Способ получения оздоровленного посадочного материала гладиолуса гибридного (gladiolus hybridus hort.)

Изобретение относится к области биотехнологии. Клубнепочки гладиолуса гибридного подвергают двухэтапной стерилизации. Клубнепочки помещают в раствор нейтрального детергента и выдерживают 4 мин, периодически помешивают. Затем клубнепочки промывают холодной проточной водой в течение 5 минут. В ламинарном боксе заливают 0,02 – 0,06 % раствором гипохлорита натрия и выдерживают 8 мин при периодическом помешивании и после помещают на 10 секунд в 96% этанол. Промывают 3 раза по 3 минуты стерильной бидистиллированной водой. В качестве экспланта используют извлеченную верхушечную почку возобновления, который помещают на стерильную агаризованную модифицированную питательную среду Мурасиге-Скуга (МС) с добавлением НУК 2 мг/л и 6- БАП 2 мг/л в Чашки Петри. Чашки Петри держат в помещении с заданными световыми (16ч – день; 8 ч – ночь) и температурными (21-22°С) условиями. Каждые 30 дней экспланты помещают на вышеописанную свежую питательную среду МС. На 3-4 раз переносят на питательную среду без добавления регуляторов роста 6-БАП и НУК. В течение 2-3 месяцев происходит формирование зачатков растений-регенерантов, а в последующем растений-регенерантов с образованием у них клубнелуковичек. Изобретение позволяет сократить получение клубнелуковиц гибридного гладиолуса до 5-7 месяцев. 1 табл.

 

Изобретение относится к области растениеводства, а именно, к цветоводству, которое может быть использовано для получения в короткие сроки оздоровленного посадочного материала гладиолуса гибридного в искусственных условиях.

Гладиолус гибридный имеет продолжительный вегетационный период, зависящий от сорта, который от посадки до цветения клубнелуковицы составляет порядка 60-100 дней, помимо этого примерно 30-40 дней требуется для формирования его подземной части – клубнелуковицы, которая необходима для выращивания растения в следующем вегетационном периоде для получения срезочного цветка (Былов В.Н. Основы сравнительной сортооценки декоративных растений // Интродукция и селекция цветочно-декоративных растений. - М.: Наука, 1978. - С. 7-31; Седельникова, Л.Л. Биологические особенности Gladiolus hybridus в связи с адаптацией в Сибирском регионе / Л.Л. Седельникова, И.Г. Воробьева // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология. – 2020. – Т. 20. – № 4. – С. 417-426. – DOI 10.18500/1816-9775-2020-20-4-417-426).

Следует отметить, что посадочный материал гладиолуса может находиться в достаточно длительном периоде «покоя», при условии выполнения заданных параметров (температура +2…+5°С, влажность воздуха 60-70%), которые необходимы для их правильного хранения (Кузичев О.Б. Изучение влияния длительности хранения клубнепочек на рост и развитие растений гладиолуса гибридного (Gladiolus hybridus hort.) / О. Б. Кузичев // Инновационные подходы к разработке технологий производства, хранения и переработки продукции растениеводческого кластера: материалы Всероссийской научно-практической конференции, Мичуринск, 13 февраля 2020 года. – Мичуринск: Мичуринский государственный аграрный университет, 2020. – С. 75-78).

Нарушение данных условий приводит к ухудшению качества клубнелуковиц и, следовательно, нецелесообразности выращивания для получения цветка. Техника получения оздоровленного посадочного материала гладиолуса позволяет в короткие сроки (5-7 месяцев) получить значительное количество полностью здоровых клубнелуковичек гладиолуса гибридного из небольшого количества посаженных растительных эксплантов. Кроме этого полученные данным способом клубнелуковички, после высушивания, которое длится порядка 1 месяца, можно сразу помещать в заданные температурные условия для создания периода «покоя» клубнелуковиц, а позже использовать посадочный материал по мере необходимости.

