Способ определения нифедипина в биологическом материале

Изобретение относится к биологии и токсикологической химии. Способ определения нифедипина в биологическом материале заключается в том, что биологический объект измельчают, двукратно по 30 минут обрабатывают порциями органического изолирующего агента, которым является ацетон, полученные органические извлечения объединяют, растворитель из объединенного извлечения испаряют в токе воздуха, остаток неоднократно обрабатывают ацетоном, ацетоновые извлечения отделяют, объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, хроматографируют в макроколонке с сорбентом «Силасорб С-18» 30 μ, элюируя смесью растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют, остаток растворяют в смеси растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему и проводят определение методом ВЭЖХ с применением подвижной фазы ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему, подаваемой со скоростью 1000 мкл/мин, и УФ-детектора, регистрирующего оптическую плотность при 250 нм. 4 табл., 3 пр.

 

Изобретение относится к биологии и токсикологической химии, а именно к способам определения нифедипина в биологическом материале, и может быть использовано в практике химико-токсикологических, экспертно-криминалистических и клинических лабораторий. Способ относится к числу массовых.

Известен способ определения органических веществ, к которым относится нифедипин, заключающийся в том, что биологический объект измельчают, неоднократно настаивают с подкисленным этанолом (каждый раз в течение суток), отдельные извлечения объединяют, объединенное извлечение концентрируют, осаждают в нем белки и некоторые другие эндогенные вещества биоматериала абсолютным этанолом, выпавший осадок отфильтровывают, процесс концентрирования объединенного извлечения, осаждения в нем эндогенных веществ биоматериала и отделения осадка фильтрованием неоднократно повторяют до прекращения появления осадка, фильтрат сгущают до густоты сиропа, разбавляют водой и экстрагируют анализируемые соединения вначале из кислого, а затем из щелочного раствора (Швайкова М.Д. Токсикологическая химия. - М.: Медицина, 1975. - С. 119-123).

Способ трудоемок, длителен по выполнению, характеризуется низкой степенью извлечения нифедипина.

Известен способ определения нифедипина в биологическом материале (крови), который заключается в том, что биологический объект обрабатывают при перемешивании дважды по 30 минут порциями хлороформа, объем каждой из которых в два раза превышает объем биологического объекта, полученные хлороформные извлечения объединяют, в 4-5 раз упаривают при комнатной температуре в токе воздуха, доводят до определенного объема хлороформом, часть хлороформного раствора хроматографируют в тонком слое на пластине «Сорбфил» UV-254 с обращенной фазой, применяя элюент ацетонитрил-вода в отношении 6:4 по объему, в присутствии вещества-свидетеля, анализируемое вещество элюируют из сорбента хлороформом, оптическую плотность хлороформного элюата измеряют при длине волны 243 нм, а содержание нифедипина рассчитывают по величине оптической плотности (Квачахия Л.Л., Шорманов В.К. Идентификация нифедипина в биологических жидкостях // Фармация. -2013. - N 8. - C. 16-19).

Способ характеризуется недостаточно высокими чувствительностью и селективностью.

Наиболее близким является способ определения нифедипина в биологическом материале, заключающийся в том, что биологический объект измельчают, двукратно по 30 минут обрабатывают порциями органического изолирующего агента, которым является этилацетат, при условии, что масса каждой порции изолирующего агента в 2 раза превышает массу биологического объекта, полученные органические извлечения объединяют, растворитель из объединенного извлечения испаряют в токе воздуха, остаток растворяют в смеси растворителей ацетонитрил-буферный раствор с рН 3 в отношении 6:4 по объему, хроматографируют в макроколонке с сорбентом «Силасорб С-18» 30 μ, элюируя смесью растворителей ацетонитрил-буферный раствор с рН 3 в отношении 6:4 по объему, фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют, остаток растворяют в смеси растворителей гексан - диоксан - пропанол-2 в отношении 15:5:1 по объему и проводят определение методом ВЭЖХ в аналитической колонке размерами 64×2 мм, заполненной сорбентом «Силасорб 600», с применением подвижной фазы гексан - диоксан -пропанол-2 в отношении 15:5:1 по объему, подаваемой со скоростью 100 мкл/мин, и УФ-детектора, регистрирующего оптическую плотность при 280 нм (Шорманов В.К., Квачахия Л.Л., Маркелов М.Ю., Конарева Е.Г. Определение нифедипина в биологическом материале // Судебно-медицинская экспертиза. - 2011. - Т. 54, №4. - С. 31-34).

