3 - 0,5-2 мл

Раствор №4 - 0,5-2 мл

Раствор №5 - 0,5-2 мл,

Остальное - стерильная морская вода

Существенными признаками предложения следует считать накопление листериозного микроба при температуре 18-20°С, что обеспечивает подавление сопутствующей психрофильной микрофлоры в исследуемых образцах; применение среды обогащения, отличной от известной по качественному и количественному составу.

Выход за пределы заявленных значений компонентов среды приводит либо к перерасходу используемых реактивов, либо к снижению ростовых показателей среды и появлению нежелательной изменчивости листериозного микроба.

Пределы содержания минеральных веществ и витаминов в питательной основе предлагаемой среды обогащения являются оптимальными и обусловливают относительную сбалансированность стоимости среды с ее ростовыми характеристиками.

Использование морской воды в качестве растворителя позволяет избежать изменения биологических свойств выделяемых штаммов, изначально обитающих в морской среде, и увеличивает вероятность обнаружения листериозного микроба в исследуемых образцах.

Способ осуществляют следующим образом. В среду обогащения вносят исследуемый материал (морская вода, ил, содержимое кишечника гидробионтов и т.д.) в соотношении 1:1. Инокулированную среду инкубируют при температуре 18-20°С в течение 14 суток. После чего исследуемый материал высевают на плотные дифференциально-диагностические среды для L.monocytogenes.

Для приготовления среды обогащения сначала готовят маточные растворы, мг/л дистиллированной воды:

Раствор №1:

NaH2PO4 - 10

NaNO3 - 150

Раствор №2:

Na2SiO3×9H2O - 30-60

Раствор №3:

CuSO4×5H2O - 0,0196

ZnSO4×7H2O - 0,044

CoCl2×6Н2O - 0,020

MnCl2×4H2O - 0,360

Na2MoO4×2Н2O - 0,0126

Раствор №4:

Na2EDTA - 6,8

Раствор №5:

FeCl3×6Н2O - 5,3

Перед внесением в среду обогащения маточные растворы стерилизуют давлением при 1-1,5 атм. Морская вода фильтруется через бумажно-ватный фильтр и после пастеризуется при температуре 70-75°С на водяной бане в течение 20 минут трехкратно с промежутком 24 часа.

К маточным растворам в следующих количествах:

Раствор №1 - 0,5-2 мл

Раствор №2 - 0,5-2 мл

Раствор №3 - 0,5-2 мл

Раствор №4 - 0,5-2 мл

Раствор №5 - 0,5-2 мл

добавляют стерильную морскую воду до 1 литра.

Пример

Исследуемый материал (морская вода, ил, содержимое кишечника гидробионтов) вносят в пробирки со средой обогащения в соотношении 1:1 и инкубируют при температуре 18-20°С в течение 14 суток. Затем содержимое пробирок интенсивно встряхивают и производят посев 0,1 мл суспензии на плотную дифференциально-диагностическую среду для L.monocytogenes. Среда обогащения для L.monocytogenes включает в себя следующие компоненты:

Раствор №1 - 1 млСостав раствора №1 мг/л дистиллированной воды:
NaH2PO4 - 10
NaNO3 - 150

Раствор №2 - 1 млСостав раствора №2, мг/л дистиллированной воды:
Na2SiO3×9H2O - 30-60
Раствор №3 - 1 млСостав раствора №3, мг/л дистиллированной воды:
CuSO4×5H2O - 0,0196
ZnSO4×7H2O - 0,044
CoCl2×6Н2О - 0,020
MnCl2×4Н2О - 0,360
Na2MoO4×2Н2О - 0,0126
Раствор №4 - 1 млСостав раствора №4, мг/л дистиллированной воды:
Na2EDTA - 6,8
Раствор №5 - 1 млСостав раствора №5, мг/л дистиллированной воды:
FeCl3×6Н2O - 5,3
Стерильная морская вода - до одного литра.

