Способ стимуляции прорастания микроклубней картофеля in vitro с помощью ультразвука без нарушения стерильности

Изобретение относится к области биотехнологии. В способе стерильные микроклубни картофеля в стерильных условиях разрезают на две равные части, помещают в жидкую среду MS (Мурасиге-Скуга) в стерильную трубчатую насадку, обеспечивающую объемное облучение, и обрабатывают ультразвуком мощностью 2,7-8,0 Вт/см2 в течение 10-120 секунд. Затем микроклубни высаживают на безгормональную питательную среду MS и помещают в темноту на 48 часов, после чего выставляют в стандартные условия культуральной комнаты. Предлагаемый способ увеличивает прорастаемость микроклубней картофеля в условиях in vitro. 6 ил., 1 пр.

 

Изобретение относится к биотехнологии в области сельского хозяйства, в частности, к подходу стимуляции прорастания микроклубней, полученных при культивировании микрорастений картофеля in vitro.

Задачей настоящего изобретения является разработка способа снятия периода покоя и стимуляции прорастания микроклубней без нарушения стерильности для включения полученных микропобегов в систему клонального микроразмножения.

Микроклубни являются неотъемлемой частью системы клонального микроразмножения и в целом культуры тканей картофеля.

Микроклубни применяют для размножения безвирусных растений in vitro, т.к. на одном микроклубне, в зависимости от генотипа, находится несколько меристемных участков (почек), что позволяет потенциально получить несколько микропобегов с одного экспланта за короткий период времени. Данный метод значительно повышает эффективность размножения.

Помимо этого, микроклубни картофеля являются хорошим объектом для депонирования генотипов in vitro, поскольку способны сохранять жизнеспособность при низких положительных температурах долгое время без каких-либо дополнительных условий.

Использование микроклубней для получения новых форм также широко распространено, особенно часто применяют воздействие конкретного селективного фактора для получения сомаклонального варианта, устойчивого к данному негативному влиянию.

Воздействие химических и физических мутагенных факторов на микроклубни используют для получения новых генотипов с дальнейшим отбором полезных мутаций.

Однако прорастание микроклубней у картофеля (Solanum tuberosum L.) представляет собой сложный процесс [1], который зависит от фотопериода [2], температуры [3], углеводного питания [4], содержания азота [5]. Это связано с тем, что при интенсификации процесса размножения, свежеобразовавшиеся микроклубни не помещают в условия низких положительных температур, а сразу включают в систему размножения. Таким образом, микроклубни не успевают пройти период покоя, что существенно сказывается на их дальнейшей продуктивности.

Для решения данной проблемы ряд исследователей [6, 7], использовали цитокинины для индукции микроклубнеобразования и их прорастания. В то же время данные по влиянию биологически активных соединений неоднозначны, поскольку разные регуляторы роста, особенно вещества антигиббереллинового действия, например, абсцизовая кислота, в различной степени влияют на эффективность этого процесса.

Кроме этого, существует вероятность, что длительное использование веществ, регулирующих рост, особенно гормонов роста, вовремя культивирования может привести к соматическим изменениям и другим негативным эффектам [8].

Тем не менее, был разработан способ [9], который включает удаление частей растений, их отчуждение и обработку стимулятором. При размножении миниклубней в сосудах их извлекают спустя 50-55 дней, после чего субстрат дополняют кремнийсодержащим удобрением, предварительно смоченным в 0,2% водного раствора йода и 0,1% селена, в количестве 10-12% от общего объема. Растения с отчужденными клубнями помещают в те же сосуды, проращивая их еще 2-3 недели.

В других исследованиях [10] растения обрабатывали раствором биологически активных веществ. При этом в процессе культивирования в жидкой питательной среде увеличивают площадь ассимилирующей поверхности растений, содержание в них фотосинтетических пигментов и эффективность столонобразования путем однократной обработки корневой системы растений раствором 24-эпикастастерона в концентрации 0,01-1 нМ в течение 4-5 ч.

Для стимуляции кинетики прорастания (процент проросших микроклубней в течение времени) микроклубней, высаживали их в торф и выращивали в теплице, предварительно обработав различными концентрациями перекиси водорода (20, 40 и 60 мМ) и тиомочевины (250, 50 0 и 750 мМ) [11].

Кроме химических способов стимуляции используют и физические. Ультразвуковое воздействие на растительные ткани приводит к увеличению проницаемости клеточных мембран и тем самым регулирует физиологические процессы [12].