Способ характеризуется недостаточно высокой чувствительностью определения.

Техническим результатом настоящего изобретения является повышение чувствительности определения.

Технический результат достигается тем, что биологический объект измельчают, двукратно по 30 минут обрабатывают порциями органического изолирующего агента, которым является ацетон, при условии, что масса каждой порции изолирующего агента в 2 раза превышает массу биологического объекта, полученные органические извлечения объединяют, растворитель из объединенного извлечения испаряют в токе воздуха, остаток неоднократно обрабатывают ацетоном, ацетоновые извлечения отделяют, объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, хроматографируют в макроколонке с сорбентом «Силасорб С-18» 30 μ, элюируя смесью растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют, остаток растворяют в смеси растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему и проводят определение методом ВЭЖХ в аналитической колонке Hibar размерами 150×4,6 мм, заполненной сорбентом Purospher STAR RP-18 endcapped, с применением подвижной фазы ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему, подаваемой со скоростью 1000 мкл/мин, и УФ-детектора, регистрирующего оптическую плотность при 250 нм.

Способ осуществляется следующим образом: биологический объект, содержащий нифедипин, измельчают, двукратно по 30 минут обрабатывают порциями органического изолирующего агента, которым является ацетон, при условии, что масса каждой порции изолирующего агента в 2 раза превышает массу биологического объекта, полученные органические извлечения объединяют, растворитель из объединенного извлечения испаряют в токе воздуха, остаток неоднократно обрабатывают ацетоном, ацетоновые извлечения отделяют, объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, хроматографируют в макроколонке с сорбентом «Силасорб С-18» 30 μ, элюируя смесью растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют, остаток растворяют в смеси растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему и проводят определение методом ВЭЖХ в аналитической колонке Hibar размерами 150×4,6 мм, заполненной сорбентом Purospher STAR RP-18 endcapped, с применением подвижной фазы ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему, подаваемой со скоростью 1000 мкл/мин, и УФ-детектора, регистрирующего оптическую плотность при 250 нм. Способ иллюстрируется следующими примерами.

Пример 1

Определение нифедипина (1,4-дигидро-2,6-диметил-4-(2-нитрофенил)-3,5-пиридиндикарбоновой кислоты диметилового эфира) в ткани печени

К 10 г измельченной до размеров частиц 0,2-0,5 мм ткани печени прибавляют 10 мг нифедипина, тщательно перемешивают биологический объект с веществом и оставляют на 1,5 часа при температуре 18-22°С. По истечении указанного времени биологический объект двукратно по 30 минут обрабатывают порциями органического изолирующего агента, которым является ацетон, при условии, что масса каждой порции изолирующего агента в 2 раза превышает массу биологического объекта. При этом биологический объект заливают 20 г ацетона и выдерживают 30 минут при периодическом перемешивании. Извлечение отделяют от твердых частиц биоматериала, операцию настаивания повторяют в указанных условиях.

Полученные органические извлечения объединяют, растворитель из объединенного извлечения испаряют в токе воздуха, остаток неоднократно (трижды по 3 минуты) обрабатывают порциями ацетона по 15 мл каждая при энергичном перемешивании, извлечения отделяют, объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси ацетонитрил-вода в отношении 7:3 по объему путем обработки остатка 2,8 мл ацетонитрила и последующего прибавления к ацетонитрильному раствору 1,2 мл воды. Полученный раствор вносят в хроматографическую макроколонку размерами 490×11 мм, заполненную 7,5 г сорбента «Силасорб С-18» 30 μ, и хроматографируют, элюируя смесью растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему. Элюат собирают отдельными фракциями по 2 мл каждая.