Процесс размножения L.monocytogenes (штамм 10 CN, 1/2а серотипа) в заявляемой и известной среде обогащения (ФСБ) представлен на чертеже. За 14 суток культивирования в заявляемой среде обогащения при температуре 18-20°С концентрация L.monocytogenes (штамм 10 CN) увеличилась на 3,6 lg (чертеж, кривая 1). При культивировании на фосфатно-солевом буфере (прототип) за тот же период времени при температуре 4-6°С концентрация листериозного микроба увеличилась на 3,3 lg (чертеж, кривая 2).

Приведенный пример показывает, что предлагаемая среда обогащения по своим ростовым свойствам практически не уступает прототипу. Преимущества предлагаемой среды перед известной, выражаются в возможности изоляции штаммов листериозного микроба в неизмененном (природном) виде, а также способности более полного выявления и учета внеорганизменных популяций листерий, обитающих в морской среде.

Способ накопления листериозного микроба (Listeria monocytogenes), включающий культивирование листерий в среде обогащения, отличающийся тем, что накопление бактерий проводят при температуре 18-20°С, а среда обогащения содержит растворитель и питательную основу, причем в качестве растворителя используют стерильную морскую воду, а в качестве питательной основы - минеральные соли, и при следующем соотношении компонентов в маточных растворах, мг/л дистиллированной воды:

Раствор №1:

NaH2PO4 - 10

NaNO3 - 150

Раствор №2:

Na2SiO3·9H2O - 30-60

Раствор №3:

CuSO4·5H2O - 0,0196

ZnSO4·7H2O - 0,044

CoCl2·6Н2O - 0,020

MnCl2·4H2O - 0,360

Na2MoO4·2H2O - 0,0126

Раствор №4:

Na2EDTA - 6,8

Раствор №5:

FeCl3·6Н2O - 5,3,

причем 1 л среды обогащения состоит из маточных растворов в следующем количестве:

Раствор №1 - 0,5-2 мл

Раствор №2 - 0,5-2 мл

Раствор №3 - 0,5-2 мл

Раствор №4 - 0,5-2 мл

Раствор №5 - 0,5-2 мл

Остальное - стерильная морская вода.



 

Похожие патенты:
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к микробиологии и может быть использовано при индивидуальном подборе лекарственных препаратов для лечения туберкулеза.
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к клинической микробиологии, и может быть использовано для бактериологической диагностики бруцеллеза. .

Изобретение относится к микробиологии и может найти применение в биотехнологии. .
Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано для культивирования Ureaplasma urealyticum и диагностики урогенитальных уреаплазозов путем выделения уреаплаз из клинического материала.

Изобретение относится к медицине, а именно к медицинской микробиологии, и может быть использовано для выделения гемокультур при сепсисе и бактериемии. .

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к способам индикации биоцидной активности перекисных дезинфицирующих растворов к токсинам микробного происхождения и может быть использовано для индикации биоцидной активности перекисных дезинфицирующих растворов к ботулиническому нейротоксину.

Изобретение относится к биотехнологии и медицинской микробиологии, может быть использовано в производстве питательных сред для выделения иерсиний с клиническими и эпидемиологическими целями.

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к методам санитарно-микробиологического контроля производства продуктов животного происхождения, и может быть использовано в молочной и мясоперерабатывающей отраслях промышленности.
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано в микробиологии, в частности, для диагностики иерсиниоза и псевдотуберкулеза. .

Изобретение относится к биотехнологии и касается получения, концентрирования цитотоксических веществ, в частности эпотилонов, и их использования для приготовления фармацевтических композиций, пригодных для лечения пролиферативных заболеваний.
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к производству бактериальных препаратов и для силосования кормов. .
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к микробиологии и может быть использовано при индивидуальном подборе лекарственных препаратов для лечения туберкулеза.
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способам получения биологически активных добавок для лечения и профилактики желудочно-кишечных заболеваний различной этиологии для всех видов сельскохозяйственных животных и птиц.
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к производству составов для культивирования молочнокислых бактерий, используемых для приготовления заквасок для силосования кормов.
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к клинической микробиологии, и может быть использовано для бактериологической диагностики бруцеллеза. .

Изобретение относится к биотехнологии. .
Изобретение относится к ветеринарной микробиологии
Наверх