Для решения проблемы прорастания клубней картофеля разработан способ стимуляции миниклубней [13]. Разработанный способ сочетает в себе физические и химические факторы. Для стимуляции прорастания миниклубней картофеля применяли ультразвук с частотой 22-44 кГц, плотностью акустической мощности 0,3-1,0 Вт/см3, в течение 15-360 секунд, в растворе, содержащем биостимуляторы - меланиноподобные вещества из дрожжей Nadsoniellanigra, роданистый калий и тиомочевину (по 1,0-3,0 г/л), а также индолуксусную, гиберрелиновую и янтарную кислоты (по 0,01-0,03 г/л).

Наиболее близким по своей сущности к заявленному изобретению является способ стимуляции миниклубней с помощью ультразвука и биостимуляторов [13].

Недостатком прототипа является то, что у данного метода крайне низкая производительность (16 миниклубней) при стимуляции их прорастания ультразвуком и продолжительное время воздействия до 360 с. Для стимуляции прорастания миниклубней в промышленных масштабах данный способ не пригоден. Кроме того, данный способ не применим для культуры in vitro микроклубней, поскольку процесс облучения и воздействия стимуляторами не обеспечивает стерильные условия для их дальнейшего культивирования in vitro.

Таким образом, в целом нет данных о применении ультразвука для стимуляции прорастания микроклубней картофеля в стерильных условиях.

Целью изобретения является стимуляция прорастания микроклубней картофеля in vitro с помощью ультразвука без нарушения стерильности.

Цель достигается за счет того, что стерильные микроклубни картофеля разрезают на две равные части, помещают в жидкую среду MS (Мурасиге-Скуга) в стерильную трубчатую насадку (фиг. 1, 2), обеспечивающую объемное облучение, и обрабатывают ультразвуком, мощностью 2,7-8,0 Вт/см2, в течение 10-120 секунд, затем микроклубни высаживают на безгормональную питательную среду MS и помещают в темноту на 48 часов, после чего выставляют в стандартные условия культуральной комнаты. Заявляемое изобретение относится к области биотехнологии растений и может быть использовано для стимуляции прорастания микроклубней картофеля in vitro.

Пример 1

С культивируемых in vitro микрорастений картофеля сорта Удача провели сбор микроклубней с целью дальнейшего их проращивания на искусственных питательных средах для получения микропобегов и включения их в стандартную систему клонального микроразмножения.

Стерильные микроклубни в стерильных условиях ламинарного бокса разрезали на две равные части и помещали в жидкую питательную среду MS [14] в заранее подготовленную стерильную трубчатую насадку (фиг. 1).

Данная насадка передает ультразвуковые колебания в жидкую среду на месте контакта с металлом. Таким образом, обеспечивается объемное воздействие ультразвукового облучения на биологические объекты, находящиеся внутри насадки (фиг. 2). Мощность ультразвукового облучения варьировала от 2,7 Вт/см2 до 8,0 Вт/см2. Экспозиция воздействия 60 секунд. Затем микроклубни высаживали на безгормональную питательную среду MS и помещали в темноту на 48 часов. Субкультивирование микроклубней осуществляли в широкогорлых конических колбах емкостью 250 мл со 100 мл среды. Колбы закрывали тонкой алюминиевой фольгой и герметизировали пищевой пленкой.

Дальнейшее культивирование микроклубней осуществляли в специально оборудованной культуральной комнате при 16-часовом световом дне с освещенностью 2400 люкс (люминесцентные лампы Osram L36W Cool Daylight), температуре воздуха 24±2°С и влажности воздуха 55-60%.

Контролем служили необлученные, аналогичным образом разрезанные, микроклубни картофеля сорта Удача.

Эффективность обработки оценивали через месяц культивирования по количеству микроклубней, образующих микропобеги, а также по количеству микропобегов на один микроклубень и их длине.

Опыт имел четырехкратную повторность. Статистическую обработку данных проводили в программной среде Microsoft Excel.

Воздействие ультразвука на половинки микроклубней позволило существенно повысить их всхожесть (фиг. 3, 6). Данный эффект объясняется воздействием ультразвука, создающим капиллярный эффект и стимуляцию меристематических участков микроклубней по всей поверхности благодаря объемному облучению. В результате деления микроклубней на две части поступление питательных веществ из искусственной среды значительно усиливается через разрезанный участок и таким образом индуцируется активное пробуждение и рост побегов из почек микроклубня.