На настоящее время есть ряд изобретений, которые позволяют размножать гладиолус гибридный в условиях in vitro используя методики, применяемые при микроклональном размножении.

Известен «Способ размножения гладиолуса in vitro» (RU № 2286053, МПК A01H4/00, A01H5/00, опубликовано 27.10.2006), согласно которому в качестве экспланта были использованы пазушные и апикальные почки гладиолуса, применяемые регуляторы роста - 0,5-1,5 мг/л 6-бензиламинопурин и 0,5-1,5 мг/л α-нафтилуксусная кислота, были такие же как и в заявляемом изобретении, но в более низких концентрациях. Однако в описании изобретения нет информации, сколько времени потребовалось для формирования полноценных клубнелуковиц гладиолуса. Кроме того, из описания следует, что для формирования клубнелуковиц необходимо переносить растения с агаризованной питательной среды в почву и выращивать растения обычным способом.

Известен также «Способ микроразмножения гладиолуса» (SU № 1695854, МПК A01H4/00, опубликовано 07.12.1991). Одной из целей которого являлось изучение влияния питательной среды на выход живых растений в процессе хранения, при этом фиксировался невысокий коэффициент размножения.

Наиболее близким аналогом, принятым за прототип, является «Способ микроклонального размножения гладиолуса» (RU № 2180165, МПК A01H4/00, опубликовано 10.03.2002). В качестве первичного экспланта использовали вырезанную апикальную почку, с прилегающими к ней участками ткани. Среди достоинств этого способа можно отметить то, что при использовании в среде культивирования сахарозы в концентрации 6-10% можно получить клубнелуковицы диаметром 18-23 мм. Среди недостатков этого изобретения можно указать следующие: длительная процедура стерилизации растительного материала; многоэтапный процесс получения клубнелуковиц гладиолуса гибридного, который состоит из нескольких смен состава и состояния питательной среды; требуется доращивание растений-регенерантов в горшках с субстратом.

Задачей заявляемого изобретения является создание технологии получения оздоровленного посадочного материала гладиолуса гибридного (Gladiolus hybridus Hort.).

Техническим результатом изобретения является получение оздоровленных клубнелуковиц гладиолуса, не требующее многоэтапности процесса выращивания и осуществляемое в короткие сроки в искусственных условиях.

Для достижения указанного технического результата клубнепочки сортосмеси гладиолуса гибридного подвергают двухэтапной стерилизации. Первоначально их заливают раствором нейтрального детергента (бидистиллированная вода, 100 мл; агент Tween 20, 40 мкл) на 4 мин, в течение этого времени их периодически помешивают. Затем клубнепочки промывают холодной проточной водой в течение 5 минут. После заливают 0,02 – 0,06 % раствором гипохлорита натрия на 8 мин, периодически перемешивают. Далее растительные объекты помещают на 10 секунд в 96% этанол. После указанных процедур клубнепочки промывают 3 раза по 3 минуты стерильной бидистиллированной водой. Стерильными инструментами извлекают верхушечную почку возобновления, которую используют в качестве экспланта. Экспланты помещают на предварительно разлитую и остывшую стерильную агаризованную модифицированную питательную среду Мурасиге-Скуга (МС) с регуляторами роста. После этого экспланты помещают в помещение со следующими световыми и температурными условиями. Периоды освещения: световой – с 8.00 до 24.00 (16 часов); темновой – с 24.00 до 8.00 (8 часов); температура воздуха 21-22°С. Каждые 30 дней экспланты переносят на свежую питательную среду МС. Через определенное время (5-7 пассажей), которое зависит от добавляемых регуляторов роста, происходит формирование регенерантов-растений из каллуса, а позже и клубнелуковичек гладиолуса гибридного.

Отличительные признаки, которые были выявлены, позволили сделать вывод о соответствии предлагаемого технологического решения критерию «новизна».