Фракции элюата с 4 по 6 включительно, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°С. Остаток растворяют в смеси растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему. Для этого остаток обрабатывают 5 мл ацетонитрила, ацетонитрильный раствор количественно переносят в мерную колбу вместимостью 10 мл и доводят до метки фосфатным буферным раствором с рН 9 (раствор А). 0,5 мл раствора А вносят в мерную колбу вместимостью 25 мл и доводят до метки смесью растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему (раствор Б).

4 мкл полученного раствора вводят в жидкостный хроматограф типа Agilent 1100.

Проводят определение, хроматографируя методом ВЭЖХ в аналитической колонке Hibar размерами 150×4,6 мм, заполненной сорбентом Purospher STAR RP-18 endcapped, с применением подвижной фазы ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему и УФ-детектора.

Скорость подачи элюента составляет 1000 мкл/мин. Температура термостата колонки составляет 20°С. Оптическую плотность регистрируют при длине волны 250 нм.

Пик на хроматограмме с временем удерживания 2,97 мин (объемом удерживания 2970 мкл) соответствует нифедипину.

Количественное содержание нифедипина определяют, исходя из площади хроматографического пика, по уравнению градуировочного графика и пересчитывают на навеску вещества, внесенную в ткань печени.

Построение градуировочного графика

В ряд мерных колб вместимостью 10 мл вносят 0,01; 0,02, 0,03; 0,08, 0,16, 0,80, 2,0, 3,2, 4,0 и 5,0 мл 0,025% раствора нифедипина в ацетонитриле, соответственно 4,99, 4,98, 4,97, 4,92, 4,84, 4,20, 3,0, 2,8, 1,0 и 0 мл ацетонитрила и доводят содержимое каждой колбы до метки фосфатным буферным раствором с рН 9. 4 мкл каждого из полученных растворов вводят в хроматограф Agilent 1100.

Хроматографирование осуществляют в аналитической колонке Hibar размерами 150×4,6 мм, заполненной сорбентом Purospher STAR RP-18 endcapped, с применением подвижной фазы ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему и УФ-детектора.

Скорость подачи элюента составляет 1000 мкл/мин. Температура термостата колонки составляет 20°С. Оптическую плотность регистрируют при длине волны 250 нм.

Пик на хроматограмме с временем удерживания 2,97 мин (объемом удерживания 2970 мкл) соответствует нифедипину.

По результатам измерений на хроматографе строят график зависимости площади хроматографического пика от концентрации определяемого вещества. График линеен в интервале концентраций 1-500 нг нифедипина в хроматографируемой пробе.

Методом наименьших квадратов рассчитывают уравнение градуировочного графика, которое в данном случае имеет вид:

S=4,073367⋅C+0,702833,

где S - площадь хроматографического пика, С - концентрация определяемого вещества в хроматографируемой пробе, нг.

Результаты количественного определения нифедипина в ткани печени представлены в таблице 1.

Пример 2

Определение нифедипина (1,4-дигидро-2,6-диметил-4-(2-нитрофенил)-3,5-пиридиндикарбоновой кислоты диметилового эфира) в ткани желудка

К 10 г измельченной (до размеров частиц 0,2-0,5 мм) ткани желудка прибавляют 10 мг нифедипина, тщательно перемешивают биологический объект с веществом и оставляют на 1,5 часа при температуре 18-22°С. По истечении указанного времени биологический объект двукратно по 30 минут обрабатывают порциями органического изолирующего агента, которым является ацетон, при условии, что масса каждой порции изолирующего агента в 2 раза превышает массу биологического объекта. При этом биологический объект заливают 20 г ацетона и выдерживают 30 минут при периодическом перемешивании. Извлечение отделяют от твердых частиц биоматериала, операцию настаивания повторяют в указанных условиях.