Так, всхожесть микроклубней при воздействии УЗ мощностью 2,7 Вт/см2 повышает их прорастаемость до 76,9±2,7% по сравнению с 19,6±1,8% в контроле (фиг. 3, 6). Повышение мощности до 4,7 Вт/см2 увеличивает прорастаемость микроклубней до 83,3±4,7%. Данный показатель превышает контрольный более чем в четыре раза.

Дальнейшее увеличение мощности до 5,6 Вт/см2 и 8,0 Вт/см2 приводит к снижению значения, но достоверно превышает контрольные значения в 1,9 и 1,6 раза.

Воздействие УЗ на микроклубни, предложенным способом, позволяет значительно стимулировать меристематические участки во всех вариантах опыта (фиг. 6). На фигуре 2 представлены данные развития микропобегов из почек «глазков» микроклубней. Наименьшие значения отмечены в контрольном варианте (2,4±0,2 шт.). Воздействие УЗ на экспланты приводит к индукции развития меристем с пиковыми значениями данного признака (8,5±0,6 шт.) при мощности 4,7 Вт/см2, что более чем в 3,5 раза выше контрольных значений.

Возникающий капиллярный эффект, под действием ультразвуковых колебаний позволяет насытить микроклубни питательными веществами, что обеспечивает качественное развитие микропобегов. Так воздействие УЗ мощностью 2,7 Вт/см2 и 4,7 Вт/см2 приводит к наилучшему развитию микропобегов до 8,1±0,4 см и 8,8±0,4 см соответственно (фиг. 5). Во всех остальных вариантах опыта данные значения также достоверно превышали контрольные (5,7±0,2 см).

Анализируя полученные данные, можно утверждать с высокой степенью вероятности, что дальнейшее усиление воздействия УЗ приведет к снижению всех показателей в связи с деструктивным его действием при высоких мощностях на биологические объекты.

Таким образом, изложенные выше сведения свидетельствуют о том, что представленное изобретение обладает заявленными свойствами, и совокупность отличительных признаков описываемого способа обеспечивает достижение указанного результата.

Для заявленного способа, в том виде, как он охарактеризован в изложенной формуле изобретения, нет препятствий его осуществления на практике с использованием современных технических средств. Таким образом, заявленное изобретение соответствует условию «промышленная применимость».

Данное изобретение расширяет разнообразие возможностей, обеспечивающее оптимальный выбор способа стимуляции микроклубней без нарушения их стерильности.

Список использованной литературы

1. Sharma S., Chanemougasoundharam A., Sarkar D., Pandey S.K. Carboxylic acids affect induction, development and quality of potato (Solanum tuberosum L.) microtubers grown in vitro from single-node explants // Plant Growth Regulation -2004. - V. 44. - P. 219-229.

2. Seabrook J.E.A., Coleman S., Levy D. Effect of photoperiod on in vitrotuberization of potato (Solanum tuberosum L.) // Plant Cell Tiss. Org. Cult. - 1993. - V. 34. - P. 43-51.

3. Leclerc Y., Donnelly D., Seabrook J.E.A. Microtuberization of layered shoots and nodal cuttings of potato: the influence of growth regulators and incubation periods // Plant Cell Tiss. Org. Cult. - 1994. - V. 37. - P. 113-120.

4. Simko I. Sucrose application causes hormonal changes associated with potato tuber induction // J. Plant Growth Regul. - 1994. - V. 13. - P. 73-77.

5. Sarkar D., Naik P.S. Effect of inorganic nitrogen nutrition on cytokinin-induced potato microtuber production in vitro II Potato Res. - 1998. - V. 41. - P. 211-217.

6. Donnelly D.J., Coleman W.K., Coleman S.E. Potato microtuber production and performance: a review // Am. J. Potato Res. - 2003. - V. 80. - P. 103-115.

7. Wang P.-J., Hu C.-Y. Potato tissue culture and its application in agriculture // Li P.H. (ed.), Potato Physiology. - Academic Press, London. - 1985. - P. 503-577.

8. Bizarri M., Borghi L., Ranalli P. Effects of activated charcoal effects on induction and development of microtubers in potato (Solanum tuberosum L.) // Ann. Appl. Biol. - 1995. - V 127. - P. 175-181.

9. Патент РФ №2479983 «Способ повышения коэффициента размножения меристемных клубней картофеля» / авторы: Басиев С.С., Бекузарова С.А., Болиева З.А., Дзгоев O.K., Пухаев А.Р., Кцоева З.А. Зарегистрирован в госреестре полезных моделей РФ 27.10.2011. Заявка: №2011143521/13 от 27.10.2011. Опубликовано: 27.04.2013. Бюл. №12. 2013. Патентообладатель: Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Горский государственный аграрный университет».