В процессе поиска и сравнительного анализа не было выявлено технических решений, которые бы характеризовались идентичной или аналогичной совокупностью существенных признаков с предлагаемым решением, а также из уровня техники не известно влияние отличительных признаков заявляемого решения на достигаемый технический результат, что позволяет сделать вывод о соответствии заявляемого изобретения условию патентоспособности «изобретательский уровень».

Предложенный способ позволяет получить клубнелуковицы гибридного гладиолуса в течение 5-7 месяцев.

Способ иллюстрируется нижеследующими примерами.

Пример 1. Для достижения указанного технического результата клубнепочки сортосмеси гладиолуса гибридного подвергают двухэтапной стерилизации. Первый этап проводят в нестерильных условиях. Очищенные от внешних защитных оболочек клубнепочки диаметром 3-10 мм помещают по 5-7 штук в стерильные колбы объемом 50 мл. Предварительно герметично закрытые колбы стерилизуют в сухожаровом шкафу, 150°С 2-3 часа. После этого клубнепочки заливают раствором нейтрального детергента (бидистиллированная вода, 100 мл; агент Tween 20, 40 мкл) и выдерживают 4 мин, периодически помешивают. Затем клубнепочки промывают холодной проточной водой в течение 5 минут. 2 этап проводят в стерильных условиях. В ламинарном боксе выполняют замену ранее использованных колб на другие стерильные колбы объемом 50 мл. Клубнепочки заливают 0,02 – 0,06 % раствором гипохлорита натрия и выдерживают 8 мин, периодически помешивают. Далее их помещают на 10 секунд в 96% этанол. После этого клубнепочки промывают 3 раза по 3 минуты стерильной бидистиллированной водой. Далее в стерильных условиях клубнепочки помещают на стерильную фильтровальную бумагу, и используют металлический пинцет и скальпель для фиксации и извлечения верхушечной почки возобновления, которую используют в качестве экспланта. Данный эксплант помещают на стерильную агаризованную модифицированную питательную среду Мурасиге-Скуга (МС) следующего состава: ½ состава макро- и микросолей; FeSO4 · 7H2O – 27,8 мг/л и Na2ЭДТА – 37,3 мг/л; тиамин 0,6 мг/л; пиридоксин 0,3 мг/л; никотиновая кислота 0,3 мг/л; инозит 60 мг/л; пиклорам – 3 мг/л; сахароза 3,6%; агар 0,5-0,6%, pH=5,8±0.1. Перед использованием данную МС среду автоклавируют при 0,9 атм. в течение 30 минут и хранят в темном месте при комнатной температуре (26±2°С) в течение 1-7 дней, либо более длительно в холодильнике при температуре 4°С в течение 1-3 недель. Первоначально и после первой пересадки (пассажа) в качестве емкостей для эксплантов используют стандартные стеклянные круглые Чашки Петри (диаметром 90 мм). В последующем, при втором и последующих пассажах, используют пластиковые контейнеры с крышками (500 мл) из полипропилена. Чашки Петри перед использованием стерилизуют в сухожаровом шкафу 150°С 2-3 часа. Контейнеры перед использованием оставляют в открытом состоянии в ламинарном боксе под УФ на 40 минут. В день эксперимента агаризованную МС среду разогревают в микроволной печи вплоть до кипения и разливают по 30 мл в Чашки Петри, либо по 50 мл в контейнеры в стерильных условиях в стерильные емкости для выращивания. В контейнеры питательную среду МС заливают температурой 45°С - 60°С. После застывания и охлаждения до комнатной температуры питательной среды МС на поверхность помещают растительные экспланты, Чашки Петри заматывают в два ряда тонкой пленкой (парафильм). После этого Чашки Петри с растительными эксплантами помещают в помещение с заданными условиями. Периоды освещения: световой – с 8.00 до 24.00 (16 часов), люминесцентные лампы с интенсивностью освещения 2-5 тыс Люкс; темновой – с 24.00 до 8.00 (8 часов). Температурный режим: температура воздуха 21-22°С, которая поддерживалась с помощью кондиционеров. Каждые 30 дней экспланты помещают на вышеописанную свежую питательную среду МС. На 3-4 пассаж каллус переносят на питательную среду без добавления регулятора роста пиклорама. В дальнейшем происходит формирование зачатков растений-регенерантов, а в последующем растений-регенерантов с образованием у них клубнелуковичек.