Полученные органические извлечения объединяют, растворитель из объединенного извлечения испаряют в токе воздуха, остаток неоднократно (трижды по 3 минуты) обрабатывают порциями ацетона по 15 мл каждая при энергичном перемешивании, извлечения отделяют, объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси ацетонитрил-вода в отношении 7:3 по объему путем обработки остатка 2,8 мл ацетонитрила и последующего прибавления к ацетонитрильному раствору 1,2 мл воды. Полученный раствор вносят в хроматографическую макроколонку размерами 490×11 мм, заполненную 7,5 г сорбента «Силасорб С-18» 30 μ, и хроматографируют, элюируя смесью растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему. Элюат собирают отдельными фракциями по 2 мл каждая.

Фракции элюата с 4 по 6 включительно, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°С. Остаток растворяют в смеси растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему. Для этого остаток обрабатывают 5 мл ацетонитрила, ацетонитрильный раствор количественно переносят в мерную колбу вместимостью 10 мл и доводят до метки фосфатным буферным раствором с рН 9 (раствор А). 0,5 мл раствора А вносят в мерную колбу вместимостью 25 мл и доводят до метки смесью растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему (раствор Б).

4 мкл полученного раствора вводят в жидкостный хроматограф типа Agilent 1100.

Проводят определение, хроматографируя методом ВЭЖХ в аналитической колонке Hibar размерами 150×4,6 мм, заполненной сорбентом Purospher STAR RP-18 endcapped, с применением подвижной фазы ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему и УФ-детектора.

Скорость подачи элюента составляет 1000 мкл/мин. Температура термостата колонки составляет 20°С. Оптическую плотность регистрируют при длине волны 250 нм.

Пик на хроматограмме с временем удерживания 2,97 мин (объемом удерживания 2970 мкл) соответствует нифедипину.

Количественное содержание нифедипина определяют, исходя из площади хроматографического пика, по уравнению градуировочного графика и пересчитывают на навеску вещества, внесенную в ткань желудка.

Построение градуировочного графика и его уравнение приводятся выше в примере 1.

Результаты количественного определения нифедипина в ткани желудка представлены в таблице 2.

Пример 3

Определение нифедипина (1,4-дигидро-2,6-диметил-4-(2-нитрофенил)-3,5-пиридиндикарбоновой кислоты диметилового эфира) в ткани селезенки

К 10 г измельченной (до размеров частиц 0,2-0,5 мм) ткани селезенки прибавляют 10 мг нифедипина, тщательно перемешивают биологический объект с веществом и оставляют на 1,5 часа при температуре 18-22°С. По истечении указанного времени биологический объект двукратно по 30 минут обрабатывают порциями органического изолирующего агента, которым является ацетон, при условии, что масса каждой порции изолирующего агента в 2 раза превышает массу биологического объекта. При этом биологический объект заливают 20 г ацетона и выдерживают 30 минут при периодическом перемешивании. Извлечение отделяют от твердых частиц биоматериала, операцию настаивания повторяют в указанных условиях.

Полученные органические извлечения объединяют, растворитель из объединенного извлечения испаряют в токе воздуха, остаток неоднократно (трижды по 3 минуты) обрабатывают порциями ацетона по 15 мл каждая при энергичном перемешивании, извлечения отделяют, объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси ацетонитрил-вода в отношении 7:3 по объему путем обработки остатка 2,8 мл ацетонитрила и последующего прибавления к ацетонитрильному раствору 1,2 мл воды. Полученный раствор вносят в хроматографическую макроколонку размерами 490×11 мм, заполненную 7,5 г сорбента «Силасорб С-18» 30 μ, и хроматографируют, элюируя смесью растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему. Элюат собирают отдельными фракциями по 2 мл каждая.

Фракции элюата с 4 по 6 включительно, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°С. Остаток растворяют в смеси растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему. Для этого остаток обрабатывают 5 мл ацетонитрила, ацетонитрильный раствор количественно переносят в мерную колбу вместимостью 10 мл и доводят до метки фосфатным буферным раствором с рН 9 (раствор А). 0,5 мл раствора А вносят в мерную колбу вместимостью 25 мл и доводят до метки смесью растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему (раствор Б).

4 мкл полученного раствора вводят в жидкостный хроматограф типа Agilent 1100.