10. Патент РФ №2711577 на изобретение «Способ повышения продуктивности растений картофеля в оптимальных и стрессовых условиях выращивания» / авторы: Ефимова М.В., Данилова Е.Д., Коломейчук Л.В. и др. Зарегистрирован в госреестре полезных моделей РФ 17.01.2020. Заявка №2019124997 от 07.08.2019. Опубликовано: 07.08.2019. Бюл. №2. 2020. Патентообладатель: Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Национальный исследовательский Томский государственный университет» (ТГУ, НИ ТГУ).

11. Mani F., Bettaieb Т., Doudech N., Hannachi С. Effect of hydrogen peroxide and thiourea on dormancy breaking of microtubers and field-grown tubers of potato // African Crop Science Journal. - Vol. 21, No. 3. - Pp. 221-234.

12. Акопян В.Б., Ершов А.Ю., Основы взаимодействия ультразвука с биологическими объектами. - М., ЮРАЙТ, 2016. - 223 с.

13. Патент РФ №2708829 на изобретение «Способ стимуляции миниклубней картофеля» / авторы: Мартиросян Ю.Ц., Мартиросян В.В., Мартиросян Л.Ю., Акопян В.Б., Гарибян Ц.С. Зарегистрирован в госреестре полезных моделей РФ 11.12.2019. Заявка №2018144342 от 14.12.2018. Опубликовано: 11.12.2019. Бюл. №35. 2019. Патентообладатель: Мартиросян Юрий Цатурович.

14. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. - 1962. - Vol.15, №13. - P. 473-497.

Способ стимуляции прорастания микроклубней картофеля in vitro с помощью ультразвука без нарушения стерильности, отличающийся тем, что стерильные микроклубни картофеля в стерильных условиях разрезают на две равные части, помещают в жидкую среду MS (Мурасиге-Скуга) в стерильную трубчатую насадку, обеспечивающую объемное облучение, и обрабатывают ультразвуком мощностью 2,7-8,0 Вт/см2 в течение 10-120 секунд, затем микроклубни высаживают на безгормональную питательную среду MS и помещают в темноту на 48 часов, после чего выставляют в стандартные условия культуральной комнаты.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ получения растений-регенерантов Brassica oleracea L.

Настоящее изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ повышения эффективности клонального микроразмножения вечнозеленых сортов Рододендрона, включающий культивирование одноузловых эксплантов, представляющих собой части микропобегов, содержащие одну пазушную почку, на питательной среде, дополненной 0,25 мкМ ТДЗ, в течение 8 недель, с последующим культивированием 6 недель на безгормональной среде.

Изобретение относится к области биотехнологии растений, предполагает использование метода культуры растительной ткани для микроклонального размножения лекарственного вида Stephania glabra. Способ осуществляют следующим образом: из первичного экспланта на жидкой питательной среде культивируют гетерогенную культуру, после чего полученную гетерогенную клеточную культуру культивируют на питательной среде для образования соматических зародышей с последующим формированием из полученных соматических зародышей микрорастений на питательной безгормональной твердой среде.
Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ укоренения и адаптации побегов, полученных в культуре in vitro, в асептических условиях на скошенном агаре.

Изобретение относится к области биотехнологии. Заявляемая питательная среда содержит половинную концентрацию растворенных в дистиллированной воде солей по прописи MS: аммоний нитрат, калий нитрат, кальций хлорид, калий дигидрофосфат, магний сульфат, борную кислоту, дигидрат сульфата марганца, кобальт хлорид, пентагидрат сульфата меди, дигидрат молибдата натрия, гептагидрат сульфата цинка, калий иодид, гептагидрат сульфата железа (II), 2-водную динатриевую соль этилендиаминтетрауксусной кислоты, витамины пиридоксин и тиамин, а также сахарозу и агар.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ, включающий в себя чередование культуральных сред и условий освещения на этапе размножения с использованием разных фитогормонов: 6-Бензиламинопурина, зеатина и 6-Бензиламинопурина и индолилмасляной кислоты; и интенсивности освещения 1500-2000 люкс и 800-1000 люкс.