Пример 2. Способ осуществляется аналогично примеру 1, различие состоит в составе питательной среды МС, в качестве регулятора роста добавляют альфа-нафтилуксусную кислоту 2 мг/л (НУК).

Пример 3. Способ осуществляется аналогично примеру 1, различие состоит в составе питательной среды МС, в качестве регулятора роста добавляют НУК 2 мг/л и 6-бензиламинопурин (6-БАП) 2 мг/л. На 3-4 пассаж каллус переносят на питательную среду без добавления регуляторов роста 6-БАП и НУК. В течение 2-3 пассажей сначала происходит формирование зачатков растений-регенерантов, и в последующем растений-регенерантов с образованием у них клубнелуковичек.

Использование данного способа позволяет достигать следующих результатов. Средний процент выхода стерильных эксплантов составляет 82,13%. Максимальный процент выхода каллуса фиксируется на среде с добавлением НУК 2 мг/л (Табл 1). Максимальное формирование клубнелуковичек было на питательной среде МС с добавлением пиклорама (3 мг/л), однако сохранность была невысокой, всего порядка 23%. Более высокая сохранность была у клубнелуковичек выращиваемых на питательных средах МС с добавлением НУК (2 мг/л), а также НУК (2 мг/л) совместно с 6-БАП (2 мг/л). Клубнелуковицы с максимальным диаметром (0,76 см) образовывались на среде с НУК (2 мг/л) и 6-БАП (2 мг/л).

Таблица 1. Процент выхода каллуса, количество сформированных клубнелуковичек гладиолуса гибридного, сохранность клубнелуковичек и их диаметр после периода покоя при добавлении в ½ МС: а) пиклорама 3 мг/л; б) НУК 2 мг/л; в) НУК 2 мг/л и 6-БАП 2 мг/л. При подсчете процента выхода каллуса за 100 % принято количество помещенных на питательную среду МС эксплантов (5-7). Период покоя - 5 месяцев, температура+4°С.

½ МС
питательной
среды
+Пиклорам
3 мг/л
+НУК
2 мг/л
+НУК
2 мг/л
6-БАП
2 мг/л
Процент
выхода
каллуса,%
42 63 50
Количество
сформированных
клубнелуковичек, шт.
73 31 17
Сохранность
клубнелуковичек
после периода покоя, шт.
17 15 7
Диаметр
клубнелуковичек
после периода покоя, см.
0,36 0,34 0,76

Применение способа получения оздоровленного посадочного материала гладиолуса гибридного (Gladiolus hybridus Hort.) в качестве способа для размножения клубнелуковиц гладиолуса, позволяет получить в короткие сроки оздоровленный материал для выращивания растений в открытом грунте с перспективой получения срезочного цветка.