Проводят определение, хроматографируя методом ВЭЖХ в аналитической колонке Hibar размерами 150×4,6 мм, заполненной сорбентом Purospher STAR RP-18 endcapped, с применением подвижной фазы ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему и УФ-детектора.

Скорость подачи элюента составляет 1000 мкл/мин. Температура термостата колонки составляет 20°С. Оптическую плотность регистрируют при длине волны 250 нм.

Пик на хроматограмме с временем удерживания 2,97 мин (объемом удерживания 2970 мкл) соответствует нифедипину.

Количественное содержание нифедипина определяют, исходя из площади хроматографического пика, по уравнению градуировочного графика и пересчитывают на навеску вещества, внесенную в ткань селезенки.

Построение градуировочного графика и его уравнение приводятся выше в примере 1.

Результаты количественного определения нифедипина в ткани селезенки представлены в таблице 3.

Предлагаемый способ по сравнению с прототипом в 10 раз повышает чувствительность определения в биологическом материале и в 320 раз в хроматографируемой пробе. Сравнительная характеристика предлагаемого и известного способов представлена в таблице 4.

Способ определения нифедипина в биологическом материале, заключающийся в том, что биологический объект измельчают, двукратно по 30 минут обрабатывают порциями органического изолирующего агента при условии, что масса каждой порции изолирующего агента в 2 раза превышает массу биологического объекта, полученные органические извлечения объединяют, растворитель из объединенного извлечения испаряют в токе воздуха, остаток растворяют в смеси растворителей, хроматографируют в макроколонке с сорбентом «Силасорб С-18» 30 μ, элюируя смесью растворителей, фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют, остаток растворяют в смеси растворителей и проводят определение методом ВЭЖХ в аналитической колонке, заполненной сорбентом, с применением подвижной фазы и УФ-детектора, регистрирующего оптическую плотность, отличающийся тем, что органическим изолирующим агентом является ацетон, остаток, полученный после испарения растворителя из объединенного извлечения, неоднократно обрабатывают ацетоном, ацетоновые извлечения отделяют, объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, при хроматографировании в макроколонке с сорбентом «Силасорб С-18» 30 μ элюируют смесью растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, определение методом ВЭЖХ проводят в аналитической колонке Hibar размерами 150×4,6 мм, заполненной сорбентом Purospher STAR RP-18 endcapped, с применением подвижной фазы ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему, которую подают со скоростью 1000 мкл/мин, а оптическую плотность регистрируют при 250 нм.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к медицине, а именно к фтизиатрии и бактериологии, и может быть использовано для проведения туберкулостатической пробы у больных туберкулезом легких для лабораторного обоснования персонифицированного лечения.

Изобретение относится к области медицины и медицинской диагностики. Раскрыт способ микроскопической диагностики качества спермы после седиментации эякулята, включающий отбор клеток из осадка эякулята (ОЭ), подготовку цитологических препаратов из отобранных клеток ОЭ с размещением на предметные стекла, высушивание и окрашивание препаратов, последующий подсчет количества, оценку различных типов клеток и сравнение с данными контрольной группы для получения заключения.
Изобретение относится к области медицины и представляет собой способ диагностики степени тяжести гнойного холангита у больных механической желтухой с установлением оптимальной хирургической тактики лечения, заключающийся в обследовании больного, отличающийся тем, что в крови больного газохроматографическим методом определяют количество уксусной кислоты и при концентрации уксусной кислоты, равной 0,31-0,34 ммоль/л, устанавливают наличие легкой степени тяжести гнойного холангита, при которой билиарная декомпрессия не показана, при концентрации уксусной кислоты, равной 0,35-0,41 ммоль/л, устанавливают наличие средней степени тяжести гнойного холангита, при которой билиарная декомпрессия показана при отсутствии эффекта от терапевтического лечения, а при концентрации уксусной кислоты, равной 0,42 ммоль/л или более, устанавливают наличие тяжелой степени гнойного холангита, при которой показана неотложная билиарная декомпрессия.