Изобретение относится к области биотехнологии. Предлагается питательная среда, которая содержит следующие компоненты (мг/л): аммоний азотнокислый 200-360, калий азотнокислый 750-1550, кальций азотнокислый 650-800, магний сернокислый 120-250, калий фосфорнокислый 300-370, борная кислота 6,0-6,4, цинк сернокислый 8,0-9,2, калий йодистый 0,075-0,085, натрий молибденовокислый 0,2-0,3, медь сернокислая 0,02-0,03: кобальт хлористый 0,02-0,03, железный(П) комплекс гидроксиэтилидендифосфоновой кислоты 15,2-60,8, миоинозит 100, тиамин гидрохлорид 0,5, пиродоксин гидрохлорид 0,5, никотинамид 0,5; глицин 1000, 6-бензиламинопурин 0,3, сахароза 30000, агар 6000, остальное вода до 1 л.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ получения подвойного материала (Л-2) в условиях in vitro, черенкование пробирочных растений и высадку одноузловых черенков на агаризованную питательную среду, содержащую макро- и микроэлементы и витамины на основе прописи питательной среды, Fe-хелат, агар-агар, сахарозу, при этом в питательную среду добавляют высокую концентрацию солей (Хелат - Fe 50 мг/л и Ca(NO3)2 1000 мг/л) и для растительной активности растения пересаживают на питательную среду содержанием 1 мг 6 БАП и 0,05 г/л янтарной кислоты, при этом концентрация микросолей: ZnSO4*7H2O - 4.3 мг/л и Н3ВО3 - 3.1 мг/л, источник кальция тоже изменен в форме (от CaCl2*2H2O на Ca(NO3)2*4H2O), пересадку проводят через 3 недели, при размножении особое внимание уделяют стекловидности или сверховодненности тканей, при этом оптимальными условиями культивирования Л-2 являются: температура 22-26 градусов, освещенность 2500-5000 лк, при 16-часовом фотопериоде.

Изобретение относится к области биохимии, в частности к способу идентификации растения сои, которое проявляет повышенную устойчивость к гнили корня и стебля, обусловленной Phytophthora (PRSR). Также раскрыт способ селекции с помощью маркера.
Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ получения растений-регенерантов из язычковых цветков хризантем in vitro, предназначенный для культивирования in vitro язычковых цветков растений хризантемы, и может быть использовано для массового получения генетически однородного посадочного материала ценных сортов и гибридов хризантем, где в качестве первичного экспланта используют язычковые цветки, которые культивируют на питательной среде, содержащей минеральные соли по прописи Мурасиге и Скуга, а также гормоны 6-бензиламинопурин (БАП) в концентрации 1 мг/л и индолилуксусная кислота (ИУК) 0,5 мг/л и препарат Аминовен 15%-ный в концентрации 3 мл/л.

Изобретение относится к области биотехнологии. Предлагается питательная среда, содержащая (мг/л): неорганические соединения из группы: аммоний азотнокислый, калий азотнокислый, кальций хлористый, магний сернокислый, калий фосфорнокислый, борная кислота, калий йодистый, а также комплексы марганца (II), цинка(II), молибдена (VI), меди(П), кобальта(П) с оксиэтилидендифосфоновой кислотой (ОЭДФ), комплекс железа (III) с трилоном Б, и органическую составляющую, включающую миоинозит, тиамин гидрохлорид, пиродоксин гидрохлорид, никотинамид, индолилмасляную кислоту, при следующем весовом соотношении компонентов смеси, мг/л: аммоний азотнокислый 825.0, калий азотнокислый 950.0, кальций хлористый 220.0, магний сернокислый 185.0, калий фосфорнокислый 85.0, борную кислоту 6.2, калий йодистый 0.83, комплексы микроэлементов с оксиэтилидендифосфоновой кислотой: железный(III) 24.5- 27.6, марганцевый 26.4-29.3, цинковый 8.2- 9.1, молибденовокислый 0.33-0.37, медный 0.027-0.030, кобальтовый 0.029 -0.032, а также органическую составляющую, включающую миоинозит 0.5, тиамин гидрохлорид 0.5, пиродоксин гидрохлорид 0.5, индолилмасляную кислоту 0.2, сахарозу 15000, агар-агар 6000 и остальное - вода до 1 л. Предлагаемая питательная среда характеризуется высокой эффективностью для размножения вишни ВЦ-13 in vitro на стадии ризогенеза, которая заключается в обеспечении практически количественной степени укоренения растений-регенерантов с образованием коротких прочных корней, которые легко отмываются. 1 табл., 2 пр.
Наверх