Способ получения оздоровленного посадочного материала гладиолуса гибридного (Gladiolus hybridus Hort.), включающий стерилизацию клубнепочек гладиолуса раствором гипохлорита натрия и этанола, помещение клубнепочек на питательную среду, содержащую 1/2 концентраций макро- и микросолей по Мурасиге-Скуга, альфа-нафтилуксусную кислоту (НУК), 6-бензиламинопурин (6-БАП), сахарозу и агар, отличающийся тем, что клубнепочки подвергают двухэтапной стерилизации, причем на первом этапе стерилизацию проводят в нестерильных условиях, для этого очищенные от внешних защитных оболочек клубнепочки диаметром 3-10 мм помещают по 5-7 штук в стерильные колбы объемом 50 мл, предварительно герметично закрытые колбы стерилизуют в сухожаровом шкафу при температуре 150°С в течение 2-3 часов, после этого клубнепочки заливают раствором нейтрального детергента, в качестве которого используются бидистиллированная вода в количестве 100 мл и агент Tween 20 в количестве 40 мкл, и выдерживают в течение 4 мин, периодически помешивая, затем клубнепочки промывают холодной проточной водой в течение 5 минут, второй этап проводят в стерильных условиях, в ламинарном боксе выполняют замену ранее использованных колб на другие стерильные колбы объемом 50 мл, клубнепочки заливают 0,02 – 0,06 % раствором гипохлорита натрия и выдерживают в течение 8 мин, периодически помешивая, далее клубнепочки помещают на 10 секунд в 96% этанол, после этого клубнепочки промывают 3 раза по 3 минуты стерильной бидистиллированной водой, далее в стерильных условиях клубнепочки помещают на стерильную фильтровальную бумагу, и с помощью металлического пинцета и скальпеля осуществляют фиксацию и извлечение верхушечной почки возобновления, которую используют в качестве экспланта, данный эксплант помещают на стерильную агаризованную модифицированную питательную среду Мурасиге-Скуга (МС), содержащую 1/2 состава макро- и микросолей, FeSO4 · 7 H2O – 27,8 мг/л и Na2ЭДТА – 37,3 мг/л, тиамин 0,6 мг/л, пиридоксин 0,3 мг/л, никотиновую кислоту 0,3 мг/л, инозит 60 мг/л, НУК 2 мг/л и 6-БАП 2 мг/л, сахарозу 3,6%; агар 0,5-0,6% при pH=5,8±0,1, перед использованием данную питательную среду автоклавируют при 0,9 атм. в течение 30 минут и хранят в темном месте при температуре 26±2°С в течение 1-7 дней, либо в холодильнике при температуре 4°С в течение 1-3 недель, первоначально и после первой пересадки (пассажа) в качестве емкостей для эксплантов используют стандартные стеклянные круглые Чашки Петри диаметром 90 мм, в последующем, при втором и последующих пассажах, используют пластиковые контейнеры емкостью 500 мл с крышками из полипропилена, Чашки Петри перед использованием стерилизуют в сухожаровом шкафу при температуре 150°С в течение 2-3 часов, контейнеры перед использованием оставляют в открытом состоянии в ламинарном боксе под ультрафиолетом на 40 минут, затем агаризованную питательную среду разогревают в микроволной печи вплоть до кипения и разливают по 30 мл в Чашки Петри, либо по 50 мл в контейнеры в стерильных условиях в стерильные емкости для выращивания, в контейнеры питательную среду заливают температурой 45°С - 60°С, после застывания и охлаждения до комнатной температуры питательной среды на поверхность помещают растительные экспланты, Чашки Петри заматывают в два ряда тонкой пленкой (парафильм), после этого Чашки Петри с растительными эксплантами помещают в помещение с заданными условиями, периоды освещения: световой – с 8.00 до 24.00 (16 часов), люминесцентные лампы с интенсивностью освещения 2-5 тыс Люкс; темновой – с 24.00 до 8.00 (8 часов); температурный режим: температура воздуха 21-22°С, которая поддерживается с помощью кондиционеров, каждые 30 дней экспланты помещают на вышеописанную свежую питательную среду, на 3-4 пассаж каллус переносят на питательную среду без добавления регуляторов роста НУК и 6-БАП.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ формирования коллекции и длительного депонирования винограда in vitro, относится к сельскому хозяйству, в частности к виноградарству, и может быть использован для длительного хранения ценных и редких сортов винограда в коллекции in vitro.

Изобретение относится к области биотехнологии. Сущность изобретения заключается в том, что у укорененных микрорастений в период с начала августа по февраль месяц, с периодичностью 1-1,5 месяца полностью удаляют сформировавшиеся и начинающие отмирать корни и листья, а их в виде вегетирующих почек высаживают повторно и дифференцированно на питательные среды, содержащие ауксин, учитывая при этом диаметр почки.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ размножения растений бельвалии сарматской В.