Изобретение относится к медицине, а более конкретно к лабораторной диагностике, и может быть использовано в амбулаторной и стационарной стоматологической практике.
Изобретение относится к медицине, а именно к неврологии, и может быть использовано при лечении больных с мышечными дистониями. Для этого проводят комплексное клиническое обследование пациента и назначают ботулинотерапию.
Изобретение относится к медицине, а именно к акушерству и гинекологии, и может быть использовано для прогнозирования развития гестационного сахарного диабета у женщин с андроидным типом ожирения.
Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, и может быть использовано для оценки активности инфекционного процесса, вызванного неферментирующими грамотрицательными бактериями (НФГОБ) в бронхолегочной системе у пациентов с муковисцидозом.

Изобретение относится к медицине, а именно к терапии и гепатологии, и может быть использовано для лечения неалкогольной жировой болезни печени при метаболическом синдроме.

Изобретение относится к картриджу для обработки жидкой пробы, например, для выявления компонентов в пробе крови. Картридж содержит флюидальную систему с впускным (12) отверстием, ведущим через впускной (13) капиллярный канал в камеру (14) для хранения.
Изобретение относится к медицине, а именно к педиатрии, акушерству и гинекологии, и может быть использовано для прогнозирования состояния микрофлоры кишечника у новорожденных детей.
Изобретение относится к медицине, а именно к кардиологии, клинической лабораторной диагностике и гематологии. Способ определения резистентности к антиагрегантным препаратам у пациентов с ишемической болезнью сердца, принимающих лекарственные средства группы антиагрегантов не менее 6 месяцев, заключается во взятии крови в пробирку с 3,8% цитратом натрия в соотношении 9:1, разделении центрифугированием на плазму и эритроциты с получением богатой и бедной тромбоцитами плазмы, определении индивидуально пациенту значений светопропускания с графической регистрацией в течение 5 мин с постоянным перемешиванием и температурой 37°С, добавлении к суспензии тромбоцитов в соотношении 10:1 индуктора агрегации тромбоцитов коллагена однократно на 10 секунде регистрации агрегации тромбоцитов на лазерном агрегометре в концентрации 2 мкмоль/л, при этом дополнительно вносят к богатой тромбоцитами плазме индуктор коллаген в соотношении 2:1 по 2 мкмоль/л на 1, 2, 3 и 4 минутах исследования и при получении значений агрегации тромбоцитов в диапазоне от 45 до 100% определяют резистентность к антиагрегантным препаратам.

Изобретение относится к области медицины, в частности к молекулярной онкологии, и предназначено для прогнозирования развития метастазов в печени у больных раком толстой кишки.

Изобретение относится к наборам для иммунохимического анализа антител и антигенов в препаратах крови и может быть использовано в медицинской диагностике. Раскрыт набор для мультиплексного иммунохимического анализа антител и антигенов в препаратах крови, включающий устройство в виде гребенчатой подложки с набором дискретно нанесенных на поверхности зубцов подложки реагентов захвата маркеров инфекционных заболеваний и дополнительно блокированной неспецифическими природными или синтетическими полимерами; емкость для проведения анализа, содержащую несколько рядов изолированных ячеек, выполненных с возможностью введения каждого зубца подложки в отдельную ячейку ванны; растворы для разведения образца и отмывок; конъюгат для детекции; встроенные положительный контроль и отрицательный контроль.

Изобретение относится к области лабораторной диагностики, медицинской иммунологии и микробиологии и предназначено для определения общей антимикробной активности и совокупной активности антимикробных пептидов (АМП) в клинических образцах сыворотки крови.

Группа изобретений относится к устройствам и системам для обработки яиц. Раскрыта система идентификации лотка с яйцами, содержащая первое измерительное устройство, предназначенное для определения первого значения параметра яиц, содержащихся в яичном лотке в группе таких лотков, процессор, связанный с первым измерительным устройством и выполненный с возможностью приема первых значений параметра от первого измерительного устройства и создания и хранения первой картины образцов данных для яичных лотков, основанной на указанных первых значениях параметра и привязываемой к каждому соответствующему лотку с яйцами в указанной группе таких лотков, и второе измерительное устройство, предназначенное для определения второго значения указанного параметра яиц, находящихся в яичных лотках, при этом указанное устройство расположено за первым измерительным устройством и связано с процессором таким образом, что процессор может принимать вторые значения параметра с получением сравнительной картины образцов данных для яичных лотков, исходя из указанных вторых значений параметра соответствующего лотка с яйцами.

Объектом настоящего изобретения является способ прогнозирования риска развития у субъекта сахарного диабета или метаболического синдрома, где у указанного субъекта нет диабета.
Изобретение относится к медицине и может быть использовано для оценки эффективности лечения генерализованной формы хронического урогенитального хламидиоза, вызванного Chlamydia trachomatis.

Изобретение относится к экологии, а именно определению остаточного загрязнения твердого материала после обработки его моющей жидкостью. Для этого образец чистого материала с известным начальным весом помещают в водный раствор хлористого натрия с весовой концентрацией 5±0,05% на 2 часа, а затем высушивают и загрязняют композицией, состоящей из материалов, имитирующих загрязнение.

Изобретение относится к области контроля качества топлив и может быть использовано для определения температуры помутнения дизельных топлив. Способ заключается в том, что анализируемый образец вводят в измерительную ячейку, размещают ее в криостатированную камеру, в которой образец предварительно нагревают, а затем подвергают не менее пяти циклам «охлаждение-нагрев», поддерживая в каждом цикле разную скорость изменения температуры и записывая для каждого цикла «охлаждение-нагрев» кривую зависимости, показывающую изменение удельного теплового потока, поступающего из образца при его охлаждении и получаемого образцом при его нагревании, как функцию температуры, на каждой из которых фиксируют температуру начала кристаллизации (ТнкVi) анализируемого образца, температуру застывания (ТзVi) и температуру окончания плавления твердой фазы (ТопVi).

Настоящее изобретение относится к датчику для определения свойств газа, в частности горючего газа. Газовый датчик для измерения свойств газа включает в себя датчик вязкости газа, содержащий взаимодействующую с газом часть, находящуюся в контакте с газом, подлежащим измерению, и систему измерительной камеры, содержащую измерительную камеру, первый проход с высоким сопротивлением, соединяющий по текучей среде измерительную камеру с взаимодействующей с газом частью, генератор давления, выполненный с возможностью создания изменения давления в измерительной камере, и датчик давления, выполненный с возможностью измерения изменяющегося во времени отклонения давления газа в измерительной камере, причем изменяющееся во времени отклонение давления в измерительной камере вследствие течения газа через проход с высоким сопротивлением коррелировано с вязкостью газа, датчик вязкости газа дополнительно содержит систему эталонной камеры, содержащую эталонную камеру и второй проход с высоким сопротивлением, соединяющий между собой по текучей среде эталонную камеру и взаимодействующую с газом часть, причем эталонная камера связана с датчиком давления измерительной камеры так, что датчик давления выполнен с возможностью измерения перепада давления между давлением в измерительной камере и давлением в эталонной камере.

Изобретение относится к биологии и токсикологической химии. Способ определения нифедипина в биологическом материале заключается в том, что биологический объект измельчают, двукратно по 30 минут обрабатывают порциями органического изолирующего агента, которым является ацетон, полученные органические извлечения объединяют, растворитель из объединенного извлечения испаряют в токе воздуха, остаток неоднократно обрабатывают ацетоном, ацетоновые извлечения отделяют, объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, хроматографируют в макроколонке с сорбентом «Силасорб С-18» 30 μ, элюируя смесью растворителей ацетон-вода в отношении 7:3 по объему, фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют, остаток растворяют в смеси растворителей ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему и проводят определение методом ВЭЖХ с применением подвижной фазы ацетонитрил-фосфатный буферный раствор с рН 9 в отношении 5:5 по объему, подаваемой со скоростью 1000 мклмин, и УФ-детектора, регистрирующего оптическую плотность при 250 нм. 4 табл., 3 пр.

Наверх