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к получению микроклубней от размножаемых и культивируемых в условиях in vitro растений картофеля. Изобретение представляет собой способ стимулирования образования микроклубней картофеля в условиях in vitro, характеризующийся тем, что микрочеренки после высадки на питательную среду выдерживают в темноте при +4…+5°С в течение 5 суток для максимальной синхронизации митотических делений, а затем культивируют в течение 10 суток при +24…+25°С и воздействии искусственным светом с интенсивностью спектральных линий 70-310 мВт/м2 в диапазоне длин волн 640-670 нм при уровне освещенности 2400-2600 лк, после чего данный цикл повторяют еще дважды.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ сохранения микрорастений винограда в условиях in vitro, включающий культивирование растений на безгормональной среде в разных режимах и в разных физиологических состояниях, перевод растений в состояние глубокого покоя моделируется на основе изменения показателей двух факторов: фотопериода и температуры, что позволяет в дальнейшем успешно сохранять растения в условиях низких положительных температур (2-4°С) в темноте без пересадок в течение одного-двух лет.

Изобретение относится к области биотехнологии. Предлагается питательная среда, содержащая (мг/л): неорганические соединения из группы: аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, кальций хлористый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, борная кислота, калий йодистый, а также комплексы марганца (II), цинка(II), молибдена (VI), меди(П), кобальта(П) с оксиэтилидендифосфоновой кислотой (ОЭДФ), комплекс железа (III) с трилоном Б, и органическую составляющую, включающую миоинозит, тиамин гидрохлорид, пиродоксин гидрохлорид, никотинамид, индолилмасляную кислоту, при следующем весовом соотношении компонентов смеси, мг/л: аммоний азотнокислый 825.0, калий азотнокислый 950.0, кальций хлористый 220.0, магний сернокислый 185.0, калий фосфорнокислый 85.0, борную кислоту 6.2, калий йодистый 0.83, комплексы микроэлементов с оксиэтилидендифосфоновой кислотой: железный(III) 24.5- 27.6, марганцевый 26.4-29.3, цинковый 8.2- 9.1, молибденовокислый 0.33-0.37, медный 0.027-0.030, кобальтовый 0.029 -0.032, а также органическую составляющую, включающую миоинозит 0.5, тиамин гидрохлорид 0.5, пиродоксин гидрохлорид 0.5, индолилмасляную кислоту 0.2, сахарозу 15000, агар-агар 6000 и остальное - вода до 1 л.

Изобретение относится к области биотехнологии. В способе стерильные микроклубни картофеля в стерильных условиях разрезают на две равные части, помещают в жидкую среду MS (Мурасиге-Скуга) в стерильную трубчатую насадку, обеспечивающую объемное облучение, и обрабатывают ультразвуком мощностью 2,7-8,0 Вт/см2 в течение 10-120 секунд.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ получения растений-регенерантов Brassica oleracea L.

Настоящее изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ повышения эффективности клонального микроразмножения вечнозеленых сортов Рододендрона, включающий культивирование одноузловых эксплантов, представляющих собой части микропобегов, содержащие одну пазушную почку, на питательной среде, дополненной 0,25 мкМ ТДЗ, в течение 8 недель, с последующим культивированием 6 недель на безгормональной среде.

Изобретение относится к области биотехнологии растений, предполагает использование метода культуры растительной ткани для микроклонального размножения лекарственного вида Stephania glabra. Способ осуществляют следующим образом: из первичного экспланта на жидкой питательной среде культивируют гетерогенную культуру, после чего полученную гетерогенную клеточную культуру культивируют на питательной среде для образования соматических зародышей с последующим формированием из полученных соматических зародышей микрорастений на питательной безгормональной твердой среде.
Наверх